Summary

Optimaliseren van de opfokprocedure van kiemvrije wespen

Published: July 21, 2023
doi:

Summary

Nasonia-wespenembryo’s werden na parasitering gedurende 12-24 uur ontleed uit Lucillia sericata-poppen en gewassen met alcohol en 10% natriumhypochlorietoplossing om kiemvrije embryo’s te verkrijgen. Na het grootbrengen van de kiemvrije embryo’s en het leveren van Nasonia-opfokmedium om in vitro te groeien en zich te ontwikkelen, werden kiemvrije Nasonia-volwassenen verkregen.

Abstract

Aseptische kweektechnologie is een methode om insecten te kweken onder steriele of bijna steriele omstandigheden, die de invloed van externe micro-organismen op insectenmicrobiota effectief kan elimineren en zo de snelle ontwikkeling van onderzoek naar insectenmicrobiota kan bevorderen. Nasonia (wespengeslacht) is een sluipwespinsect dat veel voordelen heeft, zoals een korte levensduur, hoge genetische variatie, eenvoudige bediening, enz., En wordt veel gebruikt als een insectenmodelsysteem. In tegenstelling tot antibioticabehandeling, die alleen het aantal micro-organismen bij dieren kan verminderen, kunnen aseptische opfoktechnieken zowel de samenstelling als de hoeveelheid micro-organismen bij dieren regelen, waardoor de studie van gastheer-microbe-interacties verder wordt vergemakkelijkt. Eerdere versies van Nasonia-opfokmedium (NRM) hebben echter enkele defecten en problemen, zoals een complex en tijdrovend bereidingsproces, eenvoudige besmetting door bacteriën of schimmels en een korte opslagtijd. Daarom lost deze studie deze problemen op door de tools te optimaliseren die worden gebruikt in het NRM-voorbereidingsproces, opslagomstandigheden en componentverhoudingen. Het geoptimaliseerde medium kan opslag bij -20 °C gedurende ten minste 3 maanden mogelijk maken en de mogelijkheid van NRM-besmetting tijdens het voeren van steriele wespen elimineren. Dit verbetert verder de overlevingskans en het gezondheidsniveau van aseptische Nasonia, wat belangrijk is voor het gebruik van Nasonia als model voor microbieel onderzoek.

Introduction

Kiemvrije dieren zijn dieren die geen detecteerbare levende micro-organismen en parasieten hebben1. Kiemvrije embryo’s kunnen worden verkregen door de moeder onder aseptische omstandigheden te ontleden en vervolgens in barrièresystemenop te voeden 2. Dergelijke dieren kunnen worden gebruikt om de effecten van micro-organismen op dieren te bestuderen, zoals op de darmmicrobiota, het immuunsysteem en het metabolisme1. Met bepaalde technische middelen kunnen veel insecten en zelfs zoogdieren steriel worden gemaakt 3,4. Kiemvrije dieren hebben een unieke rol en zijn op grote schaal gebruikt in verschillende aspecten van microbiologisch onderzoek5. Het gebruik van kiemvrije Nasonia-wespen heeft bijvoorbeeld aangetoond dat micro-organismen gastheren kunnen helpen zich aan te passen aan nieuwe omgevingen onder langdurige exogene omgevingsstress 6,7.

Nasonia parasitoïden zijn kleine sluipwespen die hun eitjes injecteren in de poppen van vliegen4. Er zijn vier soorten Nasonia bekend, waaronder Nasonia vitripennis, Nasonia longicornis, Nasonia giraulti en Nasonia oneida8. N. vitripennis is wereldwijd te vinden, terwijl de andere drie soorten een beperkt bereik hebben in Noord-Amerika4. Nasonia sluipwespen worden beschouwd als ideale modelinsecten vanwege hun kenmerken, zoals gemakkelijke teelt, korte voortplantingscyclus, gesequenced genoom en lange termijn diapause 8,9. Ze kunnen worden gebruikt om verschillende aspecten van insectenevolutie, genetica, ontwikkeling, gedrag en symbiose te bestuderen10. Bovendien kunnen Nasonia-sluipwespen ook helpen bij het bestrijden van schadelijke vliegen in de landbouw en ziekten11. Het succesvol opzetten van een steriel insectensysteem omvat twee belangrijke stappen: (1) sterilisatie van de embryo’s en (2) levering van steriel voedsel aan de larven in vitro. Om steriel voedsel te verkrijgen, ontwikkelden Brucker en Bordenstein 12 in 2012 Nasonia-opfokmedium (NRMv1) door chemicaliën zoals antibiotica, bleekmiddel en foetaal runderserum te gebruiken om bacteriënte doden 12. De chemische sterilisatiemethode resulteerde echter in lage overlevings- en eclosiepercentages van N. vitripennis13. Vervolgens ontwikkelden Shropshire et al. in 2016 NRMv2 door een filtersterilisatiemethode te gebruiken in plaats van een chemische sterilisatiemethode om de gevaren van antibiotica en andere stoffen te elimineren en het fokproces te optimaliseren13. Helaas heeft deze methode nog steeds enkele nadelen, zoals de uitdagingen die gepaard gaan met het bereiden en gebruiken van het medium, evenals de risico’s van verdrinking, ondervoeding of uitdroging voor de embryo’s, larven en gesloten poppen14. Wang en Brucker14 hebben onlangs de Nasonia rearing media versie 3 (NRMv3) en de kiemvrije opfok versie 2 (GFRv2) protocollen verbeterd. Deze verbeteringen verminderden de kosten en het mediaverbruik. De NRMv3 heeft echter een zeer korte bewaartijd en is zeer gevoelig voor verontreiniging.

Voortbouwend op NRMv3 werden de opslagmethode van het NRM-voorbereidingsgereedschap en de nutriëntenverhouding in deze studie geoptimaliseerd. Deze methodologische verfijning vergemakkelijkt het gebruik van N. vitripennis als model voor microbioomstudies. Vergeleken met de NRMv3 ontwikkeld door Wang et al.14, verbetert het verbeterde hulpmiddel voor het knijpen van Sarcophaga bullata popa, een van de NRM-grondstoffen, de productie-efficiëntie van S. bullata-popweefselvloeistof aanzienlijk in vergelijking met de 60 ml spuit met een bodemgat die door Wang et al.14 wordt gebruikt. We pasten de voedingsstoffenverhouding van NRM aan, wat leidde tot een zekere toename van de overlevingskans van kiemvrije Nasonia-wespen zonder hun ontwikkelingstijd te beïnvloeden. Bovendien werd de NRM verpakt in centrifugebuizen met een kleine capaciteit (1,5 ml) en ingevroren in een koelkast van -20 °C om de opslagtijd te verlengen. Het is vermeldenswaard dat terwijl we de huisvlieg Lucilia sericata gebruikten als gastheer en bron voor NRM-voorbereiding, dit protocol waarschijnlijk kan worden aangepast voor andere Nasonia-gastheren die beschikbaar zijn in het laboratorium.

Protocol

1. Bereiding van kiemvrij Nasonia-opfokmedium  Plaats de in de handel verkrijgbare L. sericata-poppen (zie materiaaltabel) op een oppervlak dat geschikt is voor alle poppen, zoals een dienblad of een vel papier. Gooi onderontwikkelde larven, donkere oude poppen, lege popschelpen, zaagsel of andere onzuiverheden weg. Houd alleen jonge poppen die bruinrood van kleur zijn en breng ze over naar een bekerglas (ongeveer 3.000-4.000 poppen).OPME…

Representative Results

De voorbereidingsefficiëntie van NRM werd sterk verbeterd door het verbeteren van de voorbereidingstools. Bovendien werd het probleem van NRM-vervuiling in het voedingsproces geëlimineerd door de strategie en conserveringsmethode te optimaliseren. Tegelijkertijd had de aangepaste NRM een meer geschikte voedingsverhouding voor de groei en ontwikkeling van kiemvrije wespen met L. sericata als gastheren. De overlevingskans van kiemvrije wespen van larven tot poppen was significant verbeterd in vergelijking met ki…

Discussion

Met de toepassing van high-throughput detectietechnologieën zoals genomica en metabolomica, hebben onderzoekers zich geleidelijk gerealiseerd dat er een enorme genetische diversiteit en metabole complexiteit is in de darmmicrobiota16. Deze symbiotische bacteriën zijn nauw verwant aan verschillende fysiologische of pathologische toestanden, zoals het voedingsmetabolisme van de gastheer, tumoren, immuniteit en veroudering door complexe interacties met de gastheer17. Het ond…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Financiering: dit werk werd ondersteund door de National Science Foundation of China (32270538), het National Key R&D Program of China (2022YFF0710603), de Natural Science Foundation of Beijing (6222046) en de CAS strategische financiering via het CAS-CSIRO financieringsprogramma (152111KYSB20210011) toegekend aan G.H.W. Auteursbijdragen: alle auteurs ontwikkelden de reikwijdte en focus van de review en droegen bij aan het schrijven van het manuscript.

Materials

0.22 Sterile vacuum filter NEST 331011
10% SodiumHypochlorite LIRCON XB-84BS-1
1x PBS solution Solarbio P1020
200 mesh nylon net BIOBYING BY-378Z
24 well-plate NEST 702001
8, 1.2, 0.8, and 0.45 µm filters Shanghai Xingya Purification Material Factory HN-AA-JT-10079
Absolute ethyl alcohol Macklin E809057-500ml
Cell Strainer BIOLOGIX 15-1100
Commercial Drosophila Medium Boer B645446-500ml
Dissecting needle Bioroyee 17-9140
Garlic press Taobao No Catalog numbers Purchase on Taobao
Lucillia sericata pupae Hefei Dayuan Biotechnology Co., Ltd. No Catalog numbers Purchase on Taobao
Small writing brush Cestidur BL0508
Stereoscope SOPTOP RX50
Tweezers SALMART A109001-56

References

  1. Diviccaro, S., et al. Exploring the impact of the microbiome on neuroactive steroid levels in germ-free animals. International Journal of Molecular Sciences. 22 (22), 12551 (2021).
  2. Pang, X., et al. Inter-species transplantation of gut microbiota from human to pigs. The ISME Journal. 1 (2), 156-162 (2007).
  3. Uzbay, T. Germ-free animal experiments in the gut microbiota studies. Current Opinion in Pharmacology. 49, 6-10 (2019).
  4. Zhu, Z., Liu, Y., Hu, H., Wang, G. -. H. Nasonia-microbiome associations: a model for evolutionary hologenomics research. Trends in Parasitology. 39 (2), 101-112 (2022).
  5. Li, J., Wei, H. Establishment of an efficient germ-free animal system to support functional microbiome research. Science China Life Sciences. 62 (10), 1400-1403 (2019).
  6. Wang, G. H., et al. Changes in microbiome confer multigenerational host resistance after sub-toxic pesticide exposure. Cell Host Microbe. 27 (2), 213-224 (2020).
  7. Wang, G. H., Dittmer, J., Douglas, B., Huang, L., Brucker, R. M. Coadaptation between host genome and microbiome under long-term xenobiotic-induced selection. Science Advances. 7 (19), (2021).
  8. Dittmer, J., Brucker, R. M. When your host shuts down: larval diapause impacts host-microbiome interactions in Nasonia vitripennis. Microbiome. 9 (1), 85 (2021).
  9. Dittmer, J., et al. Disentangling a holobiont-recent advances and perspectives in Nasonia wasps. Frontiers in Microbiology. 7, 1478 (2016).
  10. Brooks, A. W., Kohl, K. D., Brucker, R. M., van Opstal, E. J., Bordenstein, S. R. Phylosymbiosis: relationships and functional effects of microbial communities across host evolutionary history. PLoS Biology. 14 (11), e2000225 (2016).
  11. Heavner, M. E., et al. Partial venom gland transcriptome of a Drosophila parasitoid wasp, Leptopilina heterotoma, reveals novel and shared bioactive profiles with stinging Hymenoptera. Gene. 526 (2), 195-204 (2013).
  12. Brucker, R. M., Bordenstein, S. R. In vitro cultivation of the hymenoptera genetic model, Nasonia. PLoS One. 7 (12), e51269 (2012).
  13. Shropshire, J. D., van Opstal, E. J., Bordenstein, S. R. An optimized approach to germ-free rearing in the jewel wasp Nasonia. PeerJ. 4, e2316 (2016).
  14. Wang, G. H., Brucker, R. M. An optimized method for Nasonia germ-free rearing. Scientific Reports. 12 (1), 219 (2022).
  15. Brucker, R. M., Bordenstein, S. R. The hologenomic basis of speciation: gut bacteria cause hybrid lethality in the genus Nasonia. Science. 341 (6146), 667-669 (2013).
  16. Fontaine, C. A., et al. How free of germs is germ-free? Detection of bacterial contamination in a germ free mouse unit. Gut Microbes. 6 (4), 225-233 (2015).
  17. Mazmanian, S. K., Liu, C. H., Tzianabos, A. O., Kasper, D. L. An immunomodulatory molecule of symbiotic bacteria directs maturation of the host immune system. Cell. 122 (1), 107-118 (2005).
  18. Weersma, R. K., Zhernakova, A., Fu, J. Interaction between drugs and the gut microbiome. Gut. 69 (8), 1510-1519 (2020).
check_url/fr/65292?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Zhu, Z., Wang, D., Liu, Y., Tang, T., Wang, G. Optimizing the Rearing Procedure of Germ-Free Wasps. J. Vis. Exp. (197), e65292, doi:10.3791/65292 (2023).

View Video