Summary

подготовки и<em> В Vivo</em> Использование тестовое активность на основе для<em> N</em> -acylethanolamine Кислота амидазные

Published: November 23, 2016
doi:

Summary

Здесь мы описываем получение и использование одного из видов деятельности на основе зонда (ARN14686, ундец-10-ynyl- N – [(3 S) -2-оксоазетидин-3-ил] карбамат) , что позволяет обнаруживать и количественное активная форма фермента провоспалительных N амидазы -acylethanolamine кислоты (NAAA), как в пробирке и экс естественных условиях.

Abstract

Деятельность на основе белка профилирование (ABPP) представляет собой способ идентификации фермента интерес в сложном протеома за счет использования химического зонда, который нацелен активных участков фермента. Репортер тег введен в зонд позволяет для обнаружения меченого фермента в геле сканирования флуоресценции, белка-блот, флуоресцентной микроскопии, или жидкостной хроматографии-масс-спектрометрии. Здесь мы опишем приготовление и применение соединения ARN14686, химии кликах на основе зонда (CC-ABP) , который селективно распознает фермент N амидазу -acylethanolamine кислоты (Naaa). NAAA представляет собой цистеин гидролазная, что способствует воспаление деактивируя эндогенные активатора пролиферации пероксисом рецептора (PPAR) -альфа агонисты, такие как пальмитоилэтаноламид (ПЭА) и oleoylethanolamide (OEA). NAAA синтезируется как неактивный полнометражного профермента, который активируется autoproteolysis в кислом рН лизосом. Локализация исследования чпр показано, что NAAA преимущественно экспрессируется в макрофагах и других моноцитарных клеток, а также в В-лимфоцитов. Мы приводим примеры того , как ARN14686 могут быть использованы для обнаружения и количественного определения активного Naaa исключая виво в тканях грызунов с помощью белков – блоттинга и флуоресцентной микроскопии.

Introduction

Обычно используемые методы для изучения паттернов экспрессии, взаимодействия и функции белков, в том числе для жидкостной хроматографии-масс – спектрометрии платформ для анализа дробовика 1,2, дрожжи двух гибридных методов 3,4, а в анализах пробирке, ограничены в том , что они не в состоянии оценить активность белков в их нативном состоянии. Деятельность на основе белка профилирование (ABPP) может быть использован, чтобы заполнить этот пробел. При таком подходе, малые молекулы зондов способна ковалентного связывания с активным участком фермента, представляющего интерес, конъюгированного с репортером группы, что позволяет обнаруживать мишени. С помощью химии щелчок (CC), репортер может быть встроен в зонд или может быть введен после того, как поражение цели произошло 5,6. Последняя процедура требует использования зондов, содержащих соответствующие химические группы, такие как терминальное алкина или азида, который может быть модифицирован с рядом репортерных реагентов с помощью био-ортогональный реакций SUCч как Cu (I) -catalyzed Huisgen [3 + 2] циклоприсоединения 7-9 или Штаудингер лигирование 10,11.

Недавно мы раскрыли соединение ARN14686 в качестве первого АВР для в пробирке и в естественных условиях обнаружения цистеина гидролазы, Naaa 12. NAAA катализирует гидролитическое дезактивацию насыщенных и мононенасыщенных Faes, включая oleoylethanolamide (OEA) и пальмитоилэтаноламид (ПЭА), которые являются эндогенными агонистами противовоспалительного ядерных рецепторов PPAR-альфа 13-15. NAAA преимущественно экспрессируется в макрофагах и других моноцитарных клеток, а также в В-лимфоцитов 14,16, что указывает на роль в регуляции врожденной иммунной реакции. Фермент синтезируется в шероховатой эндоплазматической сети в неактивной форме и активируется в кислой отсеках клетки с помощью autoproteolytic механизма 17. Autoproteolytic расщепления генерирует новый N – терминальном цистеин (C131 у мышей и крыс, C126 в организме человека), который является ответственным за нуклеофил FAE гидролиз 18,19. Фармакологическое ингибирование активности Naaa изменяет FAE баланс синтеза / деградации в пользу увеличения клеточных уровней Faes 16,20,21. Несколько производных β-лактон и β-лактамные было показано ингибировать активность Naaa с высокой активностью и селективностью 16,22-26. Эти ингибиторы действуют через S -acylation каталитического цистеина 16,27,28.

Соединение ARN14686 был разработан на основе химической структуры активного системно, серин полученный ингибитор β-лактамным Naaa, ARN726 (4-cyclohexylbutyl- N[(S) -2-оксоазетидин-3-ил] карбамата) 16. 4-бутил-циклогексил группа ARN726 была заменена С9 насыщенной алифатической цепи, несущего концевой алкиновой метку для последующего CC конъюгации с репортером меткой азид-подшипника. Мы решили разработать двухступенчатую АВР для minimallY изменяют структуру исходного помост, сохраняя тем самым сродство зонда для Naaa. К тому же , избегая введения громоздких тегов, такой зонд может быть более подходящим для лечения в естественных условиях , чем прямое АБП. ARN14686 ингибирует Naaa с высокой активностью (hNAAA IC 50 = 6 нМ, rNAAA IC 50 = 13 нМ) путем образования ковалентной аддукта с каталитической цистеина фермента 12. Эксперименты в живых крысах показали, что зонд является селективным в захвате NAAA выражается в легких. Кислота ceramidase, еще один цистеин амидазы , который разделяет 33-34% идентичность с Naaa, также был идентифицирован как мишень с низкой аффинности при использовании высоких концентраций зонда (10 мкМ в пробирке, 10 мг / мл для внутривенного введения, внутривенно) 12. Мы также использовали ARN14686 изучить наличие активного Naaa в воспаленных тканях крыс после введения адъюванта Фрейнда (CFA) 29.

Здесь мы приводим протокол для препаратов в базе данныхна из ARN14686 (рисунок 1) и его применение к исследованию активации Naaa экс естественных условиях. В качестве примера, мы опишем экспериментальную процедуру визуализации Naaa в лапы крыс после введения CFA. В этом эксперименте белки извлекают из ткани лапы после инъекции зонда, и АБП-меченых протеом подвергают КХ с биотин-азида. Биотинилированные образцы обогащены с использованием стрептавидином бусинки, и белковые кляксы выполняются. В другом приложении мы описываем локализацию активного Naaa с помощью флуоресцентной микроскопии в легких мышей из зондовых обработанных мышей. В этом случае ткань секционного и секции подвергаются CC для родамина дополнение. Схема рабочего процесса показана на рисунке 2.

Protocol

Внимание: Все реакции химии должны проводиться в вентилируемом вытяжном шкафу и с использованием лаборатории пальто, перчатки и защитные очки. Реакции должны быть также проведены в атмосфере азота. Этическое заявление: Наши процедуры с участием животных осуществляется в соответствии с итал?…

Representative Results

ARN14686 был разработан на основе эшафот ингибитора ARN726 Naaa. 4-бутил-циклогексил группа ARN726 была замещена С9 насыщенной алифатической цепью , несущей концевой алкиновой тег (рисунок 1). Алкиновая тег был введен для того, чтобы разрешить использование процедуры марк?…

Discussion

Ферментативная активность тонко регулируется на различных уровнях, в том числе транскрипции РНК, синтез белка, транслокация белка, пост-трансляционной модификации и белок-белковых взаимодействий. Часто, экспрессия фермента в одиночку не учитывает его деятельности. ABPP была разработан…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank the Nikon Imaging Center at Istituto Italiano di Tecnologia, Genova, Italy (NIC@IIT).

Materials

1,1’-sulfonyldiimidazole  Sigma Aldrich 367818 Harmful
2-dipyridylcarbonate Fluorochem 11331 Harmful
2-Methylbutan Sigma Aldrich M32631 Flamable, toxic,hazardous to the aquatic environment
4-(Dimethylamino)pyridine Sigma Aldrich 107700 Toxic
Acetic acid Sigma Aldrich 695092 Flammable, Corrosive
Acetonitrile  Sigma Aldrich 34998 Flammable, Toxic
Activated charcoal Sigma Aldrich 161551
Ammonium chloride Sigma Aldrich A9434 Harmful
Azide-PEG3-Biotin Jena Biosciences CLK-AZ104P4
Azide-PEG3-Fluor 545 Jena Biosciences CLK-AZ109
BCA protein assay kit Thermo Fisher Scientific 23227
Bio-spin columns Biorad 732-6204
Biotin Sigma Aldrich B4501
Blocking buffer Li-Cor Biosciences 927-40000
b-mercaptoethanol Sigma Aldrich M6250 Higly toxic
Bovin serum albumine (BSA) Sigma Aldrich A7030
Bromophenol blue Sigma Aldrich B0126
Bruker Avance III 400 Bruker
Celite Sigma Aldrich 419931 Health hazard
Ceric ammonium nitrate  Sigma Aldrich 22249 Oxidizing, Harmful
Chloral hydrate Sigma Aldrich C8383 Higly toxic
CuSO4.5H2O  Sigma Aldrich 209198 Toxic
Cyclohexadiene Sigma Aldrich 125415 Flammable, Health hazard
Cyclohexane Sigma Aldrich 34855 Flammable, Harmful, Health hazard, Environmental hazard
Dichloromethane Sigma Aldrich 34856 Harmful, Health hazard
Diethyl ether Sigma Aldrich 296082 Flammable, Harmful
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Acros Organics 348441000
Dimethyl sulfoxide d6 (DMSO-d6) Sigma Aldrich 175943
Ethanol Sigma Aldrich 2860 Flammable, Harmful
Ethyl acetate Sigma Aldrich 34858 Flammable, Harmful
Glycerol Sigma Aldrich G5516
Irdye 680-LT Streptavidin Li-Cor Biosciences 925-68031
IRDye680-LT Streptavidin  Licor 925-68031 Briefly centrifuge before use to precipitate protein complexes
Methanol Sigma Aldrich 34966 Highly toxic
Methanol Sigma Aldrich 34860 Flammable, Toxic, Health hazard
N-(3-Dimethylaminopropyl)-N′-ethylcarbodiimide hydrochloride Sigma Aldrich E7750 Harmful, Corrosive
N,N-diisopropylethylamine Sigma Aldrich D125806 Flammable, Corrosive, Toxic
N,N-dimethylformamide Sigma Aldrich 227056 Flammable, Harmful, Health hazard
N-Cbz-L-Serine Fluorochem  M03053 Harmful
Nikon A1 confocal microscopy Nikon Read  the user manual
NuPAGE 4-12% Bis-Tris gel Thermo Fisher Scientific NP0335BOX
Palladium on carbon Sigma Aldrich 330108
p-anisidine Sigma Aldrich A88255 Toxic, Health hazard, Environmental hazard
Paraformaldehyde sigma Aldrich 441244 Toxic, respiratory harmful, corrosive, falmable
Poly(ethylene glycol)  Sigma Aldrich P3265
ProLong Gold antifade mountant with DAPI  Thermo Fisher Scientific P36931 Avoid bubbles formation
Protease inhibitor cocktail Sigma Aldrich P8340
Sodium bicarbonate Sigma Aldrich S6014
Sodium dodecyl sulfate (SDS)  Sigma Aldrich L3771 Toxic, corrosive, falmmable
Sodium hydride  Sigma Aldrich 452912 Flammable
Sodium sulfate Sigma Aldrich 239313
Starion FLA-9000 immage scanner FUJIFILM Read  the user manual
Streptavidin agarose Thermo Fisher Scientific 20349
Sucrose Sigma Aldrich S7903
Tert-butanol Sigma Aldrich 360538 Toxic, flammable
Tetrahydrofuran Sigma Aldrich 186562 Flammable, Harmful, Health hazard
Thiourea Acros Organics 424542500 Toxic, warm at 50 °C to dissolve
Tris Sigma Aldrich RDD008
Tris(2-carboxyethyl)phosphine (TCEP) Sigma Aldrich C4706
Tris[(1-benzyl-1H-1,2,3-triazol-4-yl)methyl]amine (TBTA) Sigma Aldrich 678937
Triton-x100 Sigma Aldrich X100 Toxic
Tween-20 Sigma Aldrich P9416
Tween-80 Sigma Aldrich P1754
Ultra turrax IKA T18 basic tissue homogenizer IKA
Undec-10-yn-1-ol Fluorochem 13739 Harmful
Urea Sigma Aldrich U5378 Toxic, warm at 50 °C to dissolve

Riferimenti

  1. Gygi, S. P., Han, D. K., Gingras, A. C., Sonenberg, N., Aebersold, R. Protein analysis by mass spectrometry and sequence database searching: tools for cancer research in the post-genomic era. Electrophoresis. 20, 310-319 (1999).
  2. Washburn, M. P., Wolters, D., Yates, J. R. Large-scale analysis of the yeast proteome by multidimensional protein identification technology. Nat Biotechnol. 19, 242-247 (2001).
  3. Zhu, H., Bilgin, M., Snyder, M. Proteomics. Annu Rev Biochem. 72, 783-812 (2003).
  4. Ito, T., et al. Roles for the two-hybrid system in exploration of the yeast protein interactome. Mol Cell Proteomics. 1, 561-566 (2002).
  5. Evans, M. J., Cravatt, B. F. Mechanism-based profiling of enzyme families. Chem Rev. 106, 3279-3301 (2006).
  6. Cravatt, B. F., Wright, A. T., Kozarich, J. W. Activity-based protein profiling: from enzyme chemistry to proteomic chemistry. Annu Rev Biochem. 77, 383-414 (2008).
  7. Rostovtsev, V. V., Green, L. G., Fokin, V. V., Sharpless, K. B. A stepwise huisgen cycloaddition process: copper(I)-catalyzed regioselective “ligation” of azides and terminal alkynes. Angew Chem Int Ed Engl. 41, 2596-2599 (2002).
  8. Meldal, M., Tornoe, C. W. Cu-catalyzed azide-alkyne cycloaddition. Chem Rev. 108, 2952-3015 (2008).
  9. Speers, A. E., Adam, G. C., Cravatt, B. F. Activity-based protein profiling in vivo using a copper(i)-catalyzed azide-alkyne [3 + 2] cycloaddition. J Am Chem Soc. 125, 4686-4687 (2003).
  10. Saxon, E., Bertozzi, C. R. Cell surface engineering by a modified Staudinger reaction. Science. 287, 2007-2010 (2000).
  11. Kohn, M., Breinbauer, R. The Staudinger ligation-a gift to chemical biology. Angew Chem Int Ed Engl. 43, 3106-3116 (2004).
  12. Romeo, E., et al. Activity-Based Probe for N-Acylethanolamine Acid Amidase. ACS Chem Biol. 10, 2057-2064 (2015).
  13. Ueda, N., Yamanaka, K., Yamamoto, S. Purification and characterization of an acid amidase selective for N-palmitoylethanolamine, a putative endogenous anti-inflammatory substance. J Biol Chem. 276, 35552-35557 (2001).
  14. Tsuboi, K., et al. Molecular characterization of N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase, a novel member of the choloylglycine hydrolase family with structural and functional similarity to acid ceramidase. J Biol Chem. 280, 11082-11092 (2005).
  15. Tsuboi, K., Takezaki, N., Ueda, N. The N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase (NAAA). Chem Biodivers. 4, 1914-1925 (2007).
  16. Ribeiro, A., et al. A Potent Systemically Active N-Acylethanolamine Acid Amidase Inhibitor that Suppresses Inflammation and Human Macrophage Activation. ACS Chem Biol. 10, 1838-1846 (2015).
  17. Zhao, L. Y., Tsuboi, K., Okamoto, Y., Nagahata, S., Ueda, N. Proteolytic activation and glycosylation of N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase, a lysosomal enzyme involved in the endocannabinoid metabolism. Biochim Biophys Acta. 1771, 1397-1405 (2007).
  18. Wang, J., et al. Amino acid residues crucial in pH regulation and proteolytic activation of N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase. Biochim Biophys Acta. 1781, 710-717 (2008).
  19. West, J. M., Zvonok, N., Whitten, K. M., Wood, J. T., Makriyannis, A. Mass spectrometric characterization of human N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase. J Proteome Res. 11, 972-981 (2012).
  20. Bandiera, T., Ponzano, S., Piomelli, D. Advances in the discovery of N-acylethanolamine acid amidase inhibitors. Pharmacol Res. 86, 11-17 (2014).
  21. Sasso, O., et al. Antinociceptive effects of the N-acylethanolamine acid amidase inhibitor ARN077 in rodent pain models. Pain. 154, 350-360 (2013).
  22. Duranti, A., et al. N-(2-oxo-3-oxetanyl)carbamic acid esters as N-acylethanolamine acid amidase inhibitors: synthesis and structure-activity and structure-property relationships. J Med Chem. 55, 4824-4836 (2012).
  23. Ponzano, S., et al. Synthesis and structure-activity relationship (SAR) of 2-methyl-4-oxo-3-oxetanylcarbamic acid esters, a class of potent N-acylethanolamine acid amidase (NAAA) inhibitors. J Med Chem. 56, 6917-6934 (2013).
  24. Solorzano, C., et al. Synthesis and structure-activity relationships of N-(2-oxo-3-oxetanyl)amides as N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase inhibitors. J Med Chem. 53, 5770-5781 (2010).
  25. Vitale, R., et al. Synthesis, structure-activity, and structure-stability relationships of 2-substituted-N-(4-oxo-3-oxetanyl) N-acylethanolamine acid amidase (NAAA) inhibitors. ChemMedChem 9. 9, 323-336 (2014).
  26. Fiasella, A., et al. 3-Aminoazetidin-2-one derivatives as N-acylethanolamine acid amidase (NAAA) inhibitors suitable for systemic administration. ChemMedChem 9. 9, 1602-1614 (2014).
  27. Armirotti, A., et al. beta-Lactones Inhibit N-acylethanolamine Acid Amidase by S-Acylation of the Catalytic N-Terminal Cysteine. ACS Med Chem Lett. 3, 422-426 (2012).
  28. Nuzzi, A., et al. Potent alpha-amino-beta-lactam carbamic acid ester as NAAA inhibitors. Synthesis and structure-activity relationship (SAR) studies. Eur J Med Chem. 111, 138-159 (2016).
  29. Bonezzi, F. T., et al. An Important Role for N-Acylethanolamine Acid Amidase in the Complete Freund’s Adjuvant Rat Model of Arthritis. J Pharmacol Exp Ther. 356, 656-663 (2016).
  30. Smith, P. K., et al. Measurement of protein using bicinchoninic acid. Anal Biochem. 150, 76-85 (1985).
  31. Speers, A. E., Cravatt, B. F. Activity-Based Protein Profiling (ABPP) and Click Chemistry (CC)-ABPP by MudPIT Mass Spectrometry. Curr Protoc Chem Biol. 1, 29-41 (2009).
  32. Rybak, J. N., Scheurer, S. B., Neri, D., Elia, G. Purification of biotinylated proteins on streptavidin resin: a protocol for quantitative elution. Proteomics. 4, 2296-2299 (2004).
  33. Penna, A., Cahalan, M. Western Blotting using the Invitrogen NuPage Novex Bis Tris minigels. J Vis Exp. (264), (2007).
  34. Giuffrida, A., Piomelli, D. Isotope dilution GC/MS determination of anandamide and other fatty acylethanolamides in rat blood plasma. FEBS Lett. 422, 373-376 (1998).
  35. Buczynski, M. W., Parsons, L. H. Quantification of brain endocannabinoid levels: methods, interpretations and pitfalls. Br J Pharmacol. 160, 423-442 (2010).

Play Video

Citazione di questo articolo
Romeo, E., Pontis, S., Ponzano, S., Bonezzi, F., Migliore, M., Di Martino, S., Summa, M., Piomelli, D. Preparation and In Vivo Use of an Activity-based Probe for N-acylethanolamine Acid Amidase. J. Vis. Exp. (117), e54652, doi:10.3791/54652 (2016).

View Video