Vi præsenterer her, og kontrast to protokoller bruges til at decellularize plantevæv: et vaskemiddel-baseret tilgang og et vaskemiddel-fri tilgang. Begge metoder efterlader den ekstracellulære matrix af plantevæv bruges, som derefter kan udnyttes som stilladser for væv ingeniørmæssige anvendelser.
Autolog, syntetiske og dyr-afledte graftene i øjeblikket bruges som stilladser til væv udskiftning har begrænsninger på grund af lav ledighed, dårlig biokompatibilitet og omkostninger. Plantevæv har gunstige egenskaber, der gør dem enestående egnet til brug som stilladser, såsom høje overfladeareal, fremragende vandtransport og opbevaring, sammenkoblede porøsitet, allerede eksisterende vaskulære netværk, og en bred vifte af mekaniske egenskaber. To vellykkede metoder til plante decellularization af væv ingeniørmæssige anvendelser er beskrevet her. Den første metode er baseret på vaskemiddel bade til at fjerne cellulært materiale, der svarer til tidligere etablerede metoder bruges til at rydde mammale væv. Andet er en vaskemiddel-fri metode tilpasset fra en protokol, der isolerer blad vaskulatur og indebærer anvendelse af en opvarmet blegemiddel og salt bad til at fjerne blade og stængler. Begge metoder giver stilladser med sammenlignelige mekaniske egenskaber og lav cellulære metaboliske virkning, således at brugeren kan vælge den protokol, som passer bedre til deres tilsigtede anvendelse.
Vævsmanipulering opstod i 1980 ‘ erne at skabe levende væv erstatninger, og potentielt adresse betydelig orgel og væv mangel på1. Én strategi har brugt stilladser til at stimulere og styre kroppen til at regenerere mangler væv eller organer. Selv om avanceret fremstilling tilgange, såsom 3D-udskrivning har produceret stilladser med unikke fysiske egenskaber, forbliver muligheden for at fremstille stilladser med en bred vifte af opnåelige fysiske og biologiske egenskaber en challenge2 , 3. Desuden, mangel af en funktionel vaskulære netværk, disse teknikker har været begrænset i regenererende 3-dimensionelle væv. Brugen af decellularized dyrs og menneskers væv som stilladser har hjulpet i at omgå dette problem4,5,6,7. Høje omkostninger, batch til batch variationer og begrænset tilgængelighed kan imidlertid begrænse udbredt brug af decellularized dyr scaffolds8. Der er også bekymring for potentielle smitteoverførsel til patienter og immunologiske reaktion til nogle decellularized mammale væv9.
Cellulose, fremstillet af planten og bakteriel kilder, har været flittigt brugt til at generere biomaterialer for en bred vifte af applikationer i regenerativ medicin. Nogle eksempler kan nævnes: ben10,11, brusk12,13,14 og sårheling15. Stilladser, der består af cellulose har en fordel i, at de er holdbare og modstandsdygtige over for at blive opdelt efter pattedyrceller. Dette er at pattedyrceller ikke producerer enzymer nødvendig for at nedbryde cellulose molekyler. I sammenligning, stilladser fremstillet ved hjælp af makromolekyler fra den ekstracellulære matrix, såsom kollagen, nedbrydes let16 og muligvis ikke velegnet til langsigtede programmer. Kollagen stilladser kan stabiliseres af kemiske cross-linking. Men der er et trade-off på grund af den iboende toksicitet af de cross-linkers, der påvirker biokompatibilitet stilladser17. Omvendt har cellulose potentiale til at være til stede i stedet for implantation i længere perioder af tid fordi det er uigennemtrængelig for Enzymatisk nedbrydning af pattedyrceller18,19,20. Dette kan ændres ved tuning sats for nedbrydning ved hydrolyse forbehandling og co levering af stilladser med cellulases21. Biokompatibilitet decellularized plante-afledte cellulose stilladser i vivo er også blevet påvist i en undersøgelse udført på mus22.
Gennem hundreder af millioner af års evolution, har planter raffineret deres struktur og sammensætning til at øge effektiviteten af fluid transport og opbevaring. Plante vaskulære fartøjer minimere hydrauliske modstand ved forgrening ind i mindre fartøjer, svarende til pattedyr Vaskulaturen ifølge Murrays lov23. Efter decellularization bevares plantens komplekse netværk af fartøjer og sammenkoblede porer. I betragtning af det store antal forskellige plantearter lettilgængelige har plante-afledte stilladser potentiale til at overvinde design begrænsninger i øjeblikket påvirker stilladser i tissue engineering24,25. For eksempel, demonstreret Modulevsky et al. at angiogenese og celle migration opstod decellularized apple væv blev implanteret subkutant på bagsiden af en mus22. Gershlak et al. viste ligeledes, at endotelceller kunne dyrkes i Vaskulaturen af decellularized blade24. I en særskilt eksperiment kunne Gershlak et al. også vise at cardiomyocytes kunne dyrkes på overfladen af bladene og var i stand til at indgå24.
Planter omfatter også kompleks organisation fra cellulære til makroskopisk skala, som er vanskeligt at opnå selv med de mest avancerede fremstillingsteknikker udviklet til dato. Den komplekse hierarkisk design af plantevæv gør dem stærkere end summen af deres vælgere26. Planter i besiddelse af et væld af forskellige mekaniske egenskaber spænder fra stiv og hård komponenter såsom stilke, til meget mere fleksibel og smidig dem som blade27. Bladene varierer afhængigt af arter med hensyn til størrelse, form, bryde styrke, graden af vascularization, og kan bære forskellige grader af hydrofiliciteten. Samlet, disse plante egenskaber tyder på, at decellularized planter kan tjene som unik og yderst funktionelt medicinsk udstyr, herunder som tissue engineering stilladser.
Denne protokol fokuserer på to metoder til at decellularize plantevæv, såsom blade og stilke til anvendelse som stilladser i vævsmanipulering. Den første metode er et vaskemiddel-baseret teknik, der bruger en række bade til at fjerne DNA og cellulære stof, som er blevet tilpasset fra en udbredt teknik til decellularize pattedyr og plante væv6,22,25 ,28,29,30. Den anden metode er vaskemiddel-fri og er tilpasset fra en “skeletonization” protocol almindeligvis anvendes til at fjerne det bløde væv i blade31. Forudgående arbejde viste, at ulmende blade i en blegemiddel og natriumbikarbonat løsning lettere adskillelse af Vaskulaturen fra det omgivende bløde væv31. Denne teknik kan føres tilbage til forsøg udført i de 17th og 18th århundrede, såsom Albertus Seba32 og Edward Parrish33arbejde. Disse eksperimenter centreret omkring forlader plantemateriale, blade og frugter, neddykket i vandet i længere tid (uger til måneder) og gør det muligt blødere væv til forfald væk naturligt. Her er “skeletonization” tilgang tilpasset til at bruge mildere betingelser, såsom længere inkuberingstider ved lavere temperaturer, at fjerne cellulært rester og undgå væsentligt forstyrre den bløde væv struktur. Til forsøgene detaljeret heri, tre plante typer blev brugt: Ficus hispida, Pachira aquatica og en art af Garcinia. Resultaterne af DNA kvantificering, mekaniske afprøvninger og indvirkning på cellulære metaboliske aktivitet fra begge metoder er beskrevet.
Heri beskrives to metoder til at decellularize plantevæv. Resultaterne præsenteres her, kombineret med resultaterne af tidligere undersøgelser25, tyder på, at protokollerne udrakte sandsynligvis gælder for et bredt spektrum af plantearter og kan udføres på både stængler og blade. Disse procedurer er enkle og kræver ikke specialiseret udstyr, så planten decellularization kan udføres i de fleste laboratorier. Det er bemærkelsesværdigt, at efter decellularization, stilladser skal være …
The authors have nothing to disclose.
Vi vil gerne takke John Wirth Olbrich haver for allernådigst leverer de prøver, der anvendes i dette projekt. Dette arbejde er delvist understøttet af National Heart, Lung, og Blood Institute (R01HL115282 til G.R.G.) National Science Foundation (DGE1144804 til J.R.G og G.R.G.), og University of Wisconsin Institut for kirurgi og Alumni fond (H.D.L.). Dette arbejde var også delvist understøttet af Environmental Protection Agency (STAR grant nr. 83573701), den National Institutes of Health (R01HL093282-01A1 og UH3TR000506) og National Science Foundation (IGERT DGE1144804).
Sodium dodecyl sulfate | Sigma Life Science | 75746-1KG | |
Triton X-100 | MP Biomedicals, LLC | 807426 | Non-ionic surfactant referenced in paper. Very viscous reagent, can help to cut end of pipette tip when drawing it up. |
Concentrated bleach (8.25% sodium hypochlorite) | Clorox | Item #: 31009 | Standard concentrated bleach. |
Sodium bicarbonate | Acros Organics | 217120010 | Can be substituted with sodium hydroxide or sodium carbonate. |
8 mm Biopunch | HealthLink | 15111-80 | Cuts samples that fit well in 24 well plate |
Belly Dancer-Shake table | Stovall Life Sciences | BDRAA115S | Use low speeds to not damage tissues. Can use any model/brand of shake table. |
Isotemp hot/stir plate | Fisher Scientific | Can use any style/brand of hot/stir plate. | |
Beaker | Any | Can use any size beaker as long as it will fit your samples and not overcrowd them. | |
Tris Hydrochloride | Fisher Scientific | BP153-500 | |
DMEM | Corning | MT50003PC | |
Quant-iT Picogreen dsDNA assay | Life Technologies | P11496 | Can use any dsDNA quantification mehtod on hand. |