Summary

形態形成、パターニング、および細胞分化の初期段階を理解するためのニワトリ組換え四肢アッセイ

Published: January 12, 2022
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Summary

組換え四肢は、細胞分化の過程と胚シグナルの影響下でのパターンの生成を研究することを可能にする強力な実験モデルである。このプロトコルは、異なる生物から得られた他の細胞型に適応可能なニワトリ四肢 – 中胚葉系細胞を有する組換え四肢を生成するための詳細な方法を提示する。

Abstract

細胞分化は、発達中の組織および器官の確立中に異なる特殊な細胞型の形成につながる細胞コミットメントの微調整されたプロセスである。このプロセスは成人期に積極的に維持されます。細胞分化は、器官の発生および恒常性維持の間の進行中のプロセスである。細胞分化の初期段階を理解することは、形態形成などの他の複雑なプロセスを知るために不可欠です。したがって、組換えニワトリ四肢は、胚パターニングシグナル下での細胞分化およびパターン生成の研究を可能にする実験モデルである。この実験モデルは 、in vivo 環境を模倣しています。それは初期の四肢の芽から得られた外胚葉性のカバーに再凝集した細胞を組み立てる。その後、外胚葉は、その発達を可能にするために、ひよこの胚受容体に移植および移植される。このアッセイは、主に中胚葉性四肢芽細胞を評価するために使用された。しかし、それは他の生物からの他の幹または前駆細胞に適用することができる。

Introduction

脊椎動物の四肢は、細胞分化、細胞増殖、細胞死、パターン形成、および形態形成を研究するための手ごわいモデルである1,2。発生中、四肢は側板中胚葉1に由来する細胞から膨らみとして出現する。四肢芽は、外胚葉で覆われた中胚葉系細胞の中心核からなる。この初期の構造から、丸ごと整った四肢が出現する。四肢の蕾が生じた後、(1)近位 – 遠位軸([PD]肩から指へ)、(2)背腹側軸([DV]手の甲から手のひらまで)、および(3)前後軸([AP]親指から指へ)の3つの軸が認識される。近位 – 遠位軸は、四肢芽の遠位先端に位置する特殊な外胚葉である頂端外胚葉隆起(AER)に依存する。AERは、伸長、生存維持、増殖、およびシグナル2,3を受け取る細胞の未分化状態に必要である。一方、偏光活性ゾーン(ZPA)は前後パターニング4を制御し、背側および外胚葉は背側腹部パターニング78を制御する。3次元パターニングの統合は、これら3つの軸5間の複雑なクロストークを意味する。四肢の発達中の分子経路を理解しているにもかかわらず、四肢全体を形成するためのパターニングと適切な伸長を制御するメカニズムに関する未解決の疑問は未解決のままである。

Edgar Zwilling は 1964 年に組換え四肢 (RL) システムを開発し、発達中の四肢における四肢間葉系細胞と外胚葉との相互作用を研究しました6.RLシステムは、解離・再凝集した四肢芽中胚葉を胚性四肢外胚葉に組み立て、ドナーの雛胚の背部に移植する。外胚葉によって提供されるシグナルは、時空間的に分化遺伝子およびパターニング遺伝子の発現を誘導し、したがって、四肢発生中に起こる細胞プログラムを反復することができる四肢様構造の形成を誘導する7,8,9

RLモデルは、四肢成分の性質および中胚葉系細胞と外胚葉系細胞との間の相互作用を理解するのに有用である6。RLは、外胚葉カバー6の内部で四肢芽中胚葉細胞を実験的に組み立てまたは再結合することによって作成された四肢様構造として定義することができる。RLの形態形成は、外胚葉系パターニングシグナルに応答する中胚葉系細胞(または他のタイプ)の特性に依存する。この実験システムの利点の1つは、その汎用性である。この特性は、異なる発生段階からの細胞、四肢に沿った異なる位置からの細胞、または全体(解離していない)または再凝集した細胞78910などの中胚葉系細胞の供給源を変えることによって、複数の組み合わせの作成を可能にする。別の例は、ニワトリ以外の種、例えばカメ11、ウズラ、またはマウス12から胚性外胚葉を得る能力である。

この意味で、RL技術は、四肢の発達と四肢間葉系細胞と外胚葉系細胞との間の相互作用を進化的観点から研究するのに役立ちます。この技術はまた、胚性外胚葉121314によって提供されるシグナルを利用して四肢様構造に分化する前駆細胞の異なる供給源の能力を分析するための大きな可能性を秘めている。インビトロ培養とは対照的に、RLは、発達中の四肢からの胚性シグナルを解釈することによって、細胞集団の分化および形態形成能を評価することを可能にする9,15

このプロトコルでは、再凝集した中胚葉性四肢芽細胞を用いてRLを成功させるためのステップバイステップガイドが提供され、したがって、このプロトコルを異なる再凝集細胞源または異なる外胚葉源と適合させる可能性を開く。

Protocol

この研究は、メキシコ国立オートノーマ大学(UNAM、メキシコ、メキシコ)の実験動物の世話と使用のための治験審査委員会によってレビューされ、承認されました。このプロトコルの一般的なステップの概略フローチャートを 図1Aに示す。 1. 胚の孵化と生存率の決定 受精した鶏の卵を38°C、相対湿度60%で約3日半孵化させ、22HH段階…

Representative Results

よくできた組換え四肢の認識移植後、操作された胚をインキュベーターに戻し、RLが発達するようにした。インキュベーション時間は、実験の要件と相関していた。それにもかかわらず、RLは移植の12時間後に容易に区別することができる。移植が適切であったかどうかを決定するために、RLはドナー胚の中胚葉壁に確実に付着した隆起として観察された(図2A</str…

Discussion

一般に、RLプロトコルは、(1)胚のインキュベーション、(2)外胚葉を埋める四肢中胚葉細胞の取得、(3)外胚葉の取得、(4)外胚葉カバーの内部に中胚葉細胞を組み立てる、および(5)充填された外胚葉の宿主胚への移植の5つのステップに分けることができる。RL 手法の主な制限は、長くて詳細なプロトコルであり、適切に実行するために忍耐を必要とする多くの重要なポイントがあります。プロト?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

図2の画像についてはエステファニア・ガライ=パチェコに、アートワークについてはマリア・ヴァレリア・キマル=モンテス・デ・オカに感謝します。この研究は、JC-Mに授与されたメキシコ国立自治大学(DGAPA)と、JC-Mに授与されたConsejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACyT) [助成金番号1887 CONACyT-Fronteras de la Ciencia]によって支援されました。JC M-Lは、Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología(CONACyT-Fronteras de la Ciencia-1887)からポスドクフェローシップを授与されました。

Materials

Alcian Blue 8GX Sigma A5268
Angled slit knife Alcon 2.75mm DB
Blunt forceps Fine Science Tools 11052-10
Collagenase type IV Gibco 1704-019
DMEM-HG Sigma D5796
Egg incubator Incumatic de Mexico Incumatic 1000
Fetal Bovine Serum Gibco 16000069
Fine surgical forceps Fine Science Tools 9115-10
Hanks Balanced Salt Solution Sigma H6648
Microcentrifuge Eppendorf 5417R
Micropipet NA NA
Palladium wire GoodFellow 7440 05-3
Petri dish Nest 705001
Pippette crmglobe PF1016
Stereomicroscope Zeiss Stemi DV4
Tape NA NA
Trypsin porcine Merck 9002 07-7
Tungsten needle GoodFellow E74-15096/01

References

  1. Malashichev, Y., Christ, B., Pröls, F. Avian pelvis originates from lateral plate mesoderm and its development requires signals from both ectoderm and paraxial mesoderm. Cell and Tissue Research. 331 (3), 595-604 (2008).
  2. Mahmood, R., et al. A role for FGF-8 in the initiation and maintenance of vertebrate limb bud outgrowth. Current Biology. 5 (7), 797-806 (1995).
  3. Yu, K., Ornitz, D. M. FGF signaling regulates mesenchymal differentiation and skeletal patterning along the limb bud proximodistal axis. Development. 135 (3), 483-491 (2008).
  4. Riddle, R. D., Johnson, R. L., Laufer, E., Tabin, C. Sonic hedgehog mediates the polarizing activity of the ZPA. Cell. 75 (5), 1401-1416 (1993).
  5. McQueen, C., Towers, M. Establishing the pattern of the vertebrate limb. Development. 147 (17), (2020).
  6. Zwilling, E. Development of fragmented and of dissociated limb bud mesoderm. Developmental biology. 9 (1), 20-37 (1964).
  7. Frederick, J. M., Fallon, J. F. The proportion and distribution of polarizing zone cells causing morphogenetic inhibition when coaggregated with anterior half wing mesoderm in recombinant limbs. Development. 67 (1), 13-25 (1982).
  8. Ros, M. A., Lyons, G. E., Mackem, S., Fallon, J. F. Recombinant limbs as a model to study homeobox gene regulation during limb development. Biologie du développement. 166 (1), 59-72 (1994).
  9. Piedra, M. E., Rivero, F. B., Fernandez-Teran, M., Ros, M. A. Pattern formation and regulation of gene expressions in chick recombinant limbs. Mechanisms of Development. 90 (2), 167-179 (2000).
  10. Crosby, G. M., Fallon, J. F. Inhibitory effect on limb morphogenesis by cells of the polarizing zone coaggregated with pre-or postaxial wing bud mesoderm. Biologie du développement. 46 (1), 28-39 (1975).
  11. Fallon, J. F., Simandl, B. K. Interactions between chick limb bud mesoderm and reptile ectoderm result in limb outgrowth in the limbless mutant. Anatomical Record. 208, 53-54 (1984).
  12. Kuhlman, J., Niswander, L. Limb deformity proteins: role in mesodermal induction of the apical ectodermal ridge. Development. 124 (1), 133-139 (1997).
  13. Goetinck, P. F., Abbott, U. K. Studies on limb morphogenesis. I. Experiments with the polydactylous mutant, talpid. Journal of Experimental Zoology. 155, 161-170 (1964).
  14. Carrington, J. L., Fallon, J. F. Initial limb budding is independent of apical ectodermal ridge activity; evidence from a limbless mutant. Development. 104 (3), 361-367 (1988).
  15. Fernandez-Teran, M., Piedra, M. E., Ros, M. A., Fallon, J. F. The recombinant limb as a model for the study of limb patterning, and its application to muscle development. Cell and Tissue Research. 296 (1), 121-129 (1999).
  16. Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. Journal of Morphology. 88 (1), 49-92 (1951).
  17. Ganan, Y., Macias, D., Duterque-Coquillaud, M., Ros, M. A., Hurle, J. M. Role of TGF beta s and BMPs as signals controlling the position of the digits and the areas of interdigital cell death in the developing chick limb autopod. Development. 122 (8), 2349-2357 (1996).
  18. Ros, M. A., Simandl, B. K., Clark, A. W., Fallon, J. F. Methods for manipulating the chick limb bud to study gene expression, tissue interactions, and patterning. Developmental Biology Protocols. 137, 245-266 (2000).
  19. MacCabe, J. A., Saunders, J. W., Pickett, M. The control of the anteroposterior and dorsoventral axes in embryonic chick limbs constructed of dissociated and reaggregated limb-bud mesoderm. Biologie du développement. 31 (2), 323-335 (1973).
  20. Zwilling, E. Effects of contact between mutant (wingless) limb buds and those of genetically normal chick embryos: confirmation of a hypothesis. Biologie du développement. 39 (1), 37-48 (1974).
  21. Prahlad, K. V., Skala, G., Jones, D. G., Briles, W. E. Limbless: A new genetic mutant in the chick. Journal of Experimental Zoology. 209 (3), 427-434 (1979).
  22. Marin Llera, J. C., Lorda-Diez, C. I., Hurle, J., Chimal-Monroy, J. SCA-1/Ly6A mesodermal skeletal progenitor subpopulations reveal differential commitment of early limb bud cells. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 9, 656999 (2021).
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Citer Cet Article
Marín-Llera, J. C., Fernández-Calderón, M., Chimal-Monroy, J. Chicken Recombinant Limbs Assay to Understand Morphogenesis, Patterning, and Early Steps in Cell Differentiation. J. Vis. Exp. (179), e63183, doi:10.3791/63183 (2022).

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