Summary

Модифицированная модель регуляции ренина при стенозе почечной артерии

Published: October 26, 2020
doi:

Summary

Модифицированная модель мыши Голдблатта с 2 почками (2K1C) была разработана с использованием полиуретановых трубок для инициирования стеноза почечной артерии, вызывающего увеличение экспрессии ренина и повреждение почек. Здесь мы описываем подробную процедуру подготовки и размещения манжеты на почечной артерии для создания воспроизводимой и последовательной мышиной модели 2K1C.

Abstract

Стеноз почечной артерии является распространенным состоянием у пациентов с коронарными или периферическими сосудистыми заболеваниями, когда ренин-ангиотензин альдостероновая система (RAAS) чрезмерно активирована. В этом контексте наблюдается сужение почечных артерий, которые стимулируют увеличение экспрессии и высвобождения ренина, ограничивающего скорость протеазы при РААС. Результирующее повышение экспрессии ренина является известным фактором реноваскулярной гипертензии, часто связанной с повреждением почек и повреждением конечных органов. Таким образом, существует большой интерес к разработке новых методов лечения этого состояния. Молекулярный и клеточный механизм контроля ренина при стенозе почечной артерии не полностью понят и требует дальнейшего изучения. Чтобы вызвать стеноз почечной артерии у мышей, была разработана модифицированная модель мыши Goldblatt с 2 почками (2K1C). Правая почка была стенозирована у мышей дикого типа, а мыши с фиктивной операцией использовались в качестве контроля. После стеноза почечной артерии мы определили экспрессию ренина и повреждение почек. Почки были собраны, и свежие коры были использованы для определения экспрессии белка и мРНК ренина. Эта животная модель воспроизводима и может быть использована для изучения патофизиологических реакций, молекулярных и клеточных путей, участвующих в реноваскулярной гипертензии и повреждении почек.

Introduction

Стеноз почечной артерии (RAStenosis) является трудноразрешимой проблемой, затрагивающей около 6% людей старше 65 лет и до 40% людей с ишемической или периферической сосудистой болезнью 1,2. Современные методы лечения заболевания ограничены; поэтому существует острая необходимость в разработке новых методов лечения реноваскулярной гипертензии или резистентной гипертензии, вызванной РАСтенозом. Ренин ангиотензин альдостероновая система (РААС) является ключевым путем, участвующим в патогенезе индуцированной РАСтенозом гипертонии или реноваскулярной гипертензии 3,4. Известные методы лечения, нацеленные на РААС, такие как ингибиторы АПФ или блокаторы рецепторов ангиотензина, облегчают гипертонию, но нуждаются в тщательном изучении на предмет почечной недостаточности и гиперкалиемии 5,6,7. Ренин катализирует стадию ограничения скорости при РААС; превращает ангиотензиноген в ангиотензин I. При атеросклерозе образование бляшек вызывает сужение почечной артерии, что приводит к секреции ренина, что приводит к реноваскулярной гипертензии и повреждению почек8. В ряде исследований сообщалось о повышении уровня окислительного стресса во время реноваскулярной гипертензии у людей, которые были подтверждены моделью двух мышей с одной почкой (2K1C), а также другими гипертоническими моделями животных 2,9,10,11,12,13,14,15,16 . Молекулярный механизм контроля экспрессии ренина при реноваскулярной гипертензии, вызванной РАСтенозом, недостаточно изучен и требует дальнейшего изучения.

Экспериментальные модели на животных, которые надежно и воспроизводимо рекапитулируют RAStenosis, важны для выяснения клеточных и молекулярных механизмов контроля экспрессии ренина для разработки новых методов лечения. Мышиная модель 2K1C является хорошо зарекомендовавшей себя экспериментальной моделью для изучения патогенеза реноваскулярной гипертензии 17,18,19,20. Эта модель генерируется сужением почечной артерии с использованиемклипсы 17,20,21, что приводит к окклюзии почечной артерии, что приводит к увеличению экспрессии ренина и гипертонии 17,19,20,21. Тем не менее, нет доступных технических отчетов, которые описывают пошаговую процедуру для создания стеноза почечной артерии на животных моделях.

Обычные U-образные серебряные клипсы, полиуретановые трубки и другие клипсы использовались для сужения почечной артерии, чтобы вызвать стеноз почечной артерии. Некоторые исследования показали, что конструкция и материал клипа имеют решающее значение для получения надежных и воспроизводимых данных с помощью животной модели 2K1C. По данным Lorenz et al., использование обычных U-образных серебряных клипс вызывает низкий уровень успеха гипертонии (40-60%)21. Из-за клипсовой конструкции почечная артерия прессуется сбоку, вызывая несколько сужений и большую вероятность смещения из почечной артерии. Податливость и пластичность серебра могут привести к изменению ширины зажима; следовательно, вызывая различные уровни гипертонии среди мышей. Диоксиды серебра на клипсе могут вызывать периваскулярное воспаление, интимальную пролиферацию и грануляцию тканей, изменяя диаметр почечной артерии22. Из-за изменчивости уровней гипертонии, полученных с помощью обычного серебряного клипа U-design, Warner et al. и Lorenz et al. успешно использовали полиуретановую трубку круглой конструкции для инициирования стеноза почечной артерии у мышей, генерируя более надежную и последовательную индукцию двух почек с одним клипом животной модели20,21.

В этом отчете мы описываем хирургический протокол для генерации экспериментального RAStenosis у мышей, используя полиуретановые трубки для сужения почечной артерии. Полиуретановая манжета круглой конструкции является более воспроизводимым, надежным и недорогим зажимом для создания стеноза у мышей. Целью данной экспериментальной модели является изучение и определение молекулярно-клеточного механизма контроля экспрессии ренина при стенозе почечной артерии. Мы подтвердили успех модели RAStenosis на мышах, измерив экспрессию ренина и маркер повреждения почек нейтрофильной желатиназой-ассоциированный липокалин (N-GAL).

Protocol

Мыши содержались и ухаживали за ними в Отделе по уходу за животными Медицинского центра Университета Вандербильта (VUMC) в соответствии с руководящими принципами Национального института здравоохранения (NIH) и Руководством по уходу и использованию лабораторных животных Министерства здр…

Representative Results

Сужение почечной артерии увеличивает экспрессию ренина в стенозированной почке, одновременно подавляя экспрессию в контралатеральной почке. Модель стеноза с двумя почками (2K1C) или Модель стеноза Голдблатта вызывает повышенную экспрессию ренина и повреждение почек. Это признано лучш…

Discussion

Стеноз почечной артерии является важной причиной вторичной или резистентной гипертонии и повреждения почек 1,29. Модель Голдблатта с двумя почками (2K1C) была использована для изучения реноваскулярной гипертензии, вызванной RAStenosis 1,17,18,19….

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Исследования были поддержаны грантом NHLBI Research Scientist Development Grant (1K01HL135461-01) для JAG. Спасибо Дэвиду Кармоне-Беррио и Изабель Адарве-Ренгифо за их техническую помощь.

Materials

Diet Gel Clear H2O Diet-Gel 76A Surgery recovery diet
EMC Heated Hard pad Hallowell 000A2788B Heating pads were used to keep mice warm
Ethilon Nylon Suture Ethicon 662G 4-0 (1.5 metric), This suture was used to close the peritoneum, and skin
Ethilon Nylon Suture Ethicon 2815 G 8-0 (0.4 metric), This suture was used to close cuff to tie and constrict the artery
Germinator 500 Braintree Scientific Inc. GER 5287 Sterilize surgical tools between surgeries
Ketoprofen Zoetis Ketofen Painkiller
Polyurethane Braintree Scientific Inc. MRE-025 This tube was used to initiate stenosis
Povidone-iodine antiseptic swabsticks Medline MDS093901 It was applied after hair removal and surgery on the skin
Reflex 7 Clip Applier Roboz Surgical Instrument Co 204-1000 This clip applier was used to apply clip in case one or more sutures went off
Sterile towel drapes Dynarex 4410 It was used as a bedsheet for mice during surgery
Triple antibiotic ointment Medi-First 22312
Water pump Stryker T/pump Professionals Used to warm and circulate water in the heating hard pad to keep mice warm during and post-surgery

References

  1. Kashyap, S., et al. Blockade of CCR2 reduces macrophage influx and development of chronic renal damage in murine renovascular hypertension. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 310 (5), 372-384 (2016).
  2. Wang, W., et al. Changes in inflammatory biomarkers after renal revascularization in atherosclerotic renal artery stenosis. Nephrology Dialysis Transplantation. 31 (9), 1437-1443 (2016).
  3. Yerram, P., Karuparthi, P. R., Chaudhary, K. Pathogenesis and management of renovascular hypertension and ischemic nephropathy. Minerva Urologica e Nefrologica. 64 (1), 63-72 (2012).
  4. Covic, A., Gusbeth-Tatomir, P. The role of the renin-angiotensin-aldosterone system in renal artery stenosis, renovascular hypertension, and ischemic nephropathy: diagnostic implications. Progress in Cardiovascular Diseases. 52 (3), 204-208 (2009).
  5. Barreras, A., Gurk-Turner, C. Angiotensin II receptor blockers. Proceedings. 16 (1), 123-126 (2003).
  6. Sica, D. A. Angiotensin-converting enzyme inhibitors side effects–physiologic and non-physiologic considerations. Journal of Clinical Hypertension. 6 (7), 410-416 (2004).
  7. Hill, R. D., Vaidya, P. N. Angiotensin II Receptor Blockers (ARB, ARb). StatPearls. , (2019).
  8. Durante, A., et al. Role of the renin-angiotensin-aldosterone system in the pathogenesis of atherosclerosis. Current Pharmaceutical Design. 18 (7), 981-1004 (2012).
  9. Chen, K., et al. Plasma reactive carbonyl species: Potential risk factor for hypertension. Free Radical Research. 45 (5), 568-574 (2011).
  10. Zhang, X., et al. Angiotensin receptor blockade has protective effects on the poststenotic porcine kidney. Kidney International. 84 (4), 767-775 (2013).
  11. Zou, X., et al. Renal scattered tubular-like cells confer protective effects in the stenotic murine kidney mediated by release of extracellular vesicles. Scientific Reports. 8 (1), 1263 (2018).
  12. Kinra, M., Mudgal, J., Arora, D., Nampoothiri, M. An insight into the role of cyclooxygenase and lipooxygenase pathway in renal ischemia. European Review for Medical and Pharmacological Sciences. 21 (21), 5017-5020 (2017).
  13. Cavalcanti, C. O., et al. Inhibition of PDE5 Restores Depressed Baroreflex Sensitivity in Renovascular Hypertensive Rats. Frontiers in Physiology. 7, 15 (2016).
  14. Dias, A. T., et al. Sildenafil ameliorates oxidative stress and DNA damage in the stenotic kidneys in mice with renovascular hypertension. Journal of Translational Medicine. 12, 35 (2014).
  15. Lerman, L. O., Chade, A. R., Sica, V., Napoli, C. Animal models of hypertension: an overview. Journal of Laboratory and Clinical Medicine. 146 (3), 160-173 (2005).
  16. Reckelhoff, J. F., Romero, D. G., Yanes Cardozo, L. L. Sex, Oxidative Stress, and Hypertension: Insights From Animal Models. Physiology (Bethesda). 34 (3), 178-188 (2019).
  17. Goldblatt, H., Lynch, J., Hanzal, R. F., Summerville, W. W. Studies on Experimental Hypertension : I. The Production of Persistent Elevation of Systolic Blood Pressure by Means of Renal Ischemia. Journal of Experimental Medicine. 59 (3), 347-379 (1934).
  18. Gollan, F., Richardson, E., Goldblatt, H. Hypertension in the systemic blood of animals with experimental renal hypertension. Journal of Experimental Medicine. 88 (4), 389-400 (1948).
  19. Lewis, H. A., Goldblatt, H. Studies on Experimental Hypertension: XVIII. Experimental Observations on the Humoral Mechanism of Hypertension. Bulletin of the New York Academy of Medicine. 18 (7), 459-487 (1942).
  20. Warner, G. M., et al. Genetic deficiency of Smad3 protects the kidneys from atrophy and interstitial fibrosis in 2K1C hypertension. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 302 (11), 1455-1464 (2012).
  21. Lorenz, J. N., et al. Renovascular hypertension using a modified two-kidney, one-clip approach in mice is not dependent on the alpha1 or alpha2 Na-K-ATPase ouabain-binding site. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 301 (3), 615-621 (2011).
  22. Ebina, K., Iwabuchi, T., Suzuki, S. Histological change in permanently clipped or ligated cerebral arterial wall. Part II: Autopsy cases of aneurysmal neck clipping. Acta Neurochirurgica. 66 (1-2), 23-42 (1982).
  23. Saleem, M., et al. Sox6: A new modulator of renin expression during physiological conditions. bioRxiv. , (2019).
  24. Saleem, M., et al. Sox6 as a new modulator of renin expression in the kidney. American Journal of Physiology-Renal Physiology. , (2019).
  25. Chade, A. R., Williams, M. L., Engel, J., Guise, E., Harvey, T. W. A translational model of chronic kidney disease in swine. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 315 (2), 364-373 (2018).
  26. Xue, Y., Xu, Z., Chen, H., Gan, W., Chong, T. Low-energy shock wave preconditioning reduces renal ischemic reperfusion injury caused by renal artery occlusion. Acta Cirúrgica Brasileira. 32 (7), 550-558 (2017).
  27. Lalanne, A., Beaudeux, J. L., Bernard, M. A. NGAL: a biomarker of acute and chronic renal dysfunction. Annales de Biologie Clinique. 69 (6), 629-636 (2011).
  28. Bolignano, D., et al. Neutrophil gelatinase-associated lipocalin (NGAL) as a marker of kidney damage. American Journal of Kidney Diseases. 52 (3), 595-605 (2008).
  29. Kashyap, S., et al. Development of renal atrophy in murine 2 kidney 1 clip hypertension is strain independent. Research in Veterinary Science. 107, 171-177 (2016).
  30. Anderson, W. P., Woods, R. L., Kline, R. L., Korner, P. I. Acute haemodynamic responses to unilateral renal artery stenosis in conscious dogs. Clinical and Experimental Pharmacology and Physiology. 12 (3), 305-309 (1985).
  31. Imanishi, M., et al. Critical degree of renal arterial stenosis that causes hypertension in dogs. Angiology. 43 (10), 833-842 (1992).
  32. Ziecina, R., Abramczyk, P., Lisiecka, A., Papierski, K., Przybylski, J. Adrenal-renal portal circulation contributes to decrease in renal blood flow after renal artery stenosis in rats. Journal of Physiology and Pharmacology. 49 (4), 553-560 (1998).
  33. Johnson, J. A., Ichikawa, S., Kurz, K. D., Fowler, W. L., Payne, C. G. Pressor responses to vasopressin in rabbits with 3-day renal artery stenosis. American Journal of Physiology. 240 (6), 862-867 (1981).
  34. Eirin, A., et al. Changes in glomerular filtration rate after renal revascularization correlate with microvascular hemodynamics and inflammation in Swine renal artery stenosis. Circulation: Cardiovascular Interventions. 5 (5), 720-728 (2012).
  35. Ma, Z., Jin, X., He, L., Wang, Y. CXCL16 regulates renal injury and fibrosis in experimental renal artery stenosis. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory. 311 (3), 815-821 (2016).
  36. Cheng, J., et al. Temporal analysis of signaling pathways activated in a murine model of two-kidney, one-clip hypertension. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 297 (4), 1055-1068 (2009).
  37. Wiesel, P., Mazzolai, L., Nussberger, J., Pedrazzini, T. Two-kidney, one clip and one-kidney, one clip hypertension in mice. Hypertension. 29 (4), 1025-1030 (1997).
  38. Johns, C., Gavras, I., Handy, D. E., Salomao, A., Gavras, H. Models of experimental hypertension in mice. Hypertension. 28 (6), 1064-1069 (1996).
check_url/61058?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Saleem, M., Barturen-Larrea, P., Saavedra, L., Gomez, J. A. A Modified Two Kidney One Clip Mouse Model of Renin Regulation in Renal Artery Stenosis. J. Vis. Exp. (164), e61058, doi:10.3791/61058 (2020).

View Video