Summary

تقييم خيط عضلي كاليفورنيا<sup> 2+</sup> الحساسية الكامنة وراء القلب الإثارة، تقلص اقتران

Published: August 01, 2016
doi:

Summary

This paper describes a protocol that assesses the changes of myofilament Ca2+ sensitivity during contraction in isolated cardiac myocytes from rat heart. Together with cardiac electrophysiology, systolic/diastolic cytosol Ca2+ levels and contraction/relaxation, this measurement is imperative in underpinning the mechanisms mediating cardiac excitation-contraction coupling in healthy and diseased hearts.

Abstract

فشل القلب وعدم انتظام ضربات القلب هي الأسباب الرئيسية للأمراض والوفيات في جميع أنحاء العالم. ومع ذلك، لا تزال الآلية المرضية وعطل عضلة القلب في القلب المريضة إلى توضيح كامل. يوضح أدلة دامغة مؤخرا أن التغيرات في حساسية خيط عضلي الكالسيوم 2+ تؤثر على الكالسيوم داخل الخلايا 2+ الأنشطة التوازن والقناة الايونية في myocytes القلب، والآليات الأساسية المسؤولة عن إمكانات العمل القلب وانقباض في قلوب سليمة والمريضة. في الواقع، أنشطة القنوات الأيونية والنقل الكامنة إمكانات العمل القلب (على سبيل المثال، الصوديوم، الكالسيوم 2+ و K + القنوات ونا + -CA 2+ مبادل) والكالسيوم 2+ التعامل مع البروتينات داخل الخلايا (على سبيل المثال، ryanodine المستقبلات والكالسيوم يتم قياس 2+ -ATPase في شبكية الهيولى العضلية (SERCA2a) أو فسفولامبان والفسفرة به) تقليديا إلى evaluيأكل من الآليات الأساسية للالقلب اقتران الإثارة، تقلص (EC). كل من الأنشطة الكهربائية في الغشاء والتغيرات الكالسيوم داخل الخلايا 2+ هي إشارات الزناد من اقتران EC، في حين خيط عضلي هو وحدة وظيفية من التقلص والاسترخاء، وحساسية خيط عضلي الكالسيوم 2+ أمر لا بد منه في تنفيذ الأداء ييفة عضلية. ومع ذلك، عدد قليل من الدراسات تتضمن حساسية خيط عضلي الكالسيوم 2+ في التحليل الوظيفي لعضلة القلب إلا إذا كان التركيز في الدراسة. هنا، نحن تصف البروتوكول الذي يقيس قسيم عضلي تقصير / إعادة إطالة والخلايا مستوى الكالسيوم 2+ باستخدام Fura 02:00 (كشف ratiometric) وتقييم التغييرات من حساسية خيط عضلي الكالسيوم 2+ في myocytes القلب من قلوب الفئران. والهدف الرئيسي هو التأكيد على أنه خيط عضلي ينبغي أن تؤخذ حساسية الكالسيوم 2+ بعين الاعتبار في اقتران EC للتحليل الآلية. تحقيق شامل طعلى قنوات، نقل أيون، داخل الخلايا معالجة الكالسيوم 2+، وحساسية خيط عضلي الكالسيوم 2+ التي تكمن وراء انقباض العضلية في قلوب سليمة والمريضة سوف توفر معلومات قيمة عن تصميم استراتيجيات أكثر فعالية من متعدية وقيمة علاجية.

Introduction

القلب الإثارة، تقلص (EC) اقتران هو مخطط أساسي لتحليل الخواص الميكانيكية للعضلة القلب، أي وظيفة مقلص من القلب 1،2. يبدأ اقتران المفوضية الأوروبية من خلال الاستقطاب غشاء الثانوي لأنشطة القنوات الأيونية sarcolemmal (على سبيل المثال، نا + قناة بوابات الجهد، والتي يمكن قياسها عبر تقنيات التصحيح، المشبك). تفعيل لاحق من الجهد بوابات L من نوع كا 2+ قنوات (LTCCs) والكالسيوم 2+ تدفق عبر LTCCs تؤدي الجزء الأكبر من الكالسيوم 2+ الإفراج خلال ryanodine المستقبلات (RyRs)، وزيادة عصاري خلوي تركيز الكالسيوم 2+ من nanomolar (نانومتر ) إلى مكرومولي مستوى (ميكرومتر). هذه الزيادة في كاليفورنيا عصاري خلوي 2+ يعزز الكالسيوم 2+ ملزمة لتروبونين C (المجلس الوطني الانتقالي) في خيوط رقيقة ويثير التغيرات متعلق بتكوين مجمع خيوط لتسهيل التفاعل بين الأكتين الميوسين ومن بلوغ myocardi انكماش ال 3. على العكس، فإن الكالسيوم عصاري خلوي 2+ وإعادة المستحوذ ظهر في شبكية الهيولى العضلية (SR) من خلال كا 2+ -ATPase في ريال (SERCA2a) أو مقذوف من العضلية عن طريق نا + / كا 2+ المبادلات والبلازمي كاليفورنيا 2+ أتباز 1،2. ونتيجة لذلك، وانخفاض في الكالسيوم عصاري خلوي 2+ يحرض التغييرات متعلق بتكوين خيوط رقيقة العودة إلى حالته الأصلية، مما أدى إلى تفكك الأكتين، الميوسين والعضلية الاسترخاء 1-3. في هذا المخطط، ويعتبر هذا النشاط من SERCA2a عموما لتحديد سرعة الاسترخاء عضلة القلب لأنه يشكل 70 – 90٪ من عصاري خلوي إزالة الكالسيوم 2+ في معظم خلايا القلب الثدييات 1. على هذا النحو، والشاذ الكالسيوم 2+ معالجة من قبل LTCC، RYR وSERCA2a، وما إلى ذلك اعتبرت الآليات الرئيسية لانقباض ضعف واسترخاء في قلب المريضة 1-4.

<p class="jove_content"> في الواقع، مجانا عصاري خلوي كا 2+ أن وظائف كما قال رسول في حسابات اقتران EC لحوالي 1٪ من مجموع الكالسيوم داخل الخلايا 2+ والغالبية من الكالسيوم 2+ لا بد أن الكالسيوم داخل الخلايا 2+ مخازن 5،6. هذا ويرجع ذلك إلى حقيقة أن العديد من الكالسيوم 2+ مخازن وفيرة في myocytes القلب، على سبيل المثال، الفوسفورية غشاء، ATP، فسفوكرياتين، كالمودولين، parvalbumin، ييفة عضلية الشركات عبر الوطنية، الميوسين، SERCA2a، وكالسيكويسترين في ريال 5،6،7. من بينها، SERCA2a والشركات عبر الوطنية هي السائدة الكالسيوم 2+ مخازن 5،6،7. وعلاوة على ذلك، الكالسيوم 2+ ملزمة لالمخازن المؤقتة الخاصة به هو عملية ديناميكية خلال نشل (على سبيل المثال، 30-50٪ من الكالسيوم 2+ بربط الشركات عبر الوطنية وتنفصل منه خلال كا 2+ العابرين 7) والتغيير في كا 2+ سبب إضافي ملزم "الافراج" حرية الكالسيوم 2+ إلى العصارة الخلوية، والنتائج في التعديلات من الكالسيوم داخل الخلايا 2+ اضربentration. ونتيجة لذلك، الاضطراب داخل الخلايا مستوى الكالسيوم 2+ يدفع الحركات خيط عضلي غير طبيعي، والتي هي السلائف من ضعف مقلص وعدم انتظام ضربات القلب 8،9. عوامل كثيرة (كلا الفسيولوجية والمرضية) يمكن أن تكون مصادر تعديلات ما بعد النسخي من البروتينات خيط عضلي، التي تؤثر على خيط عضلي الكالسيوم 2+ التخزين المؤقت وخيط عضلي الكالسيوم 2+ حساسية 8-10. في الآونة الأخيرة، أفيد أن الطفرات في البروتينات خيط عضلي زيادة الكالسيوم 2+ تقارب ملزمة والخلايا معالجة الكالسيوم 2+، مما اثار التقوية التي تعتمد على وقفة من الكالسيوم 2+ العابرين، والشاذ الكالسيوم 2+ الإفراج عنهم، وعدم انتظام ضربات القلب 8. وتماشيا مع هذا المفهوم، لقد أظهرنا أيضا أن خيط عضلي الكالسيوم 2+ الحساسية في قلوب الفئران ارتفاع ضغط الدم الثانوي ليصل تنظيم الخلايا العصبية سينسيز أكسيد النيتريك يرتبط ضغط الدم الانبساطي مرتفعة والانقباضي الكالسيوم 2+ المستويات11، والذي بدوره يزيد من ضعف LTCC إلى الكالسيوم 2+ تثبيط معتمد على 12. وبالتالي، حساسية خيط عضلي الكالسيوم 2+ هو منظم "نشطا" من الكالسيوم داخل الخلايا 2+ التوازن والعضلية وظيفة مقلص. أصبح من الضروري لتحليل التفاعلات بين خيط عضلي والكالسيوم 2+ التعامل مع البروتينات لتحقيق شامل في العضلية اقتران EC وظيفة القلب.

هنا، نحن تصف البروتوكول الذي يقيم التغييرات من حساسية خيط عضلي الكالسيوم 2+ في myocytes القلب المعزولة. تحليل شامل للالكالسيوم داخل الخلايا 2+ الشخصي، وخيط عضلي الكالسيوم 2+ حساسية والانكماش كشف آليات جديدة الميكانيكا عضلة القلب الكامنة.

Protocol

البروتوكول هو وفقا لدليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية التي نشرتها المعاهد الوطنية للأمم المتحدة للصحة (NIH المنشور رقم 85-23، منقحة 1996). تم الموافقة عليها من قبل اللجنة الحيوان الرعاية المؤسسية والاستخدام (IACUC) من جامعة سيول الوطنية (موافقة IACUC أي: جامعة سول الوطن?…

Representative Results

يتم عزل myocytes LV من قلوب الفئران العادية وارتفاع ضغط الدم. تعتبر myocytes على شكل قضيب مع التصدعات واضحة (تمثل ساركومير) وتقلصات مستقرة وردا على التحفيز المجال ليكون myocytes الأمثل ويتم اختيارها للتسجيلات (الشكل 2A). في المثال الموضح في F igure 2A،</stro…

Discussion

هنا، نحن تصف بروتوكولات لتقييم التغيرات من حساسية خيط عضلي الكالسيوم 2+ في واحدة العضلية القلبية معزولة والتأكيد على أهمية قياس هذه المعلمة إلى جانب الخصائص الكهربية، الكالسيوم داخل الخلايا 2+ العابرين، وديناميات خيط عضلي. وذلك لأن التسجيلات واحدة أو اثن…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا البحث من قبل برنامج أبحاث العلوم الأساسية من خلال المؤسسة الوطنية للبحوث كوريا (جبهة الخلاص الوطني) بتمويل من وزارة التربية والتعليم والعلوم والتكنولوجيا (2013068067). بواسطة برنامج الدراسات العليا في الدماغ كوريا 21 من وزارة الكورية التعليم والعلوم والتكنولوجيا ومستشفى جامعة سيول الوطنية، والجمعية الكورية لارتفاع ضغط الدم (2013)، وصندوق البحوث للاتصالات SK (رقم 3420130290) ومن المؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين (NSFC 31460265، 81260035 NSFC).

Materials

Sprague Dawley rat Koatech 8-12 weeks
Pentobarbital Sodium Hanlim Pharmaceutical (Korea) AHN901 Insurance code:645301220
NaCl Sigma S9625
KCl Sigma P4504
NaH2PO4 Sigma S8282
HEPES Sigma H3375
Glucose Sigma G8270
CaCl2 Biosesang C2002
MgCl2 Biosesang M2001
Mannitol Sigma M4125
MgSO4 Sigma M5921
Sodium Pyruvate Sigma P2256
Taurine Merck 8.08616.1000
Na2HPO Sigma 71649
Bovine Fetal Albumin Sigma A7906
Collagenase Type 2 Worthington LS004177
Protease Sigma P6911
Fura-2 (AM) Molecular Probes F1221
Pluronic F127 20% solution in DMSO Invitrogen P3000MP
Shaking Water Bath Chang Shin Scientific Model: C-108
IonWizard Softwae Suite IonOptix Ltd Experimental Builder Acquisition and Analysis of EC Coupling Data in Myocytes
Myocyte Calcium & Contractility Recording System IonOptix Ltd
Circulating Water Bath BS-Tech BW2-8
Myocyte Fluorescence Microscope Nikon DIATPHOTO 200
MyoCam-S Power IonOptix
Fluorescence & Video Detection IonOptix MyoCam-S
CFA300
PMT400
Fluorescence & System Interface IonOptix FSI700
Excitation Light Source IonOptix mSTEP
High intensity ARC Lamp Power supply Cairn Reseach
Filter wheel controller IonOptix GB/MUS200
Digital Stimulator Medical Systems Corportion S-98 Mutimode
Compositions of Experimental Solutions
Name Company Catalog Number Comments
Isolation Solution (pH: 7.4, NaOH)
NaCl Sigma S9625 Concentration (mmol) 135
KCl Sigma P4504 Concentration (mmol) 5.4
HEPES Sigma H3375 Concentration (mmol) 5
Glucose Sigma G8270 Concentration (mmol) 5
MgCl2 Biosesang M2001 Concentration (mmol) 3.5
Taurine Sigma CB2742654 Concentration (mmol) 20
Na2HPO Sigma 71649 Concentration (mmol) 0.4
Storage Solution (pH: 7.4, NaOH)
NaCl Sigma S9625 Concentration (mmol) 120
KCl Sigma P4504 Concentration (mmol) 5.4
HEPES Sigma H3375 Concentration (mmol) 10
Glucose Sigma G8270 Concentration (mmol) 5.5
CaCl2 Biosesang C2002 Concentration (mmol) 0.2
Mannitol Sigma M4125 Concentration (mmol) 29
MgSO4 Sigma M5921 Concentration (mmol) 5
Sodium Pyruvate Sigma P2256 Concentration (mmol) 5
Taurine Sigma CB2742654 Concentration (mmol) 20
Perfusion Solution (Tyrode solution, pH: 7.4, NaOH)
NaCl Sigma S9625 Concentration (mmol) 141.4
KCl Sigma P4504 Concentration (mmol) 4
NaH2PO4 Sigma S8282 Concentration (mmol) 0.33
HEPES Sigma H3375 Concentration (mmol) 10
Glucose Sigma G8270 Concentration (mmol) 5.5
CaCl2 Biosesang C2002 Concentration (mmol) 1.8      For Fura 2AM loading, CaCl2 concentrations are 0.25 mM and 0.5 mM
MgCl2 Biosesang M2001 Concentration (mmol) 1
Mannitol Sigma M4125 Concentration (mmol) 14.5
Collangenase Solution 1
Isolation Solution (30mL)
Bovine Fetal Albumin (BSA solution 5 ml) Concentration (mmol) 1.67 mg/mL
Collagenase Type 2 Worthington LS004177 Concentration (mmol) 1 mg/mL
Protease Sigma P6911 Concentration (mmol) 0.1 mg/mL
CaCl2 Biosesang C2002 Concentration (mmol) 0.05 mM
Collangenase Solution 2
Isolation Solution (20mL)
Bovine Fetal Albumin (BSA solution 3.3 mL) Concentration (mmol) 1.67 mg/mL
Collagenase Type 2 Worthington LS004177 Concentration (mmol) 1 mg/mL
CaCl2 Biosesang C2002 Concentration (mmol) 0.05 mM
BSA solution
Isolation Solution (40mL)
Bovine Fetal Albumin Sigma A7906 Concentration (mmol) 400 mg
CaCl2 Biosesang C2002 Concentration (mmol) 1mM

Riferimenti

  1. Bers, D. M., et al. Cardiac excitation-contraction coupling. Nature. 415 (6868), 198-205 (2002).
  2. Eisner, D. A., et al. Integrative analysis of calcium cycling in cardiac muscle. Circ Res. 87 (12), 1087-1094 (2000).
  3. Palmiter, K. A., et al. Molecular mechanisms regulating the myofilament response to Ca2+: implications of mutations causal for familial hypertrophic cardiomyopathy. Basic Res Cardiol. 92 (S1), 63-74 (1997).
  4. Missiaen, L., et al. Abnormal intracellular Ca2+ homeostasis and disease. Cell Calcium. 28 (1), 1-21 (2000).
  5. Trafford, A. W., et al. A novel, rapid and reversible method to measure Ca buffering and time-course of total sarcoplasmic reticulum Ca content in cardiac ventricular myocytes. Pflugers Arch. 437 (3), 501-503 (1999).
  6. Berlin, J. R., et al. Intrinsic cytosolic calcium buffering properties of single rat cardiac myocytes. Biophys J. 67 (4), 1775-1787 (1994).
  7. Robertson, S. P., et al. The time-course of Ca2+ exchange with calmodulin, troponin, parvalbumin, and myosin in response to transient increases in Ca2+. Biophys J. 34 (3), 559-569 (1981).
  8. Schober, T., et al. Myofilament Ca2+ sensitization increases cytosolic Ca2+ binding affinity, alters intracellular Ca2+ homeostasis, and causes pause-dependent Ca2+-triggered arrhythmia. Circ Res. 112 (2), 170-179 (2012).
  9. Briston, S. J., et al. Balanced changes in Ca buffering by SERCA and troponin contribute to Ca handling during β-adrenergic stimulation in cardiac myocytes. Cardiovasc Res. 104 (2), 347-354 (2014).
  10. Patel, B. G., Wilder, T., John Solaro, R. J., et al. Novel control of cardiac myofilament response to calcium by S-glutathionylation at specific sites of myosin binding protein C. Front Physiol. 4, 336 (2013).
  11. Jin, C. Z., et al. Myofilament Ca2+ desensitization mediates positive lusitropic effect of neuronal nitric oxide synthase in left ventricular myocytes from murine hypertensive heart. J Mol Cell Cardiol. 60, 107-115 (2013).
  12. Wang, Y., et al. Modulation of L-type Ca2+ channel activity by neuronal nitric oxide synthase and myofilament Ca2+ sensitivity in cardiac myocytes from hypertensive rat. Cell Calcium. 58 (3), 264-274 (2015).
  13. Louch, W. E., Sheehan, K. A., Wolska, B. M., et al. Methods in cardiomyocyte isolation, culture, and gene transfer. J Mol Cell Cardiol. 51 (3), 288-298 (2011).
  14. Spurgeon, H. A., et al. Cytosolic calcium and myofilaments in single rat cardiac myocytes achieve a dynamic equilibrium during twitch relaxation. J Physiol. 447, 83-102 (1992).
  15. Preston, L. C., et al. Functional effects of the DCM mutant Gly159Asp troponin C in skinned muscle fibres. Pflugers Arch. 453 (6), 771-776 (2007).
  16. Willott, R. H., et al. Mutations in Troponin that cause HCM, DCM AND RCM: what can we learn about thin filament function?. J Mol Cell Cardiol. 48 (5), 882-892 (2010).
  17. Yasuda, S. I., et al. A novel method to study contraction characteristics of a single cardiac myocyte using carbon fibers. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 281 (3), H1442-H1446 (2001).
  18. Sears, C. E., et al. Cardiac neuronal nitric oxide synthase isoform regulates myocardial contraction and calcium handling. Circ Res. 92 (5), e52-e59 (2003).
  19. Ashley, E. A., et al. Cardiac nitric oxide synthase 1 regulates basal and beta-adrenergic contractility in murine ventricular myocytes. Circulation. 105 (25), 3011-3016 (2002).
  20. Zhang, Y. H., et al. Reduced phospholamban phosphorylation is associated with impaired relaxation in left ventricular myocytes from neuronal NO synthase-deficient mice. Circ Res. 102 (2), 242-249 (2008).
  21. Roe, M. W., Lemasters, J. J., Herman, B., et al. Assessment of Fura-2 for measurements of cytosolic free calcium. Cell Calcium. 11 (2-3), 63-73 (1990).
  22. Grynkiewicz, G., et al. A new generation of Ca2+ indicators with greatly improved fluorescence properties. J Biol Chem. 260 (6), 3440-3450 (1985).
check_url/it/54057?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Zhao, Z. H., Jin, C. L., Jang, J. H., Wu, Y. N., Kim, S. J., Jin, H. H., Cui, L., Zhang, Y. H. Assessment of Myofilament Ca2+ Sensitivity Underlying Cardiac Excitation-contraction Coupling. J. Vis. Exp. (114), e54057, doi:10.3791/54057 (2016).

View Video