変形性膝関節症ラットの炎症と軟骨喪失を軽減するためのTuina操作

Summary

石膏固定化誘発変形性膝関節症ラットに対して実行されるTuina操作のプロトコルを提示します。予備的な結果に基づいて、この方法の有効性は炎症と軟骨喪失の減少に依存していることが示唆されました。

Abstract

臨床試験では、Tuina操作が変形性膝関節症(KOA)の治療に効果的であることが示唆されていますが、そのメカニズムを発見するにはさらなる研究が必要です。したがって、変形性膝関節症の動物モデルの操作は重要です。このプロトコルは、KOAラットに対するTuina操作の標準的なプロセスと、KOAに対するTuinaのメカニズムの予備的な調査を提供します。プレスと混練の操作方法(体表面の特定の領域を押して混練することを指す一種のTuina操作)は、ラットの膝関節の周りの5つのツボに適用されます。操作の力および頻度は指圧記録によって標準化され、操作中のラットの位置はプロトコルに詳細に記載されている。操作の効果は、滑膜および軟骨における疼痛行動試験および顕微鏡所見によって測定することができる。KOAラットは、疼痛行動の有意な改善を示した。滑膜組織炎症浸潤はTuina群で減少し、腫瘍壊死因子(TNF)-αの発現は有意に低かった。対照群と比較して、軟骨細胞のアポトーシスはTuina群で少なかった。この研究は、KOAラットに対するTuina操作の標準化されたプロトコルと、Tuinaの治療効果が滑膜の炎症と軟骨細胞の遅延アポトーシスの軽減に関連している可能性があるという予備的な証拠を提供します。

Introduction

変形性膝関節症(KOA)は、主に関節痛に現れる変性疾患です。線維症、ひび割れ、潰瘍形成、関節軟骨の喪失がこの病気の主な原因です¹。KOAは有病率が高く、患者の日常生活に大きな影響を与え、重症の場合に障害を引き起こす可能性があります。45〜84歳の人々の間では、KOAの有病率は年齢とともに増加し、85歳以上の人々の有病率は15%であり、女性で優勢です^2,3。さらに、KOAは個人と社会の両方に深刻な経済的負担をもたらす可能性があります。調査によると、一人当たりのKOAの直接医療費は、年間8,858ドル±5,120ドルに達しました⁴。高齢化社会の進展に伴い、KOAは世界的な健康問題、大きな社会問題となり、科学研究の話題となっています。

エビデンスに基づく研究は、KOA⁵の治療におけるTuina操作の有効性を示しています。Tuina操作はKOA患者の痛みを和らげ、機能障害を改善する可能性があり、そのメカニズムは抗炎症効果に関連しています^6,7。学者らは、Tuina操作が炎症因子インターロイキン(IL)-βおよび5-ヒドロキシトリプタミンの発現を効果的に抑制し、ウサギKOAモデル⁸の関節軟骨の変性を遅らせることを発見しました。Tuinaが病変部位の血液循環と代謝を促進し、IL-1、IL-6、腫瘍壊死因子(TNF)-αなどの炎症因子を取り除き、それによって^KOA9の臨床症状を緩和できることが示唆されました。さらに、Tuina操作による関節の受動的な動きは、関節軟骨への滑液の浸透と拡散を促進し、組織の栄養代謝を改善することができます¹⁰。他の研究では、Tuina操作がKOA患者の生体力学的指標を効果的に改善できることが示唆されました¹¹。軟部組織に適用される操作は、四肢全体のストレス分布を改善し、バランス機能を強化することができます^12,13。同時に、いくつかの関節調整操作により、下肢のアライメントを調整して、異常な歩行を矯正することもできる^14、15。

KOAの治療におけるTuina操作の作用機序はまだ調査されていないため、実験的研究が必要です。実験動物におけるTuinaの適用の鍵は、モデリング、動物の固定および介入方法の標準化です¹⁶。モデリング方法は、実験動物が疾患の特徴を示すことができるかどうかを決定する。一方、適切な固定方法は、Tuina操作の介入を容易にし、Tuinaの効果をよりよく反映することができます。介入方法の標準化は、Tuina操作の最も難しい部分です。2010年、中国の鍼灸基準の基本システムは、実験動物の鍼治療基準に言及し、動物実験における鍼治療とTuina手術の可能性を提供しました¹⁷。ただし、Tuinaの操作を標準化することにはまだ困難があります。Tuina操作には複数の種類があります¹⁸。特定の操作の選択は、主に治療する疾患とパフォーマーが好む治療理論に依存します。Tuina for KOAの研究では、ポイントプレス操作(親指または肘で特定のツボを押す)、Yizhichanプッシュ操作(親指を小刻みに動かすことによるプッシュ操作)、およびプレスおよび混練操作(指または手のひらで体表面の特定の領域を押してこねることを指す)にさらに注意が払われています¹⁹.プレスおよび混練操作は、最も広く用いられているTuina操作の1つであり、皮下組織²⁰を移動させるためにプレスおよび混練を組み合わせたものである。ツボに適用されるプレスと混練の操作は、血液循環を促進し、痛みを和らげることができ、^KOA19に対するTuinaの治療効果を表します。

このプロトコルでは、KOAラットに対するプレスおよび混練操作の操作について、将来の研究の参照を提供するために、選択された経穴、操作の強度と頻度、およびラットの体位を含めて詳細に説明します。

Protocol

この研究は、上海中医薬大学(YYLAC-2022-166)と提携している伝統的な中国と西洋の統合の岳陽病院の実験動物倫理委員会によって実施された動物倫理レビューに合格しました。

1. 実験動物の準備とグルーピング

1. 動物の準備
   1. 室温(18〜21°C)、湿度40%〜50%、12時間:12時間の概日リズム交互で200〜220gの合計10匹の健康なSPF SD雌ラットを後方投与する。動物倫理ガイドラインおよびガイドラインの関連規定に厳密に準拠して、痛みに関連する動物実験を実施します。
2. 動物のグループ化
   1. ラットをTuina群と対照群にランダムに分けます。Tuinaグループのラットをモデリング後21日間、プレスおよび混練操作で処理します。対照群のラットを同じTuinaルームに入れ、Tuinaグループが治療を受けている間、それらを黒い布袋に同時に入れます。

2. 動物のモデリング

1. 動物に麻酔をかける
   1. ガス麻酔にはイソフルランを使用してください。ラットを誘導濃度3%の誘導ボックスに入れます。ラットを寝かせた後、箱をぐらつに動かし、ラットが腹臥位に戻ろうとせずに転倒したときの麻酔を確認します。
   2. ラットを誘導ボックスから取り出し、麻酔マスクに鼻を固定します。麻酔を維持するためにイソフルラン濃度を2%に調整します。ラットが足をつまんだときに反応しない場合は、麻酔を確認してください。まぶたを閉じることができないため、ラットに麻酔をかけるときの乾燥を防ぐために、ラットに目の軟膏を塗ります。
2. モデリング方法²¹
   1. シェービングマシンを使用して、右後肢の毛を取り除きます。ラットの右足首と股関節の間に医療用コットンパッドを置きます。右膝関節を180°伸ばして、5〜6層の湿った石膏包帯を均等に固定します。足首から始まり、前の包帯の1/3を覆う石膏包帯をスパイラルで包みます。ヘアドライヤーを使用して、石膏を乾かして固めます。
   2. 石膏包帯が乾いて固まった後、石膏を義歯基材で外部的に包み、石膏を固定し、かじるのを防ぎます。
   3. 義歯の基材を混合して粘着性にし、混合物を石膏の外側に接着します(混合物は包帯の端を超えてはなりません、 図1)。混合物が硬くなったら、麻酔器の電源を切り、動物が自然に目覚めるのを待ちます。ラットが目を覚ます前に麻酔事故を防ぐためにラットを監督します。
   4. きつい固定は血液循環を制限するが、緩い固定は落ちる傾向があるので、ラットの右後肢に石膏を適切に固定する。終末肢の血液循環を観察します。末端の腫れや紫色の顔色が検出された場合は、循環を回復するために石膏の一部を速やかに切り取ってください。石膏が壊れていて、下肢の伸展を維持できない場合は、石膏を作り直します。
   5. 3週間の連続固定後に石膏を取り除きます。外科用ハサミを使用して、義歯の基材を外側に切り取り、石膏包帯を貼ります。ラットの下肢を生理食塩水ですすぎ、ガーゼで乾かします。局所皮膚病変がある場合は、ヨードフォアで滅菌してください。
3. モデル検証²²
   1. X線ベースの検証
      1. モデリング終了後1日目に右膝のX線検査を行う。仰臥位で前後X線写真を撮り、股関節屈曲を30°、膝を伸展0°、股関節外転を15°にします。膝蓋骨を膝の真正面に保ち、ラジエーターチューブを膝関節から110 mm離します。
      2. 右股関節屈曲を30°、右膝伸展を0°で、右外側褥瘡の位置で横方向のX線写真を撮ります。左肢の股関節屈曲を70°、膝屈曲を45°にし、ラジエーターチューブを膝関節から110mm離します。検出パラメータを露光電圧50kV、電流250mA、露光量32mA、露光時間128msに設定します。
      3. 正常なラットのX線と比較して、モデル化された膝のX線が、端に骨棘過形成を伴うより狭い関節スペースを示していることを確認します。
   2. 国際変形性関節症研究会(OARSI)スコア²³
      1. ラットを安楽死ボックスに入れ、毎分30%〜70%のケージ容量の割合で_CO2 を灌流する。ラットが動かず、呼吸しておらず、瞳孔が拡張していることを検出した後、CO₂ の灌流を停止します。さらに2分間観察して死亡を確認します。
         注:子宮頸部脱臼は、死亡を確認するための二次形態として、CO₂ベースの安楽死後に行うことができます。ラットをテーブルに固定し、片手で尾をつかみます。もう一方の手の親指と人差し指でラットの頭を押し下げます。亀裂の音を聞いたときに死を確認すると、ラットは同時に動きと心拍を失います。
      2. 右後肢を外転および外旋で曲げた状態で、フォームボード上にシリンジ針を用いてラットを仰臥位に固定する。手術用ハサミで膝関節の周りの皮膚をつまみます。皮膚を切断してから皮下筋膜を切断することにより、膝関節の周りの筋肉を露出させます。
      3. 骨はさみで大腿骨と脛骨骨幹を切り取り、右膝関節を切除します。関節の外側にある筋肉や靭帯などの余分な軟組織をそっと取り除きます。
      4. ジョイントを4%パラホルムアルデヒドで4°Cで24〜48時間固定します。 骨組織が針で簡単に突けるようになるまで、10%ギ酸溶液で関節を3日間脱灰します。
      5. 脱灰した組織をドラフトに入れてトリミングし、脱水機の脱水ボックスに移します。75%エタノールを4時間加え、次に90%エタノールを2時間、続いて95%エタノールを1時間、無水エタノールを30分間、別のラウンドの新鮮な無水エタノールを30分間、アルコールベンゼンを5〜10分間、キシレンを5〜10分間、新鮮なキシレンを5〜10分間、ワックスを1時間、新鮮なワックスを1時間、 脱水と透明なワックス浸漬のために1時間の新鮮なワックスの最終ラウンド。
      6. 次に、ティッシュを機械に入れて埋め込みます。パラフィンが固まった後、ワックスブロックを4μmのワックススライスにカットし、スライスを温水で平らにします。スライスをスライドガラスの上に置き、乾燥させます。室温で保管してください。
      7. 軟骨サンプルを観察し、OA軟骨組織病理学グレード評価(表1)²³に従ってスコア付けします。モデリング後のラットのスコアが正常なラットのスコアよりも有意に高い場合、モデリングは成功しました。

表 1.OA軟骨組織病理学グレード評価。 グレードは軟骨への深さの進行です。合計スコア=グレードxステージング。正常な関節の場合は0、重度の関節炎の場合は24。 この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。

図 1.ラットは石膏に固定された。 ラットに麻酔をかけた後、右下肢を石膏包帯で包み、過伸展位に固定し、外側の義歯基材の層で覆った。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

3.トゥイナ操作

1. 応用分野
   1. ラットの右後肢にあるST34、ST35、SP10、EX-LE4、BL40の合計5つの経穴を選択します(図2)。²⁴のツボの位置の原則に従ってツボを見つけます。
2. 応募ポジション
   1. 黒い布を片側が開いている9 cm x 15 cmの袋に切り、ロープで開口部を締めます。Tuinaの操作の前に、ラットの尻尾をそっと引っ張ってバッグに穴を掘り、後肢をバッグの外に露出させます。
   2. 片方の手でラットを腹臥位に保ち、尾と後ろ足を持ち、もう一方の手で特定の経穴にプレスと混練操作を適用します(図3)。
3. トゥイナ操作
   1. 右後肢の5つのツボをプレス・練り込み操作で2分間ずつ操作する。選択した経穴にパフォーマーの親指を置き、リズミカルなプレスと揉みを行い、皮膚と皮下組織を円を描くように動かします。
   2. 指圧記録(ニュートンの単位)を使用して、操作の強度と頻度が一定になるようにします。強度を3〜5 N、周波数を2 Hzに保ちます(図4)。21日間一日一回操作を適用します。

図 2.経穴の位置。 SP10は、ラットの膝関節の内側から5 mm上にあります。ST34は、ラットの外側膝関節から5mm上に位置しています。EX-LE4はラットの膝靭帯の内側に位置しています。ST35はラットの膝靭帯の外側に位置しています。BL40は横膝窩縞の中点に位置しています。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

図 3.ラットに適用されたTuina操作。 ラットは、後肢が露出した状態で黒い袋に入れられました。パフォーマーは左手でネズミの尻尾を持ち、右手で操作を行いました。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

図 4.指圧の記録。 指の圧力の力と周波数を記録するデバイスは、Tuina操作のプロセスにおける強度と周波数に関するリアルタイムのフィードバックに使用されます。(A)圧力センサーおよびトランスミッション機器。(B)指圧の記録。(C)トゥイナ操作中に記録された力。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

4.痛み行動テスト

1. 疼痛行動のモデリング前後、および1日後(D1)、7日後(D7)、14日後(D14)および21日後(D21)のTuina操作を、機械的離脱閾値および足離脱潜時試験を含む。
2. 機械的離脱閾値(MWT)
   1. ラットを、開口部10 mm x 10 mmのサイズのワイヤー格子で構成された高さ40 cmのステージにある20 cm x 10 cm x 20 cmの透明な強化ガラスのキュービクルに置きます。室温を23°C±2°Cに保ちます。
   2. 正式な試験の開始時に動物が環境に適応していないことによる試験結果への干渉を避けるために、行動試験段階でラットを行動実験室に少なくとも2時間定着させる。正式なテストの開始前にラットを行動実験室に30分間置き、環境への適応を促進し、気を散らす要因を減らします。
   3. 電子フォンフレイファイバーを使用してMWTを測定します。繊維を足の中心にしてラットを刺激し、ラットが脚を上げたり避けたりするなどの明らかな動きを示したら繊維を抜く。機械は、この時点で最大圧力値(N)を自動的に記録することができます。
   4. 電流刺激の少なくとも15秒後に同じラットで次の刺激を開始する。ラットの足の触覚刺激に対する感作を防ぐために、各刺激中に5秒を超えないようにしてください。3つの連続した測定値の差がわずか(10 N以内)になるまで、テストを5回繰り返します。
   5. 大きな差のある値(最大値と最小値)を削除し、残りの3つの値の平均を機械的撤退しきい値として取ります。
3. 足離脱潜時(PWL)
   1. ラットを20 cm x 10 cm x 20 cmのサイズの透明な強化ガラスの小さなコンパートメントに置きます。通気孔のある透明なガラスカバーでコンパートメントの上部を覆います。透明なガラス板の温度を、コンパートメントが置かれている28〜30°Cに保ちます。
   2. ラットをこの環境に少なくとも30分間定着させ、各正式な試験の開始前に順応させます。ラットがコンパートメント内で排尿または排便する場合は、その後の光放射熱伝達に影響を与えないように、時間内に吸収紙で清掃してください。
   3. ラットの足の中心にスポットライトを集中させ、 スタート ボタンを押します。ラットが足の引っ込めや足の舐めなどの明らかな行動を示したら、 停止 ボタンを押して、この時点で時間を記録します。スポットライトの照射時間は、ラットの皮膚への損傷を避けるために20秒を超えてはなりません。
   4. 感作を防ぐために、少なくとも10分後に同じラットに次の照射を行う。各ラットで5倍を測定します。
   5. 大きな差のある値(最大値と最小値)を削除します。残りの値の平均をPWLとして取ります。

5. サンプル調製

1. 2.3.2.1で説明されているように、マウスで安楽死を実行します。
2. 滑膜の準備
   1. 外転および外旋で右後肢を曲げた状態で、フォームボード上にシリンジ針でラットを仰臥位に固定する。手術用ハサミで膝関節周辺の皮膚をつまみ、ラットの膝関節周辺の筋肉を皮膚を切ってから皮下筋膜を切断して露出させます。
   2. 膝蓋靭帯を目印として、膝蓋骨靭帯の上の筋肉群を取り除きます。膝蓋靭帯の端(脛骨結節)を注意深く切開し、靭帯を下から上向きにつまんだときに滑膜を見つけます。
   3. 眼科用ハサミで滑膜組織を慎重に切断し、予冷した生理食塩水で血液と滑液を洗い流します。きれいなガーゼで組織表面から水分を吸収した後、滑膜を4%パラホルムアルデヒドに少なくとも48時間固定します。
   4. 手順 2.3.2.5- 2.3.2.6 のようにサンプルを準備します。手順 2.3.2.7 のようにスコアリングを実行します。
3. ヘマトキシリンおよびエオジン染色の実施
   1. キシレンで20分間水に脱ワックスし、20分間別のラウンドの新鮮なキシレンと交換し、続いて無水エタノールで5分間処理し、別のラウンドの新鮮な無水エタノールと5分間交換し、次に90%体積エタノールを5分間加え、体積80%エタノールを5分間、体積70%エタノールを5分間加え、 そして最後に5分間蒸留水を入れた。
   2. スライドをヘマトキシリン染色溶液に3〜8分間浸します。スライドを取り外し、蒸留水で汚れを洗い流します。それを分化液(1%塩酸アルコール)にほぼ30秒間移動させると、スライドは淡い青色にフェードします。蒸留水ですすぎ、エオジン染色液に1〜3分間入れます。
   3. スライドを95%エタノール体積分率で5分間脱水し、別のラウンドの新鮮な95%エタノールと5分間交換し、続いて無水エタノールを5分間、別のラウンドの新鮮な無水エタノールと5分間交換します。
   4. キシレンを5分間添加してスライドを透明にし、別のラウンドの新鮮なキシレンと5分間交換してから、中性樹脂で密封します。
4. 軟骨の末端-デオキシヌクレオチジルトランスフェラーゼ媒介ニックエンドラベリング(TUNEL)
   1. 脱ろう水和が完了するまで、無水エタノール、90%エタノール、85%エタノール、75%エタノールで軟骨サンプルを脱水します。PBSに5分間浸します。3%H 2O₂を10分間滴下する。
   2. プロテイナーゼK作業溶液を滴下し、37°Cで10分間消化します。スライスあたり20 μLの標識バッファーを加えて湿らせ、作業溶液を調製した後、余分な液体を振り落とします。各スライドに20 μLの作業溶液を加え、ウェットボックス内で37°Cで2時間インキュベートします。
   3. 50 μLの閉鎖溶液を滴下して30分間閉じます。次に、希釈したビオチン化抗ジゴキシン抗体50 μL(1:100希釈)を滴下し、ウェットボックス内で37°Cで2時間インキュベートします。10 μLのSABC抗体希釈液(1:100希釈)を滴下し、ウェットボックス内で37°Cで2時間インキュベートします。
   4. DAB発色溶液(1000μLの蒸留水に各50μLの試薬A、B、C)を10〜15分間滴下します。発色が茶色がかった黄色の粒状になると完了します。
   5. ヘマトキシリンで3秒間再染色します。グラジエント脱水と透明化処理の後、室温で乾燥させ、スライドをニュートラルガムで慎重に密封します。泡や接着剤の溢れを残さないように注意してください。
5. IL-1βおよびTNF-αの免疫組織化学的解析
   1. スライドをキシレンで日常的に脱ワックスし、グラジエントアルコールで水和させます。切片中の内因性ペルオキシダーゼを3%H 2 O₂で不活性化する。スライドホルダーを95°Cのクエン酸緩衝液(pH 6.0)に入れ、95°C以上の水浴中で20分以上インキュベートします。インキュベーションボックスを取り出し、室温で少なくとも20分間放置します。
   2. 5%正常ヤギ血清をPBSで37°Cで10分間インキュベートし、余分な液体を振り落とします。抗体Iを150 μLずつ滴下し、37°Cで1時間静置した後、4°Cで一晩保存します。 翌日、37°Cで45分間再温めます。
   3. PBSで3回ずつ5分間洗います。スライド上の組織を3%BSAで覆い、37°Cで30分間密封します。150 μLの抗体IIを一滴ずつ加え、室温で1時間静置します。PBSで3回ずつ5分間洗浄し、150 pLのDAB発色液を滴下します。サンプルが肉眼でも茶色がかった黄色になるまで、顕微鏡で染色の程度を観察します。
   4. すぐに、PBSで10分間すすいでください。再度ヘマトキシリンで染色し、グラジエントアルコールで脱水し、キシレンでスライドを透明にし、中性ガムで密封します。
6. 統計解析
   1. 関連タンパク質の陽性発現を有する免疫組織化学的に染色された切片は、黄色または茶色がかった黄色である。免疫組織化学切片の各群についてImage Jソフトウェアによる陽性発現の強度をスコアリングし、IODを面積で割って算出した平均光学濃度(AOD)の評価基準を用いた。
   2. 統計分析には分析ソフトウェアを使用します。データが正規分布に適合している場合はt検定を使用し、カイ二乗は正規分布に適合しない場合はノンパラメトリック検定を使用します。一般化推定式により繰り返し測定データを解析します。

Representative Results

疼痛行動テスト
MWTの結果、モデリング後の右後肢のMWTは以前よりも有意に低下したことが示されました(p<0.05)。対照群と比較して、ラットのMWTはTuina後に有意に上昇した(p<0.05; 図5 および 表2)。

図 5.機械的離脱閾値試験の結果 (、ニュートン)。 Tuina群と対照群にそれぞれ5匹のラットがいました。異なる時点でのラットのMWTを図に示す。モデリング後、ラットのMWTは有意に減少し、ラットの痛みが悪化したことが示唆され、KOAモデルの作成に成功しました。その後,MWTは徐々に改善し,疼痛緩和が示唆された。一般化推定式は統計計算に用いた。Tuina群と対照群のMWTの差は、モデリング後と比較して21日目に統計的に有意でした。2つのグループ間の比較は、D7、D14、およびD21で統計的に有意でした*p<0.05。さらに、Tuina群のラットは対照群のラットよりもMWTが高い。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

表 2.機械的離脱閾値(、N)。 モデリング前後の比較、^#p<0.05。Tuina群と対照群の比較、*p<0.05。この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。

PWLの結果、モデリング後の右後肢のPWLは以前よりも有意に短くなりました(p<0.05)。対照群と比較して、ラットのMWTはTuina後に有意に延長されました(p<0.001; 図6 および 表3)。

図 6.足離脱潜時試験の結果 (、秒)。 Tuina群と対照群にそれぞれ5匹のラットがいました。異なる時点でのラットのPWLを図に示す。モデリング後、ラットのPWLは有意に減少し、ラットの痛みが悪化したことが示唆され、KOAモデルの作成に成功しました。当初、Tuina群のPWTの改善は対照群の改善よりも遅かった。D7の後、Tuina群のラットは急速に改善し、D21で対照群を上回りました。一般化推定式は統計計算に用いた。Tuina群と対照群のMWTの差は、モデリング後と比較して21日目に統計的に有意でした。2つのグループ間の比較は、D7、D14、およびD21、***p<0.001で統計的に有意でした。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

表 3.足の離脱待ち時間 (、秒)。 モデリング前後の比較、 ^#p<0.05。Tuinaグループと対照群の比較、****p<0.001。 この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。

組織形態学的アッセイ
対照群の滑膜を解析したところ、滑膜組織に炎症性細胞浸潤と線維性組織過形成が見られた。滑膜細胞は無秩序であり、滑膜組織の周りに少量の毛細血管過形成が見られました(図7)。

図 7.滑膜組織の顕微鏡観察。 (A)対照群における滑膜組織。滑膜細胞の無秩序な配置を図に見る。増殖する血管は赤い矢印でマークされ、炎症細胞は黒い矢印でマークされます。(B)Tuinaグループの滑膜組織。滑膜細胞はよりきれいに配置されていた。炎症細胞は、内側に浸潤するのではなく、主に端に分布しています。増殖する血管は赤い矢印でマークされ、炎症細胞は黒い矢印でマークされます。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

Tuina群では、滑膜細胞が整然と配置され、少量の炎症性細胞浸潤、線維性組織過形成、および組織縁に少量の毛細血管過形成が見られました。

軟骨を解析したところ、TUINA群のTUNEL染色陽性面積は対照群に比べて有意に小さく、Tuina群のアポトーシス軟骨細胞が少ないことが分かりました(図8)。

図 8.軟骨のTUNEL染色。 (A)対照群における軟骨。図の赤い部分はTUNEL染色の陽性領域です。(B)トゥイナグループの軟骨。図の赤い部分はTUNEL染色の陽性領域です。Tuina群の陽性領域は、対照群の陽性領域よりも有意に小さい。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

免疫組織化学
TNF-αについては、両群間で滑膜TNF-α発現に有意差があり、Tuina群の発現は対照群よりも有意に低かった(表4)。

表 4.滑膜におけるTNF-α発現(、*^10-2)。統計解析には2つの独立したサンプルt検定*p<0.05を使用しました。 この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。

IL-1βについては、画像Jの統計量で測定した滑膜IL-1β発現量に2群間で有意差はなかった。しかし、Tuina群の平均値は微妙に低く、発現が少ないことを示している(表5)。

表 5.滑膜におけるIL-β発現 (、*^10-2)。 2つの独立したサンプルt検定を統計分析に使用しました。 この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。

Discussion

この研究は、KOAラットに対するTuina操作のプロトコルを提供します。疼痛行動試験と組織形態学的所見を通じて、KOAラットに適用されたこのような一連のTuina操作は、滑膜炎症と軟骨アポトーシスを減少させる可能性があることが示唆され、これはKOAの動物モデルにおけるTuina操作の参照となる可能性があります。

プロトコルにはいくつかの重要な手順があります。まず、KOAモデルを誘導するための適切な方法を選択することが重要です。KOAモデルを誘導する方法は様々であり、関節腔内注入²⁵、関節内手術26,27、関節ブレーキ法^28,29などがある。侵襲的手法で誘導したKOAモデルは、関節近傍に傷を残し、Tuinaマニピュレーションの効果を妨げる可能性があるため、非侵襲的な関節固定法を選択した。関節固定法は、過伸展固定と過屈曲固定に分けることができます。Shangらは、これら2つの固定方法の効果を比較し、軟骨アポトーシスの効果にほとんど差がないことを発見しました²³。しかし、彼らの実験対象はウサギであり、ラットに比べてサイズが大きく、比較的簡単に固定できます。屈曲位置の固定石膏は、ラットがかじっていると脱落する可能性が高くなります。そこで我々はKOAを誘導するために過伸展固定の固定化法を選択した。本発明者らを参考にし、固定装置³⁰として舌圧子付きの石膏包帯を用いた。しかし、ラットのかじり能力は予想以上に強く、装置は固定として機能できませんでした。その後、石膏の外側に成形可能であるが硬いシェルを形成し、ラットのかじりによる固定装置の摩耗を効果的に減らすことができる一種の義歯基材を見つけました。しっかりと固定すると下肢の血液循環に影響を及ぼしますが、固定が緩すぎると脱落しやすくなります。したがって、ラットの下肢の循環は、モデリングの3週間の間、毎日観察する必要があります。下肢が腫れて紫がかったら、固定を解除する必要があります。固定が緩んでいるときに固定を再取り付けすると、ラットは膝を曲げることができます。この研究の間、ラットはモデリング中に社交を制限されていませんでしたが、お互いの固定を噛んでお互いが自由になるのを助けることがわかりました。おそらく、ラットを分離することで、より良いモデリングが可能になったでしょう。ただし、孤立はラットのうつ病とステレオタイプの行動に寄与する可能性があります。

Tuinaマニピュレーションのポイントは、強度と周波数の一貫性を保つことであると考えています。以前の研究では、動物のTuinaの最適な強度は、最大許容強度の80%である必要があると結論付け^ました31。この時点で、ラットは機械的刺激を受けている兆候を示すはずですが、痛みや足の収縮の兆候はありません。ラットの最大耐容強度である約5〜8 Nをテストしました。そのため、押し付け強度を3〜5 Nに設定し、効果を高める可能性があります。Tuinaの教科書によると、操作の周波数は2Hzです。以前の研究では、Tuina操作の標準化は設定されておらず、実験中に異なる経穴を操作し、左手と右手を変更した後、強度と頻度が変化する可能性があり、結果の精度に影響を与える可能性があります。この実験で使用された指圧記録は、実験中の操作の強度と頻度のリアルタイム観察を提供し、操作の一貫性を保つことができます。一部の学者は、機械を使用してTuina操作をシミュレートし、それを動物に適用し、操作の標準化という利点があります³²。

経穴の選択については、WangとLiuの研究を参照し、操作を容易にするために膝関節の周りの5つの経穴を選択しました^33,34。KOAを誘発するために石膏固定法を選択しましたが、これは主に筋萎縮と関節のこわばりに終わります³⁵。ST34とST35は、伝統的な中国医学理論の萎縮(主に衰弱と筋萎縮として現れる)の治療に重要な足陽明胃子午線に属し、石膏固定化法によって誘発されるKOAへの適応性が良好です。EX-LE4はKOAの臨床治療によく使われる経穴で、主にST35と併用されます。Tanらは、ST35、ST36、およびEX-LE4の鍼治療と灸が滑膜における炎症因子発現を減少させることを発見しました³⁶。SP10とBL40は、KOA^37,38の臨床Tuina治療の中核的なツボであり、SP10はKOA³⁹のTuina処方で最も頻繁に使用されます。

Tuina操作の難しい部分はラットの固定です。ラットは操作に苦労したり回避したりする可能性があり、実験を行うことが難しくなります。ラットイモビライザーはラットを固定し、後肢を露出させることができますが、KOAの発達により後肢の屈曲と伸展が制限されます。したがって、ラットをイモビライザーで落ち着かせると、後肢の痛みや不完全な露出につながる可能性があり、Tuinaの操作に影響を与える可能性があります。私たちは、ラットの暗い環境への好みと穴を掘る傾向に基づいて、シングルエグジット布バッグを設計しました。ラットが入ったら布袋を閉めます、すなわち、頭と前肢は袋の中にあり、そしてその後肢は外側に露出しています。この方法は、ラットの闘争を効果的に減らし、Tuinaの間それらを静かに保つことができます。

事前実験の結果は、Tuina操作が滑膜組織の炎症反応を低下させ、軟骨細胞のアポトーシスを減少させ、KOAの治療薬として作用する可能性があることを示唆しています。ただし、これを確認するにはさらに研究が必要です.

このプロトコルにはいくつかの欠点があります。まず、ラットのサイズが小さいため、経穴を正確に特定することは困難です。オペレーターの指はラットのツボに比べて大きすぎるため、Tuina操作の効果に影響を与える可能性があります。指先に直径2mm程度のゴム粒子を付加し、ツボの刺激精度を高めることを考えていました。しかし、粒子はより高い強度の圧力につながり、一貫性を制御することを困難にする可能性があります。さらに、指圧記録を損傷する可能性が高かったため、この方法を選択しませんでした。第二に、私たちの研究は滑液中の炎症因子の変化と軟骨細胞のアポトーシスを無視しており、これは研究の信頼性を弱める可能性があります。今後、この分野の研究を強化していきます。第三に、プレスと混練の操作はTuinaの操作の1つであり、KOAの治療におけるTuinaの効果を網羅することはできません。動物に実装されている他のTuina操作は、関節の動きの操作や摩擦操作など、さらに調査する必要があります。さらに、ポジティブコントロールは操作の有効性をよりよく示しますが、この研究では設計されておらず、追跡調査でこれを追加します。

全体として、この研究はKOAラットに対するTuina操作の標準化されたプロトコルを提供し、操作の有効性は疼痛行動試験および顕微鏡所見によって検証されています。プロトコルの予備的な証明は、Tuinaの治療効果が滑膜炎症と軟骨細胞の遅延アポトーシスの軽減に関連している可能性があることを証明しています。KOAのためのTuinaのメカニズムを探求するには、さらなる研究が必要です。

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
absolute ethanol	Supelco	PHR1070	For making specimen
ALMEMO admeasuring apparatus	ahlborn	2450-1	For Mechanical Withdrawal Threshold test
Anti-Digoxin antibody	Sigma-Aldrich	SAB4200669	For HE stain IHC or TUNEL
Anti-IL-1 beta	abcam	ab283818	For HE stain IHC or TUNEL
DAB Substrate kit	Solarbio	DA1010	For HE stain IHC or TUNEL
Denture base materials	Shanghai New Century	20000356	For model making
eosin	bioswamp	PAB180016	For HE stain IHC or TUNEL
Finger pressure recordings	Suzhou Changxian Optoelectronic Technology	CX1003w	For Tuina manipulation
formic acid solution	Sigma-Aldrich	695076	For decalcification
H2O2	Sigma-Aldrich	386790-M	For HE stain IHC or TUNEL
hematoxylin	bioswamp	PAB180015	For HE stain IHC or TUNEL
Isoflurane	Shanghai Yuyan Scientific Instrument Company	S10010533	For gas anesthesia
neutral resins	bioswamp	PAB180017	For HE stain IHC or TUNEL
Paraformaldehyde Fix Solution	Sigma-Aldrich	100496	For histology
PBS	Sigma-Aldrich	P3813	For HE stain IHC or TUNEL
Plantar Test Apparatus	IITC Life Science	/	For Paw Withdrawal Latency test
plaster of Paris bandage	WANDE	20150023	For model making
Proteinase K	Sigma-Aldrich	124568	For HE stain IHC or TUNEL
TNF Alpha Monoclonal antibody	Proteintech	60291-1-Ig	For HE stain IHC or TUNEL
TUNEL	Servicebio	GDP1042	For HE stain IHC or TUNEL
Wax	Sigma-Aldrich	327204	For making specimen
xylene	Shanghai Sinopharm Group	100092	For making specimen