Summary

Evaluación de las propiedades anticoagulantes y antiinflamatorias de las células endoteliales mediante cultivo celular 3D y sangre no anticoagulada

Published: September 05, 2017
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Summary

Se presenta un modelo en vitro que permite el estudio y análisis de la coagulación en sangre no anticoagulada todo. Anticoagulación en el sistema depende el efecto de anticoagulación natural de las células endoteliales sanas y activación de células endoteliales resultará en la coagulación.

Abstract

In vivo, las células endoteliales son cruciales para la anticoagulación natural de sangre circulante. En consecuencia, activación de la célula endotelial conduce a la coagulación de la sangre. Este fenómeno se observa en muchas situaciones clínicas, como el trasplante de órganos en presencia de formados anticuerpos de anti-donantes, como xenotrasplante, así como en la isquemia/reperfusión. Con el fin de reducir la experimentación animal según el 3R estándares (reducción, reemplazo y refinamiento), en vitro modelos para estudiar el efecto de la célula endotelial, activación de la coagulación de la sangre sería muy deseable. Sin embargo, sistemas comunes de plano de la cultura de célula endotelial ofrecen una relación superficie a volumen de 1-5 cm2 de endotelio por mL de sangre, que no es suficiente para la anticoagulación natural, mediada por el endotelio. Cultivo de células endoteliales en la cuenta de la potencia puede aumentar la relación superficie-volumen 40-160 cm2/ml. Este ratio mayor es suficiente para asegurar la anticoagulación “natural” de sangre, por lo que puede evitarse el uso de anticoagulantes. Aquí se describe para estudiar los efectos de la modificación genética de las células endoteliales porcinas en coagulación de la sangre no anticoagulada todo, un en vitro potencia-sistema basado. En el análisis descrito, células endothelial aórticas porcinas primarias, ya sea tipo salvaje (WT) o transgénicos para humanos CD46 y trombomodulina, crecido en granos de potencia y luego expuesto a sangre humana recién extraída sin anticoagulante. Este modelo permite la medición y cuantificación de la liberación de citoquinas y activación marcadores de complemento y coagulación en el plasma sanguíneo. Además, la proyección de imagen de células endoteliales activadas y la deposición de inmunoglobulinas, complemento y coagulación de proteínas en los granos endotelizados fueron realizadas por microscopia confocal. Este ensayo también puede utilizarse para probar fármacos que se suponen para evitar la coagulación y, por tanto, la activación endotelial de la célula. Encima de su potencial para reducir el número de animales utilizados para tales investigaciones, el ensayo descrito es fácil de realizar y consistentemente reproducible.

Introduction

El endotelio vascular consiste en una monocapa de células endoteliales (CE) que recubren el lumen de los vasos sanguíneos. En un estado fisiológico, CE quieto son responsables por el mantenimiento de un entorno antiinflamatorio y anticoagulante. 1 esto es mediado por la expresión de anticoagulantes y antiinflamatorias proteínas en la superficie de la CE. Por ejemplo, activación de CE causada por isquemia/reperfusión lesiones o rechazo vascular (xeno-) trasplantados resultados de órganos en un cambio de la superficie endotelial de un anticoagulante y antiinflamatorio estado Pro coagulante y pro-inflamatoria Estado. 1

Para estudiar la fascinante y compleja interacción entre los factores del endotelio y coagulación, en vitro modelos que imitan como posible la situación en vivo son altamente deseables. Una limitación común que caracteriza a ensayos de coagulación convencional en vitro es el uso de sangre con anticoagulante que hace que el análisis de los efectos de la coagulación mediada por ardua y no se puede reproducir incluso recalcificación de la sangre entera citratado resultados obtenibles con sangre fresca sin anticoagulante. 2 además, en los sistemas de cultivo celular de plano tradicional es imposible explotar las propiedades anticoagulantes del endotelio como una suficiente superficie de la célula endotelial por el volumen de sangre no se puede llegar. El modelo presentado aquí supera estas limitaciones por CE el cultivo en la superficie de los granos de la potencia esférica, de modo que una proporción de superficie a sangre CE de > 16 cm2/ml puede ser alcanzado, que es similar a la situación en las pequeñas arteriolas o venas, y que fue descrito para ser suficiente para permitir la “natural” anticoagulación de la sangre por la superficie de la CE. 3 , 4 puede utilizarse sangre entera sin agregado anticoagulantes en este contexto. Muestras de sangre se pueden recoger durante el experimento y citoquinas, factores de coagulación y marcadores de la activación de complemento soluble pueden ser detectados y cuantificados. Además, granos recubiertos de CE potencia pueden analizarse para la deposición del complemento y de inmunoglobulinas así como la expresión de marcadores de activación de CE por microscopia confocal. Otra aplicación interesante incluye la prueba de drogas que se suponen para evitar la coagulación y, por tanto, la activación endotelial de la célula. 5 aunque este modelo no puede sustituir completamente los experimentos con animales, ofrece un método para probar hipótesis funcionales específicas ex vivo con células y reducir así el número de animales utilizados en investigación básica en isquemia/reperfusión trasplante de la lesión o (xeno).

El modelo descrito fue utilizado para imitar un xenotrasplante en que células endoteliales aórticas porcinas (PAEC) son cultivadas en los granos de potencia y se incubaron con todo, no anticoagulada sangre humana. Se analizaron diferentes PAEC transgénico, portadores de varios genes humanos como CD46 para la regulación del sistema del complemento o trombomodulina (hTBM) para la regulación del sistema de coagulación, por sus propiedades anticoagulantes. Sistemas de activación de complemento y coagulación de células endoteliales bien controlados y conectadas entre sí. 6 por lo tanto es importante entender cómo se comportan las células transgénicas diferentes tras la exposición a sangre humana con respecto a la expresión de la molécula de adhesión y liberación de citoquinas, vertimiento del glicocálix y pérdida de proteínas anticoagulantes. 7

Protocol

se utilizaron cerdos Landrace alemán (tipo salvaje criado en una granja local y transgénico criados en el Instituto de reproducción Animal Molecular y biotecnología, Universidad Ludwig-Maximilian, Munich, Alemania), peso entre 30 kg a 40 kg, en Este estudio. Todos los animales fueron alojados bajo condiciones estándar con alimentos y agua ad lib. Todos los experimentos con animales se realizaron conforme a la ley de animales de Reino Unido (procedimientos científicos) y la guía de NIH para el cuidado y u…

Representative Results

Después de 7-10 días de cultivo en el matraz de spinner (figura 1) las células eran confluentes, cubriendo toda la superficie de los granos de potencia (figura 2). Verificación del estado confluency es un paso importante porque una monocapa no confluentes de CE de los microbeads conducirá a una disminución marcada en el tiempo de coagulación, dada la potencia superficie de granos de la es fuertemente Pro coagulante (tiempo…

Discussion

El modelo presentado aquí es conveniente para la coagulación relacionados con estudios, que permite el análisis de diferentes aspectos de la coagulación y su interacción con EC. 8 en la investigación del xenotransplantation, es un sistema útil para probar las propiedades anticoagulantes de la ECs porcinos genéticamente diferentes después de la incubación con sangre humana 9.

Los pasos más críticos del protocolo son los asegurar cobert…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este estudio fue apoyado por la Fundación Suiza de ciencia nacional (FNS, Grant No. 320030_156193). Los autores agradecen a Dr. Benoît Werlen para proporcionar los granos de potencia Biosilon. También agradecemos el Prof. Hans Peter Kohler y Prof. André Haeberli ayuda para configurar el modelo de grano potencia.

Materials

PAEC Isolated from pig aorta in our Lab
Microcarrier beads (Biosilon) Thermo Fisher Scientific 160-250
Collagen I, Bovine Gibco A10644-01
DMEM Gibco 21885-025
Medium 199 Sigma M7528
RPMI Gibco 32404-014
Neutral tubes Sarstedt 02.1726.001
Polypropylene tubes Simport T406-2A
Stirrer flasks Tecnomara
Biological stirrer Brouwer MCS-104S
Rat anti CD31 R&D Systems MAB33871 Dilution 1:100
Goat anti-rat IgG-Cy3 Jackson Immuno Research 112-166-003 Dilution 1:500
Goat anti VE-cadherin Santa Cruz sc-6458 Dilution 1:100
Rabbit anti vWF DAKO A0082 Dilution 1:100
Dk anti Gt IgG – Alexa 488 Molecular Probes A11055 Dilution 1:500
Goat anti Rabbit – FITC Southern Biotech 4050-02 Dilution 1:500
DAPI Sigma 32670-25MG-F Dilution 1 µg/mL
0.05% Trypsin-EDTA Gibco 25300-054
FBS Gibco 10270-106 Concentration: 10% in cell culture medium
Needle Becton Dickinson 367286 Size: 0.8×19 mm (21ɢ 3/4")
Adapter Sarstedt 14.1205
Confocal microscope Carl Zeiss LSM 710
Image analysis software Image J Available for free at: https://imagej.net
Endothelial Cell Growth Medium SupplementMix PromoCell C-39216 2mL in 500mL of DMEM
Penicillin Streptomycin Gibco 15140-122 Concentration: 1% in cell culture medium
L-Glutamine Gibco 25030-024 Concentration: 1% in cell culture medium
Heparinun natricum Drossa Pharm AG Stock concentration: 5000 U.I./ mL
Chamberslides Bioswisstec AG 30108
CaCl2 x 2H2O Merck 2382.0500
MgCl2 x6 H2O Merck 1.5833.1000
Tween 20 Axon Lab AG 9005-64-5
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma A7030
Glycergel mounting medium Dako C0563

Riferimenti

  1. Rajendran, P., et al. The vascular endothelium and human diseases. Int. J. Biol. Sci. 9, 1057-1069 (2013).
  2. Rajwal, S., Richards, M., O’Meara, M. The use of recalcified citrated whole blood – a pragmatic approach for thromboelastography in children. Pediatric Anesthesia. 14, 656-660 (2004).
  3. Kohler, H. P., Muller, M., Mombeli, M., Mtraub, M. M., Maeberli, M. The Suppression of the Coagulation of Nonanticoagulated Whole-Blood in-Vitro by Human Umbilical Endothelial-Cells Cultivated on Microcarriers Is Not Dependent on Protein-C Activation. Thromb. Haemost. 73, 719-724 (1995).
  4. Biedermann, B., Rosenmund, A., Muller, M., Kohler, H. P., Haeberli, A., Straub, P. W. Human endothelial cells suppress prothrombin activation in nonanticoagulated whole blood in vitro. J. Lab. Clin. Med. 124, 339-347 (1994).
  5. Banz, Y., Cung, T., Korchagina, E. Y., Bovin, N. V., Haeberli, A., Rieben, R. Endothelial cell protection and complement inhibition in xenotransplantation: a novel in vitro model using whole blood. Xenotransplantation. 12, 434-443 (2005).
  6. Cowan, P. J., d’Apice, A. J. Complement activation and coagulation in xenotransplantation. Immunology and Cell Biology. 87, 203-208 (2009).
  7. Reitsma, S., Slaaf, D. W., Vink, H., van Zandvoort, M. A. M. J., oude Egbrink, M. G. A. The endothelial glycocalyx: composition, functions, and visualization. Pflugers Arch. 454, 345-359 (2007).
  8. Wiegner, R., Chakraborty, S., Huber-Lang, M. Complement-coagulation crosstalk on cellular and artificial surfaces. Immunobiology. 221, 1073-1079 (2016).
  9. Bongoni, A. K., et al. Transgenic Expression of Human CD46 on Porcine Endothelium: Effect on Coagulation and Fibrinolytic Cascades During Ex Vivo Human-to-Pig Limb Xenoperfusions. Transplantation. 99, 2061-2069 (2015).
  10. Miyazaki, Y., et al. High shear stress can initiate both platelet aggregation and shedding of procoagulant containing microparticles. Blood. 88, 3456-3464 (1996).
  11. Wuensch, A., et al. Regulatory Sequences of the Porcine THBD Gene Facilitate Endothelial-Specific Expression of Bioactive Human Thrombomodulin in Single-and Multitransgenic Pigs. Transplantation. 97, 138-147 (2014).
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Citazione di questo articolo
Sfriso, R., Bongoni, A., Banz, Y., Klymiuk, N., Wolf, E., Rieben, R. Assessment of the Anticoagulant and Anti-inflammatory Properties of Endothelial Cells Using 3D Cell Culture and Non-anticoagulated Whole Blood. J. Vis. Exp. (127), e56227, doi:10.3791/56227 (2017).

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