Summary

إعداد و<em> في فيفو</em> استخدام من التحقيق على أساس آخر ل<em> N</em> -acylethanolamine حمض أميداز

Published: November 23, 2016
doi:

Summary

هنا، نحن تصف إعداد واستخدام مسبار على أساس النشاط (ARN14686، undec-10-ynyl- N – [(3 S) -2-oxoazetidin-3-YL] الكرباماتية) التي تسمح للكشف والقياس الكمي ل الشكل النشط من الانزيم proinflammatory N أميداز حمض -acylethanolamine (ناا)، سواء في المختبر والمجراة سابقا.

Abstract

على أساس النشاط التنميط البروتين (ABPP) هو وسيلة للتعرف على انزيم من الفائدة في بروتيوم معقدة من خلال استخدام مسبار الكيميائية التي تستهدف مواقع الإنزيم النشط. علامة مراسل أدخلت على التحقيق تسمح للكشف عن الإنزيم المسمى عن طريق المسح الضوئي في جل مضان، وصمة عار البروتين، المجهري مضان، أو السائل الطيف اللوني الشامل. هنا، نحن تصف إعداد واستخدام ARN14686 المجمع، تحقيقا على أساس النشاط بنقرة والكيمياء (CC-برنامج الجسر الأكاديمي) أن تعترف بشكل انتقائي الانزيم N أميداز حمض -acylethanolamine (ناا). ناا هو هيدرولاز السيستين الذي يعزز الالتهاب عن طريق إلغاء تنشيط مستقبلات الذاتية تنشيط ناشر-بيروكسية (PPAR) منبهات -alpha مثل palmitoylethanolamide (PEA) وoleoylethanolamide (أويا). ويتم تصنيع ناا باعتبارها proenzyme كامل طول الخاملة، التي يتم تفعيلها من خلال تحلل بروتيني ذاتي في درجة الحموضة الحامضية لليحلول. دراسات الترجمة حافي أظهرت أن ناا وأعرب في الغالب في الضامة وغيرها من الخلايا المشتقة الوحيدات، وكذلك في B-الخلايا الليمفاوية. نحن نقدم أمثلة على الكيفية التي يمكن أن تستخدم ARN14686 لكشف وتحديد نشط ناا فيفو السابقين في أنسجة القوارض لطخة البروتين والفحص المجهري مضان.

Introduction

يشيع استخدامها أساليب للتحقيق في أنماط التعبير، والتفاعلات، وظائف البروتينات، بما في ذلك منصات الطيف اللوني الشامل السائل لتحليل طلقات نارية 1،2، الخميرة أساليب اثنين هجينة 3،4، وفي فحوصات المختبر، تقتصر في أن تكون غير قادر على تقييم نشاط البروتينات في حالتها الأصلية. على أساس النشاط بروتين التنميط (ABPP) يمكن استخدامها لملء هذه الفجوة. في هذا النهج، جزيء صغير يسبر قادرة على ملزمة تساهميا إلى موقع نشط من انزيم من الفائدة مترافق إلى مجموعة المراسل أن يسمح للكشف عن الهدف. عن طريق النقر الكيمياء (CC)، لمراسل ويمكن دمجها في التحقيق أو يمكن إدخال بعد الاشتباك الهدف حدث 5،6. يتطلب الإجراء الأخير استخدام المجسات التي تحتوي على مجموعات كيميائية مناسبة، مثل آلكاين محطة أو أزيد، والتي يمكن تعديلها مع عدد من الكواشف مراسل عبر التفاعلات الحيوية متعامد يمثح باسم النحاس (I) -catalyzed Huisgen [3 + 2] cycloaddition 7-9 أو شتاودينغر ربط 10،11.

في الآونة الأخيرة، ونحن الكشف عن ARN14686 مركب مثل برنامج الجسر الأكاديمي الأول للفي التجارب المختبرية وكشف الجسم الحي من هيدرولاز السيستين، ناا 12. ناا يحفز التعطيل حلمهي من القوات المسلحة المشبعة وغير المشبعة الاحادية، بما في ذلك oleoylethanolamide (أويا) وpalmitoylethanolamide (PEA)، والتي هي محفزات الذاتية للالمضادة للالتهابات مستقبل نووي PPAR ألفا 13-15. وأعرب عن ناا في الغالب في الضامة وغيرها من الخلايا المشتقة الوحيدات، وكذلك في B-الخلايا الليمفاوية 14،16، مما يشير إلى دور في تنظيم الاستجابة المناعية الفطرية. يتم تصنيعه الانزيم في الشبكة الإندوبلازمية الخام في شكل غير نشط ويتم تنشيط في مقصورات الحمضية من الخلية بواسطة آلية autoproteolytic 17. الانقسام autoproteolytic يولد N السيستين -terminal الجديدة (C131 في الفئران والجرذان، C126 في البشر)، وهذا هو المسؤول النيوكليوفيل لFAE التحلل 18،19. تثبيط الدوائية النشاط ناا يغير FAE التوازن التوليف / تدهور لصالح زيادة مستويات الخلايا من القوات المسلحة 16،20،21. وقد ثبت عدة β-اكتون وβ لاكتام المشتقات لكبح النشاط ناا مع قوة عالية والانتقائية 16،22-26. هذه المثبطات تعمل من خلال S -acylation من السيستين الحفازة 16،27،28.

تم تصميم ARN14686 مركب على أساس التركيب الكيميائي للالنشطة للنظام، المستمدة سيرين β لاكتام ناا المانع، ARN726 (4 cyclohexylbutyl- N[(S) -2-oxoazetidin-3-YL] الكرباماتية) 16. تم استبدال مجموعة 4-بوتيل cyclohexyl من ARN726 مع سلسلة الأليفاتية المشبعة C9 تحمل علامة آلكاين محطة لتصريف CC لاحق مع علامة مراسل أزيد الحمل. لقد اخترنا لتصميم برنامج الجسر الأكاديمي من خطوتين لminimallذ تغيير هيكل السقالة الأصلية، وبالتالي الحفاظ على تقارب لجنة التحقيق لناا. وعلاوة على ذلك، وتجنب إدخال علامات ضخمة، يمكن لمثل هذا التحقيق أن يكون أكثر مناسبة لتلقي العلاج في الجسم الحي من برنامج الجسر الأكاديمي المباشر. ARN14686 يمنع ناا مع قوة عالية (hNAAA IC 50 = 6 نيوتن متر، rNAAA IC 50 = 13 نانومتر) من خلال تشكيل ناتج إضافة التساهمية مع السيستين الحفاز للانزيم 12. وأظهرت التجارب على الفئران الحية أن التحقيق هو انتقائية في التقاط أعرب ناا في الرئتين. وقد تم تحديد حمض سيراميداز، أميداز السيستين آخر يتقاسم الهوية 33-34٪ مع ناا، أيضا كهدف تقارب منخفضة عند استخدام تركيزات عالية من التحقيق (10 ميكرومتر في المختبر، 10 ملغ / مل في الوريد، والرابع) 12. وقد استخدمنا أيضا ARN14686 لدراسة وجود ناا فعال في أنسجة الفئران الملتهبة التالية إدارة مساعد الكامل فرويند (CFA) 29.

هنا، ونحن الخطوط العريضة لبروتوكول لpreparatiعلى من ARN14686 (الشكل 1) وتطبيقه على التحقيق في تفعيل ناا خارج الحي. وكمثال على ذلك، نحن تصف الإجراء التجريبي لتصور ناا في الكفوف الفئران بعد تناوله CFA. في هذه التجربة، يتم استخراج البروتينات من الأنسجة مخلب بعد حقن الرابع لجنة التحقيق، ويتعرض بروتيوم المسمى برنامج الجسر الأكاديمي إلى CC مع البيوتين أزيد. يتم إثراء عينات المعقدة البيروكسيديز باستخدام الخرز streptavidin، ويتم تنفيذ البقع البروتين. في تطبيق آخر، وصفنا توطين ناا نشط بواسطة المجهر مضان في الرئتين الماوس من الفئران المعالجة التحقيق. في هذه الحالة، يتم مقطوع الأنسجة ويتعرضون أقسام إلى CC لإضافة رودامين. ويتضح مخطط سير العمل في الشكل 2.

Protocol

تحذير: يجب أن يتولى جميع التفاعلات الكيميائية في غطاء الدخان التهوية ومع استخدام معطف المختبر، والقفازات، ونظارات واقية. وينبغي أن يتم ردود الفعل أيضا في بيئة النيتروجين. بيان الأخلاقي: اجراءاتنا التي تنطوي على الحيوانات تتم وفقا للوائح الإيطالية على…

Representative Results

وقد تم تصميم ARN14686 بناء على سقالة من المانع ARN726 ناا. تم استبدال مجموعة 4-بوتيل cyclohexyl من ARN726 مع سلسلة الأليفاتية المشبعة C9 تحمل علامة آلكاين محطة (الشكل 1). وقدم العلامة آلكاين من أجل السماح باستخدام إجراء وضع العلامات من خطوتين لإضافة fluorophore أو…

Discussion

وينظم نشاط انزيم بدقة على مختلف المستويات، بما في ذلك النسخ RNA، تخليق البروتين، النبات البروتين، وتعديل ما بعد متعدية، وتفاعل البروتين البروتين. في كثير من الأحيان، والتعبير انزيم وحده لا يفسر لنشاطها. وقد وضعت ABPP لدراسة نشاط البروتينات في حالتها الأصلية. مطلوبة سمت…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank the Nikon Imaging Center at Istituto Italiano di Tecnologia, Genova, Italy (NIC@IIT).

Materials

1,1’-sulfonyldiimidazole  Sigma Aldrich 367818 Harmful
2-dipyridylcarbonate Fluorochem 11331 Harmful
2-Methylbutan Sigma Aldrich M32631 Flamable, toxic,hazardous to the aquatic environment
4-(Dimethylamino)pyridine Sigma Aldrich 107700 Toxic
Acetic acid Sigma Aldrich 695092 Flammable, Corrosive
Acetonitrile  Sigma Aldrich 34998 Flammable, Toxic
Activated charcoal Sigma Aldrich 161551
Ammonium chloride Sigma Aldrich A9434 Harmful
Azide-PEG3-Biotin Jena Biosciences CLK-AZ104P4
Azide-PEG3-Fluor 545 Jena Biosciences CLK-AZ109
BCA protein assay kit Thermo Fisher Scientific 23227
Bio-spin columns Biorad 732-6204
Biotin Sigma Aldrich B4501
Blocking buffer Li-Cor Biosciences 927-40000
b-mercaptoethanol Sigma Aldrich M6250 Higly toxic
Bovin serum albumine (BSA) Sigma Aldrich A7030
Bromophenol blue Sigma Aldrich B0126
Bruker Avance III 400 Bruker
Celite Sigma Aldrich 419931 Health hazard
Ceric ammonium nitrate  Sigma Aldrich 22249 Oxidizing, Harmful
Chloral hydrate Sigma Aldrich C8383 Higly toxic
CuSO4.5H2O  Sigma Aldrich 209198 Toxic
Cyclohexadiene Sigma Aldrich 125415 Flammable, Health hazard
Cyclohexane Sigma Aldrich 34855 Flammable, Harmful, Health hazard, Environmental hazard
Dichloromethane Sigma Aldrich 34856 Harmful, Health hazard
Diethyl ether Sigma Aldrich 296082 Flammable, Harmful
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Acros Organics 348441000
Dimethyl sulfoxide d6 (DMSO-d6) Sigma Aldrich 175943
Ethanol Sigma Aldrich 2860 Flammable, Harmful
Ethyl acetate Sigma Aldrich 34858 Flammable, Harmful
Glycerol Sigma Aldrich G5516
Irdye 680-LT Streptavidin Li-Cor Biosciences 925-68031
IRDye680-LT Streptavidin  Licor 925-68031 Briefly centrifuge before use to precipitate protein complexes
Methanol Sigma Aldrich 34966 Highly toxic
Methanol Sigma Aldrich 34860 Flammable, Toxic, Health hazard
N-(3-Dimethylaminopropyl)-N′-ethylcarbodiimide hydrochloride Sigma Aldrich E7750 Harmful, Corrosive
N,N-diisopropylethylamine Sigma Aldrich D125806 Flammable, Corrosive, Toxic
N,N-dimethylformamide Sigma Aldrich 227056 Flammable, Harmful, Health hazard
N-Cbz-L-Serine Fluorochem  M03053 Harmful
Nikon A1 confocal microscopy Nikon Read  the user manual
NuPAGE 4-12% Bis-Tris gel Thermo Fisher Scientific NP0335BOX
Palladium on carbon Sigma Aldrich 330108
p-anisidine Sigma Aldrich A88255 Toxic, Health hazard, Environmental hazard
Paraformaldehyde sigma Aldrich 441244 Toxic, respiratory harmful, corrosive, falmable
Poly(ethylene glycol)  Sigma Aldrich P3265
ProLong Gold antifade mountant with DAPI  Thermo Fisher Scientific P36931 Avoid bubbles formation
Protease inhibitor cocktail Sigma Aldrich P8340
Sodium bicarbonate Sigma Aldrich S6014
Sodium dodecyl sulfate (SDS)  Sigma Aldrich L3771 Toxic, corrosive, falmmable
Sodium hydride  Sigma Aldrich 452912 Flammable
Sodium sulfate Sigma Aldrich 239313
Starion FLA-9000 immage scanner FUJIFILM Read  the user manual
Streptavidin agarose Thermo Fisher Scientific 20349
Sucrose Sigma Aldrich S7903
Tert-butanol Sigma Aldrich 360538 Toxic, flammable
Tetrahydrofuran Sigma Aldrich 186562 Flammable, Harmful, Health hazard
Thiourea Acros Organics 424542500 Toxic, warm at 50 °C to dissolve
Tris Sigma Aldrich RDD008
Tris(2-carboxyethyl)phosphine (TCEP) Sigma Aldrich C4706
Tris[(1-benzyl-1H-1,2,3-triazol-4-yl)methyl]amine (TBTA) Sigma Aldrich 678937
Triton-x100 Sigma Aldrich X100 Toxic
Tween-20 Sigma Aldrich P9416
Tween-80 Sigma Aldrich P1754
Ultra turrax IKA T18 basic tissue homogenizer IKA
Undec-10-yn-1-ol Fluorochem 13739 Harmful
Urea Sigma Aldrich U5378 Toxic, warm at 50 °C to dissolve

Riferimenti

  1. Gygi, S. P., Han, D. K., Gingras, A. C., Sonenberg, N., Aebersold, R. Protein analysis by mass spectrometry and sequence database searching: tools for cancer research in the post-genomic era. Electrophoresis. 20, 310-319 (1999).
  2. Washburn, M. P., Wolters, D., Yates, J. R. Large-scale analysis of the yeast proteome by multidimensional protein identification technology. Nat Biotechnol. 19, 242-247 (2001).
  3. Zhu, H., Bilgin, M., Snyder, M. Proteomics. Annu Rev Biochem. 72, 783-812 (2003).
  4. Ito, T., et al. Roles for the two-hybrid system in exploration of the yeast protein interactome. Mol Cell Proteomics. 1, 561-566 (2002).
  5. Evans, M. J., Cravatt, B. F. Mechanism-based profiling of enzyme families. Chem Rev. 106, 3279-3301 (2006).
  6. Cravatt, B. F., Wright, A. T., Kozarich, J. W. Activity-based protein profiling: from enzyme chemistry to proteomic chemistry. Annu Rev Biochem. 77, 383-414 (2008).
  7. Rostovtsev, V. V., Green, L. G., Fokin, V. V., Sharpless, K. B. A stepwise huisgen cycloaddition process: copper(I)-catalyzed regioselective “ligation” of azides and terminal alkynes. Angew Chem Int Ed Engl. 41, 2596-2599 (2002).
  8. Meldal, M., Tornoe, C. W. Cu-catalyzed azide-alkyne cycloaddition. Chem Rev. 108, 2952-3015 (2008).
  9. Speers, A. E., Adam, G. C., Cravatt, B. F. Activity-based protein profiling in vivo using a copper(i)-catalyzed azide-alkyne [3 + 2] cycloaddition. J Am Chem Soc. 125, 4686-4687 (2003).
  10. Saxon, E., Bertozzi, C. R. Cell surface engineering by a modified Staudinger reaction. Science. 287, 2007-2010 (2000).
  11. Kohn, M., Breinbauer, R. The Staudinger ligation-a gift to chemical biology. Angew Chem Int Ed Engl. 43, 3106-3116 (2004).
  12. Romeo, E., et al. Activity-Based Probe for N-Acylethanolamine Acid Amidase. ACS Chem Biol. 10, 2057-2064 (2015).
  13. Ueda, N., Yamanaka, K., Yamamoto, S. Purification and characterization of an acid amidase selective for N-palmitoylethanolamine, a putative endogenous anti-inflammatory substance. J Biol Chem. 276, 35552-35557 (2001).
  14. Tsuboi, K., et al. Molecular characterization of N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase, a novel member of the choloylglycine hydrolase family with structural and functional similarity to acid ceramidase. J Biol Chem. 280, 11082-11092 (2005).
  15. Tsuboi, K., Takezaki, N., Ueda, N. The N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase (NAAA). Chem Biodivers. 4, 1914-1925 (2007).
  16. Ribeiro, A., et al. A Potent Systemically Active N-Acylethanolamine Acid Amidase Inhibitor that Suppresses Inflammation and Human Macrophage Activation. ACS Chem Biol. 10, 1838-1846 (2015).
  17. Zhao, L. Y., Tsuboi, K., Okamoto, Y., Nagahata, S., Ueda, N. Proteolytic activation and glycosylation of N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase, a lysosomal enzyme involved in the endocannabinoid metabolism. Biochim Biophys Acta. 1771, 1397-1405 (2007).
  18. Wang, J., et al. Amino acid residues crucial in pH regulation and proteolytic activation of N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase. Biochim Biophys Acta. 1781, 710-717 (2008).
  19. West, J. M., Zvonok, N., Whitten, K. M., Wood, J. T., Makriyannis, A. Mass spectrometric characterization of human N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase. J Proteome Res. 11, 972-981 (2012).
  20. Bandiera, T., Ponzano, S., Piomelli, D. Advances in the discovery of N-acylethanolamine acid amidase inhibitors. Pharmacol Res. 86, 11-17 (2014).
  21. Sasso, O., et al. Antinociceptive effects of the N-acylethanolamine acid amidase inhibitor ARN077 in rodent pain models. Pain. 154, 350-360 (2013).
  22. Duranti, A., et al. N-(2-oxo-3-oxetanyl)carbamic acid esters as N-acylethanolamine acid amidase inhibitors: synthesis and structure-activity and structure-property relationships. J Med Chem. 55, 4824-4836 (2012).
  23. Ponzano, S., et al. Synthesis and structure-activity relationship (SAR) of 2-methyl-4-oxo-3-oxetanylcarbamic acid esters, a class of potent N-acylethanolamine acid amidase (NAAA) inhibitors. J Med Chem. 56, 6917-6934 (2013).
  24. Solorzano, C., et al. Synthesis and structure-activity relationships of N-(2-oxo-3-oxetanyl)amides as N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase inhibitors. J Med Chem. 53, 5770-5781 (2010).
  25. Vitale, R., et al. Synthesis, structure-activity, and structure-stability relationships of 2-substituted-N-(4-oxo-3-oxetanyl) N-acylethanolamine acid amidase (NAAA) inhibitors. ChemMedChem 9. 9, 323-336 (2014).
  26. Fiasella, A., et al. 3-Aminoazetidin-2-one derivatives as N-acylethanolamine acid amidase (NAAA) inhibitors suitable for systemic administration. ChemMedChem 9. 9, 1602-1614 (2014).
  27. Armirotti, A., et al. beta-Lactones Inhibit N-acylethanolamine Acid Amidase by S-Acylation of the Catalytic N-Terminal Cysteine. ACS Med Chem Lett. 3, 422-426 (2012).
  28. Nuzzi, A., et al. Potent alpha-amino-beta-lactam carbamic acid ester as NAAA inhibitors. Synthesis and structure-activity relationship (SAR) studies. Eur J Med Chem. 111, 138-159 (2016).
  29. Bonezzi, F. T., et al. An Important Role for N-Acylethanolamine Acid Amidase in the Complete Freund’s Adjuvant Rat Model of Arthritis. J Pharmacol Exp Ther. 356, 656-663 (2016).
  30. Smith, P. K., et al. Measurement of protein using bicinchoninic acid. Anal Biochem. 150, 76-85 (1985).
  31. Speers, A. E., Cravatt, B. F. Activity-Based Protein Profiling (ABPP) and Click Chemistry (CC)-ABPP by MudPIT Mass Spectrometry. Curr Protoc Chem Biol. 1, 29-41 (2009).
  32. Rybak, J. N., Scheurer, S. B., Neri, D., Elia, G. Purification of biotinylated proteins on streptavidin resin: a protocol for quantitative elution. Proteomics. 4, 2296-2299 (2004).
  33. Penna, A., Cahalan, M. Western Blotting using the Invitrogen NuPage Novex Bis Tris minigels. J Vis Exp. (264), (2007).
  34. Giuffrida, A., Piomelli, D. Isotope dilution GC/MS determination of anandamide and other fatty acylethanolamides in rat blood plasma. FEBS Lett. 422, 373-376 (1998).
  35. Buczynski, M. W., Parsons, L. H. Quantification of brain endocannabinoid levels: methods, interpretations and pitfalls. Br J Pharmacol. 160, 423-442 (2010).

Play Video

Citazione di questo articolo
Romeo, E., Pontis, S., Ponzano, S., Bonezzi, F., Migliore, M., Di Martino, S., Summa, M., Piomelli, D. Preparation and In Vivo Use of an Activity-based Probe for N-acylethanolamine Acid Amidase. J. Vis. Exp. (117), e54652, doi:10.3791/54652 (2016).

View Video