Summary

الدهون طبقة ثنائية الحويصلة انشاء طريق ميكروفلويديك النفث

Published: February 21, 2014
doi:

Summary

النفث ميكروفلويديك ضد واجهة قطرات الدهون طبقة ثنائية يوفر وسيلة موثوقة لتوليد الحويصلات مع السيطرة على التماثل الغشاء، إدراج البروتينات عبر الغشاء، والتغليف من المواد. هذه التقنية يمكن تطبيقها على دراسة مجموعة متنوعة من النظم البيولوجية حيث يتم المطلوب الجزيئات الحيوية مجزأة.

Abstract

يعرض أسفل إلى أعلى البيولوجيا التركيبية نهجا جديدا للتحقيق وإعادة تشكيل النظم البيوكيميائية، وربما الحد الأدنى من الكائنات الحية. هذا المجال الناشئ يشارك المهندسين والكيميائيين وعلماء الأحياء، والفيزياء لتصميم وتجميع المكونات البيولوجية الأساسية في المجمع، وأنظمة تعمل من أسفل إلى أعلى. هذه النظم من أسفل إلى أعلى قد يؤدي إلى تطوير خلايا اصطناعية للاستفسارات البيولوجية الأساسية والعلاجات المبتكرة 1،2. يمكن الحويصلات unilamellar العملاقة (GUVs) بمثابة منصة نموذجية لعلم الأحياء الاصطناعية نظرا لهيكل غشاء الخلية مثل والحجم. النفث ميكروفلويديك، أو microjetting، هو الاسلوب الذي يسمح لتوليد GUVs مع حجم تسيطر عليها، وتكوين الغشاء والبروتين عبر الغشاء التأسيس، والتغليف 3. المبدأ الأساسي لهذه الطريقة هو استخدام متعددة، البقول السوائل عالية التردد التي تم إنشاؤها بواسطة جهاز النافثة للحبر بيزو دفعتها إلى تشوه وعلقت لطبقة ثنائية IPID إلى GUV. هذه العملية هي أقرب إلى فقاعات الصابون تهب من فيلم الصابون. من خلال تغيير تركيبة الحل متدفق، وتكوين الحل يشمل، و / أو المكونات المدرجة في طبقة ثنائية، يمكن للباحثين تطبيق هذه التقنية لخلق الحويصلات حسب الطلب. وتصف هذه الورقة الإجراء لتوليد الحويصلات بسيطة من طبقة ثنائية واجهة الحبرية بواسطة microjetting.

Introduction

أصبح من الواضح بشكل متزايد أن بيولوجيا الخلية هي مشكلة متعددة المستويات التي تنطوي على دمج فهمنا من الجزيئات إلى الخلايا. بالتالي، مع العلم بالضبط كيفية عمل الجزيئات بشكل فردي ليست كافية لفهم السلوكيات الخلوية المعقدة. هذا يرجع جزئيا إلى وجود سلوكيات الناشئة من أنظمة متعددة المكونات، كما يتضح من إعادة تشكيل الأكتين التفاعل مع شبكة حويصلات الدهنية طبقة ثنائية والتجمع المغزل الإنقسامية في القيطم استخراج وديناميات المكانية الأجهزة انقسام الخلايا البكتيرية 6. طريقة واحدة لاستكمال نهج الاختزالية للتشريح العمليات الجزيئية من المنظومات الحية هو اتخاذ النهج المعاكس من إعادة تشكيل السلوكيات الخلوية باستخدام مجموعة صغيرة من المكونات البيولوجية. جزء هام من هذا النهج ينطوي على التغليف موثوقة من الجزيئات الحيوية في حجم المحصورة، سمة أساسية من سمات خلية.

e_content "> العديد من الاستراتيجيات المتبعة لتغليف الجزيئات الحيوية لدراسة نظم بيوميمتيك. النظام الأكثر ملاءمة من الناحية البيولوجية هو الأغشية طبقة ثنائية المادة الدهنية، والتي تحاكي القيود البيوكيميائية والفيزيائية التي تفرضها غشاء البلازما الخلية تشكيل حويصلات unilamellar العملاقة (GUVs) من خلال electroformation واحدة من أكثر التقنيات المستخدمة على نطاق واسع لتوليد GUV 14، وعادة ما يكون الفقراء العائد التغليف نظرا لتعارضه مع العازلة الملح عالية 8. أيضا يتطلب Electroformation أحجام عينة كبيرة (> 100 ميكرولتر)، والتي يمكن أن يكون مشكلة للعمل مع البروتينات المنقى ، ويشتمل على نحو غير فعال جزيئات كبيرة بسبب صعوبة نشرها بين طبقات الدهون متباعدة عن كثب. وقد وضعت عدة نهج ميكروفلويديك لتوليد حويصلات الدهنية. طرق مستحلب مزدوجة، التي تمر من خلال مكونات واجهات اثنين بين طبقات المياه نفط المياه (W / O / W)، تعتمد على التبخر من فوالمذيبات latile لدفع تشكيل طبقة ثنائية الدهن 9. وقد استخدم البعض الآخر خط التجميع ميكروفلويديك التي تنتج تيار مستمر من الدهون طبقة ثنائية حويصلات أو 10 في خطوتين مستقلة 11. قمنا بتطوير تقنية بديلة تقوم على تطبيق بسرعة نبضات السائل ضد واجهة قطرات طبقة ثنائية لإنتاج 12 GUVs من حجم تسيطر عليها، وتكوينها، والتغليف. نهجنا، والمعروفة باسم النفث ميكروفلويديك، ويقدم المزايا مجتمعة من عدة تقنيات الجيل حويصلة القائمة، وتوفير نهج لإنشاء أنظمة الجزيئية البيولوجية وظيفية للتحقيق في مجموعة متنوعة من المشاكل البيولوجية.

Protocol

1. تصنيع غرفة اللانهاية تصميم غرفة اللانهاية (يسمى لشكله) باستخدام الكمبيوتر التصميم بمساعدة (CAD) والبرمجيات، وحفظ الملف بحيث أنه متوافق مع قطع الليزر. لإنشاء هذا الشكل، منفصلة دائرتين بقطر 0.183 في بمسافة مركز إلى مركز 0….

Representative Results

لقد جمعنا الإعداد النفث ميكروفلويديك على المجهر مضان مقلوب التقليدية مع مرحلة العرف تجميعها من أجزاء تشكيله وميكرومتر دليل (الشكل 1). توصيف النافثة للحبر توفر نظرة ثاقبة في عملية توليد حويصلة. متفاوتة المسافة بين فوهة النافثة للحبر والدهون طبقة ثنائية يؤثر …

Discussion

وقد تم تطوير العديد من التقنيات لتوليد حويصلة، بما في ذلك electroformation، مستحلب، والجيل الحبرية 14-16. ومع ذلك، وتقنيات تجريبية جديدة ضرورية للسماح لتصميم النظم البيولوجية مع التشابه المتزايد لنظم المعيشة. وعرضت وسائل ميكروفلويديك على وجه الخصوص زيادة مستوى السيطرة…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نشكر مايك Vahey من مختبر فليتشر في جامعة كاليفورنيا، بيركلي لتقديم المشورة بشأن المعلمات microjetting. وقد رعت هذا العمل من قبل المعاهد الوطنية للصحة منح HL117748 DP2-01.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Piezoelectric Inkjet MicroFab Technologies MJ-AL-01-xxx xxx denotes orifice diameter in microns
Jet Drive III Controller MicroFab Technologies CT-M3-02
High-speed camera Vision Research MiroEX2
DPhPC lipid in chloroform Avanti 850356C Ordered in small aliquots in vials
33mm PVDF filters, 0.2 µm Fisher Scientific SLGV033RS
1ml syringes Fisher Scientific 14823434
n-Decane Acros Organics 111871000
Glucose Acros Organics 410950010
Sucrose Sigma-Aldrich S7903-1KG
Methylcellulose Fisher Scientific NC9084958
1/8" Acrylic McMaster Carr 8560K239 CAD designs for the infinity-shaped chamber are available upon request
0.2 mm Acrylic Astra Products Clarex clear 001
Acrylic Cement TAP Plastics 10693
Loctite 495 Superglue Fisher Scientific NC9011323
Loctite 3494 UV Strengthening Adhesive Strobels Supply 30765
Natural rubber McMaster Carr 85995K14
Custom stage Home made N/A CAD designs are available upon request

Riferimenti

  1. Liu, A. P., Fletcher, D. A. Biology under construction: in vitro reconstitution of cellular function. Nature reviews. Mol. Cell Biol. 10, 644-650 (2009).
  2. Yeh, B. J., Lim, W. A. Synthetic biology: lessons from the history of synthetic organic chemistry. Nat. Chem. Biol. 3, 521-525 (2007).
  3. Richmond, D. L., et al. Forming giant vesicles with controlled membrane composition, asymmetry, and contents. Proc. Natl. Acad. Soc. U.S.A. 108, 9431-9436 (2011).
  4. Liu, A. P., et al. Membrane-induced bundling of actin filaments. Nat. Phys. 4, 789-793 (2008).
  5. Brown, K. S., et al. Xenopus tropicalis egg extracts provide insight into scaling of the mitotic spindle. J. Cell Biol. 176, 765-770 (2007).
  6. Loose, M., Fischer-Friedrich, E., Ries, J., Kruse, K., Schwille, P. Spatial regulators for bacterial cell division self-organize into surface waves in vitro. Science. 320, 789-792 (2008).
  7. Angelova, M. I., Dimitrov, D. S. Liposome electroformation. Faraday Disc. Chem. Soc. 81, 301-311 (1986).
  8. Bucher, P., Fischer, A., Luisi, L. P., Oberholzer, T., Walde, P. Giant Vesicles as Biochemical Compartments: The Use of Microinjection Techniques. Langmuir. 14, 2712-2721 (1998).
  9. Shum, H. C., Lee, D., Yoon, I., Kodger, T., Weitz, D. A. Double emulsion templated monodisperse phospholipid vesicles. Langmuir. 24, 7651-7653 (2008).
  10. Matosevic, S., Paegel, B. M. Stepwise Synthesis of Giant Unilamellar Vesicles on a Microfluidic Assembly Line. J. Am. Chem. Soc. 133, 2798-2800 (2011).
  11. Hu, P. C. C., Li, S., Malmstadt, N. Microfluidic Fabrication of Asymmetric Giant Lipid Vesicles. ACS Appl. Mater. Inter. 3, 1434-1440 (1021).
  12. Hwang, W. L., Chen, M., Cronin, B., Holden, M. A., Bayley, H. Asymmetric droplet interface bilayers. J. Am. Chem. Soc. 130, 5878-5879 (2008).
  13. Stachowiak, J. C., Richmond, D. L., Li, T. H., Brochard-Wyart, F., Fletcher, D. A. Inkjet formation of unilamellar lipid vesicles for cell-like encapsulation. Lab Chip. 9, 2003-2009 (2009).
  14. Meleard, P., Bagatolli, L. A., Pott, T. Giant unilamellar vesicle electroformation from lipid mixtures to native membranes under physiological conditions. Methods Enzymol. 465, 161-176 (2009).
  15. Nishimura, K., Suzuki, H., Toyota, T., Yomo, T. Size control of giant unilamellar vesicles prepared from inverted emulsion droplets. J. Colloid Interface Sci. 376, 119-125 (2012).
  16. Teh, S. Y., Lin, R., Hung, L. H., Lee, A. P. Droplet Microfluidics. Lab Chip. 8, 198-220 (2008).
  17. Stachowiak, J. C., et al. Unilamellar vesicle formation and encapsulation by microfluidic jetting. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 4697-4702 (2008).
  18. Osaki, T., Yoshizawa, S., Kawano, R., Sasaki, H., Takeuchi, S. Lipid-coated microdroplet array for in vitro protein synthesis. Anal. Chem. 83, 3186-3191 (2011).
  19. Liu, A. P., Fletcher, D. A. Actin polymerization serves as a membrane domain switch in model lipid bilayers. Biophys. J. 91, 4064-4070 (2006).
check_url/it/51510?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Coyne, C. W., Patel, K., Heureaux, J., Stachowiak, J., Fletcher, D. A., Liu, A. P. Lipid Bilayer Vesicle Generation Using Microfluidic Jetting. J. Vis. Exp. (84), e51510, doi:10.3791/51510 (2014).

View Video