Her viser forfatterne nytten av MULTI-seq for fenotyping og påfølgende parret scRNA-seq og scATAC-seq ved karakterisering av transkriptomiske og kromatin tilgjengelighetsprofiler i netthinnen.
Kraftige neste generasjons sekvenseringsteknikker tilbyr robust og omfattende analyse for å undersøke hvordan retinale genregulerende nettverk fungerer under utvikling og i sykdomstilstander. Enkeltcellet RNA-sekvensering gjør det mulig for oss å profilere genuttrykksendringer observert i retinal utvikling og sykdom på mobilnivå, mens enkeltcellet ATAC-Seq tillater analyse av kromatintilgjengelighet og transkripsjonsfaktorbinding som skal profileres ved lignende oppløsning. Her beskrives bruken av disse teknikkene i den utviklende netthinnen, og MULTI-Seq demonstreres, hvor individuelle prøver er merket med et modifisert oligonukleotid-lipidkompleks, slik at forskere både kan øke omfanget av individuelle eksperimenter og redusere kostnadene betydelig.
Å forstå hvordan gener kan påvirke celle skjebne spiller en nøkkelrolle i å undersøke prosesser som sykdom og embryonal progresjon. De komplekse forholdene mellom transkripsjonsfaktorer og deres målgener kan grupperes i genregulerende nettverk. Montering av bevis plasserer disse genregulerende nettverkene i sentrum av både sykdom og utvikling på tvers av evolusjonære linjer1. Mens tidligere teknikker som qRT-PCR fokuserte på et enkelt gen eller sett med gener, tillater anvendelsen av sekvenseringsteknologi med høy gjennomstrømning profilering av komplette cellulære transkriptomer.
RNA-seq gir et glimt inn i storskala transkriptomikk 2,3. Enkeltcellet RNA-sekvensering (scRNA-seq) gir etterforskere muligheten til ikke bare å profilere transkriptomer, men koble spesifikke celletyper med genuttrykksprofiler4. Dette oppnås bioinformatisk ved å mate individuelle celleprofiler inn i sorteringsalgoritmer ved hjelp av kjente genmarkører5. Multipleksing ved hjelp av lipidmerkede indekser sekvensering (MULTI-seq) gir enestående mangfold i antall scRNA-Seq profiler som kan samles6. Denne lipidbaserte teknikken skiller seg fra andre prøveindekseringsteknikker som celle-hashing som er avhengig av tilstedeværelsen av overflateantigener og antistoffer med høy affinitet i stedet for plasmamembranintegrasjon7. Ikke bare er det nå mulig å profilere genuttrykksprofiler i celletyper, men forskjellige eksperimenter kan kombineres til et enkelt sekvenseringsbibliotek, noe som dramatisk reduserer kostnadene for et individuelt scRNA-seq-eksperiment6. Kostnaden for scRNA-seq kan virke uoverkommelig for bruk i fenotypingseksperimenter der mange forskjellige genotyper, tilstander eller pasientprøver analyseres, men multipleksing tillater kombinasjon av opptil 96 prøver i et enkelt bibliotek6.
Profilering av genuttrykk via scRNA-seq har ikke vært den eneste sekvenseringsbaserte teknikken med høy gjennomstrømning for å revolusjonere den nåværende forståelsen av hvordan molekylære mekanismer dikterer celleskjebne. Mens forståelse av hvilke gentransskripter som er tilstede i en celle, gjør det mulig å identifisere celletype, er like viktig å forstå hvordan genomisk organisasjon regulerer utvikling og sykdomsprogresjon. Tidlige studier baserte seg på å oppdage DNase-mediert spaltning av sekvenser som ikke var bundet til histoner, etterfulgt av sekvensering av de resulterende DNA-fragmentene for å identifisere regioner med åpen kromatin. I motsetning til dette tillater enkeltcelleanalyse for transposontilgjengelig kromatinsekvensering (scATAC-seq) forskere å undersøke DNA med et domestisert transposon for lett å profilere åpent kromatin på enkeltnukleotidnivå8. Dette har gått gjennom en lignende skalering til scRNA-seq, og nå kan etterforskere identifisere individuelle celletyper og profilere fenotyper på tvers av tusenvis av individuelle genomer8.
Sammenkoblingen av scRNA-seq og scATAC-seq har gitt forskere muligheten til å profilere tusenvis av celler for å bestemme cellepopulasjoner, genomisk organisasjon og genregulerende nettverk i sykdomsmodeller og utviklingsprosesser 9,10,11,12. Her skisserer forfatterne hvordan man først kan bruke MULTI-seq til å kondensere fenotyping av et mylder av dyremodeller og bruke parret scRNA-seq og scATAC-seq for å få en bedre forståelse av kromatinlandskapet og regulatoriske nettverk i disse dyremodellene.
Kraften til MULTI-seq stammer fra sømløs integrering av data fra flere eksperimentelle forhold eller modeller og den enorme fordelen når det gjelder kostnader og begrensende batcheffekter. Utnytte MULTI-seq tilbyr et laboratorium enestående fenotyping dybde. Ikke-genetiske multipleksingsmetoder som cellehasjing eller kjernehasjing åpnet døren for multipleksede prøver ved bruk av strekkodede antistoffer 7,19,20. Dette er i…
The authors have nothing to disclose.
Vi takker Linda Orzolek fra Johns Hopkins Transcriptomics og Deep Sequencing Core for hjelp til å sekvensere de produserte bibliotekene og Lizhi Jiang for å utføre ex vivo retinale eksplanter.
10 µL, 200 µL, 1000 µL pipette filter tips | |||
10% Tween 20 | Bio-Rad | 1662404 | |
100 µM Barcode Solution | Request from Gartner lab | https://docs.google.com/forms/d/1bAzXFEvDEJse_cMvSUe_yDaP rJpAau4IPx8m5pauj3w/viewform?ts=5c47a897&edit_requested =true |
|
100% Ethanol | Millipore Sigma | E7023-500ML | |
100% Methanol | Millipore Sigma | 322415-100ML | |
10x Chip Holder | 10x Genomics | 1000195 | |
10x Chromium controller & Accessory Kit | 10x Genomics | PN-120263 | |
15mL Centrifuge Tube | Quality Biological | P886-229411 | |
40 µm FlowMi Cell Strainer | Bel-Art | H13680-0040 | |
50 µM Anchor Solution | Sigma or request from Gartner lab | https://docs.google.com/forms/d/1bAzXFEvDEJse_cMvSUe_yDaP rJpAau4IPx8m5pauj3w/viewform?ts=5c47a897&edit_requested =true |
|
50 µM Co-Anchor Solution | Sigma or request from Gartner lab | https://docs.google.com/forms/d/1bAzXFEvDEJse_cMvSUe_yDaP rJpAau4IPx8m5pauj3w/viewform?ts=5c47a897&edit_requested =true |
|
5200 Fragment Analyzer system | Agilent | M5310AA | |
70 um FlowMi cell strainer | Bel-Art | H13680-0070 | |
Allegra X-12R Centrifuge | VWR | BK392302 | |
Bovine Serum Albumin | Sigma-Aldrich | A9647 | |
Chromium Next GEM Chip G | 10x Genomics | PN-1000120 | |
Chromium Next GEM Chip H | 10x Genomics | PN-1000161 | |
Chromium Next Gem Single Cell ATAC Reagent Kit v1.1 | 10x Genomics | PN-1000175 | |
Chromium Single Cell 3' GEM, Library & Gel Bead Kit v3.1 | 10x Genomics | PN-1000121 | |
Digitonin | Fisher Scientific | BN2006 | |
Dissection microscope | Leica | ||
DNA LoBind Tubes, 1.5 mL | Eppendorf | 22431021 | |
Dry Ice | |||
EVA Foam Ice Pan | Tequipment | 04393-54 | |
FA 12-Capillary Array Short, 33 cm | Agilent | A2300-1250-3355 | |
Fisherbrand Isotemp Water Bath | Fisher Scientific | 15-460-20Q | |
Forma CO2 Water Jacketed Incubator | ThermoFisher Scientific | 3110 | |
Glycerol 50% Aqueous solution | Ricca Chemical Company | 3290-32 | |
Hausser Scientific Bright-Line Counting Chamber | Fisher Scientific | 02-671-51B | |
Illumina NextSeq or NovaSeq | Illumina | ||
Kapa Hifi Hotstart ReadyMix | HiFi | 7958927001 | |
Low TE Buffer | Quality Biological | 351-324-721 | |
Magnesium Chloride Solution 1 M | Sigma-Aldrich | M1028 | |
Magnetic Separator Rack for 1.5 mL tubes | Millipore Sigma | 20-400 | |
Magnetic Separator Rack for 200 µL tubes | 10x Genomics | NC1469069 | |
MULTI-seq Primer | Sigma or IDT | See sequence list | |
MyFuge Mini Centrifuge | Benchmark Scientific | C1008 | |
Nonidet P40 Substitute | Sigma-Aldrich | 74385 | |
Nuclease-free water | Fisher Scientific | AM9937 | |
P2, P10, P20, P200, P1000 micropipettes | Eppendorf | ||
Papain Dissociation System | Worthington Biochemical Corporation | LK003150 | |
PBS pH 7.4 (1X) | Fisher Scientific | 10010-023 | |
Qiagen Buffer EB | Qiagen | 19086 | |
Refridgerated Centrifuge 5424 R | Eppendorf | 2231000655 | |
RNase-free Disposable Pellet Pestles | Fisher Scientific | 12-141-368 | |
RNasin Plus RNase Inhibitor | Promega | N2615 | |
RPI primer | Sigma or IDT | See sequence list | |
Single Index Kit N, Set A | 10x Genomics | PN-1000212 | |
Single Index Kit T Set A | 10x Genomics | PN-1000213 | |
Sodium Chloride Solution 5 M | Sigma-Aldrich | 59222C | |
SPRIselect Reagent Kit | Beckman Coulter | B23318 | |
Standard Disposable Transfer Pipettes | Fisher Scientific | 13-711-7M | |
TempAssure PCR 8-tube strip | USA Scientific | 1402-4700 | |
Trizma Hydrochloride Solution, pH 7.4 | Sigma-Aldrich | T2194 | |
Trypan Blue Solution, 0.4% (w/v) | Corning | 25-900-CI | |
Universal I5 primer | Sigma or IDT | See sequence list | |
Veriti Thermal Cycler | Applied Biosystems | 4375786 | |
Vortex Mixer | VWR | 10153-838 |