Här visar författarna nyttan av MULTI-seq för fenotypning och efterföljande parade scRNA-seq och scATAC-seq för att karakterisera de transkriptomiska och kromatin tillgänglighetsprofilerna i näthinnan.
Kraftfulla nästa generations sekvenseringstekniker erbjuder robust och omfattande analys för att undersöka hur retinala genreglerande nätverk fungerar under utveckling och i sjukdomstillstånd. Encellig RNA-sekvensering gör det möjligt för oss att omfattande profilera genuttrycksförändringar som observerats i retinal utveckling och sjukdom på cellnivå, medan encellig ATAC-Seq gör det möjligt att analysera kromatintillgänglighet och transkriptionsfaktorbindning för att profileras med liknande upplösning. Här beskrivs användningen av dessa tekniker i den utvecklande näthinnan, och MULTI-Seq demonstreras, där enskilda prover är märkta med ett modifierat oligonukleotid-lipidkomplex, vilket gör det möjligt för forskare att både öka omfattningen av enskilda experiment och avsevärt minska kostnaderna.
Att förstå hur gener kan påverka cellöden spelar en nyckelroll i förhörsprocesser som sjukdom och embryonal progression. De komplexa sambanden mellan transkriptionsfaktorer och deras målgener kan grupperas i genreglerande nätverk. Ökande bevis placerar dessa genreglerande nätverk i centrum för både sjukdom och utveckling över evolutionära linjer1. Medan tidigare tekniker som qRT-PCR fokuserade på en enda gen eller uppsättning gener, möjliggör tillämpningen av sekvenseringsteknik med hög genomströmning profilering av kompletta cellulära transkriptom.
RNA-seq ger en inblick i storskalig transkriptomik 2,3. Encellig RNA-sekvensering (scRNA-seq) ger utredare möjlighet att inte bara profilera transkriptom utan länka specifika celltyper med genuttrycksprofiler4. Detta uppnås bioinformatiskt genom att mata in enskilda cellprofiler i sorteringsalgoritmer med hjälp av kända genmarkörer5. Multiplexering med lipidtaggad indexsekvensering (MULTI-seq) erbjuder oöverträffad mångfald i antalet scRNA-Seq-profiler som kan samlas in6. Denna lipidbaserade teknik skiljer sig från andra provindexeringstekniker såsom cellhashing som förlitar sig på närvaron av ytantigener och antikroppar med hög affinitet istället för plasmamembranintegration7. Det är nu inte bara möjligt att profilera genuttrycksprofiler i celltyper utan olika experiment kan kombineras till ett enda sekvenseringsbibliotek, vilket dramatiskt sänker kostnaden för ett individuellt scRNA-seq-experiment6. Kostnaden för scRNA-seq kan verka oöverkomlig för användning i fenotypningsexperiment där många olika genotyper, tillstånd eller patientprover analyseras, men multiplexering möjliggör kombination av upp till 96 prover i ett enda bibliotek6.
Profilering av genuttryck via scRNA-seq har inte varit den enda sekvenseringsbaserade tekniken med hög genomströmning som revolutionerar den nuvarande förståelsen av hur molekylära mekanismer dikterar cellens öde. Medan förståelse av vilka genutskrifter som finns i en cell möjliggör identifiering av celltyp, är det lika viktigt att förstå hur genomisk organisation reglerar utveckling och sjukdomsprogression. Tidiga studier förlitade sig på att detektera DNase-medierad klyvning av sekvenser som inte är bundna till histoner, följt av sekvensering av de resulterande DNA-fragmenten för att identifiera regioner av öppet kromatin. Däremot tillåter encellsanalys för transposontillgänglig kromatinsekvensering (scATAC-seq) forskare att undersöka DNA med en domesticerad transposon för att enkelt profilera öppet kromatin vid den enda nukleotidnivån8. Detta har gått igenom en liknande skalning som scRNA-seq och nu kan utredare identifiera enskilda celltyper och profilfenotyper över tusentals enskilda genom8.
Parningen av scRNA-seq och scATAC-seq har gjort det möjligt för forskare att profilera tusentals celler för att bestämma cellpopulationer, genomisk organisation och genreglerande nätverk i sjukdomsmodeller och utvecklingsprocesser 9,10,11,12. Här beskriver författarna hur man först kan använda MULTI-seq för att kondensera fenotypning av en myriad av djurmodeller och använda parade scRNA-seq och scATAC-seq för att få en bättre förståelse för kromatinlandskapet och reglerande nätverk i dessa djurmodeller.
Kraften i MULTI-seq härrör från sömlös integration av data från flera experimentella förhållanden eller modeller och den enorma fördelen när det gäller kostnad och begränsande batcheffekter. Att använda MULTI-seq erbjuder ett laboratorium utan motstycke fenotypningsdjup. Icke-genetiska multiplexeringsmetoder som cellhashing eller kärnhashing öppnade dörren för multiplexerade prover genom användning av streckkodade antikroppar 7,19,20<…
The authors have nothing to disclose.
Vi tackar Linda Orzolek från Johns Hopkins Transcriptomics och Deep Sequencing Core för hjälp med att sekvensera de producerade biblioteken och Lizhi Jiang för att utföra ex vivo retinal explantat.
10 µL, 200 µL, 1000 µL pipette filter tips | |||
10% Tween 20 | Bio-Rad | 1662404 | |
100 µM Barcode Solution | Request from Gartner lab | https://docs.google.com/forms/d/1bAzXFEvDEJse_cMvSUe_yDaP rJpAau4IPx8m5pauj3w/viewform?ts=5c47a897&edit_requested =true |
|
100% Ethanol | Millipore Sigma | E7023-500ML | |
100% Methanol | Millipore Sigma | 322415-100ML | |
10x Chip Holder | 10x Genomics | 1000195 | |
10x Chromium controller & Accessory Kit | 10x Genomics | PN-120263 | |
15mL Centrifuge Tube | Quality Biological | P886-229411 | |
40 µm FlowMi Cell Strainer | Bel-Art | H13680-0040 | |
50 µM Anchor Solution | Sigma or request from Gartner lab | https://docs.google.com/forms/d/1bAzXFEvDEJse_cMvSUe_yDaP rJpAau4IPx8m5pauj3w/viewform?ts=5c47a897&edit_requested =true |
|
50 µM Co-Anchor Solution | Sigma or request from Gartner lab | https://docs.google.com/forms/d/1bAzXFEvDEJse_cMvSUe_yDaP rJpAau4IPx8m5pauj3w/viewform?ts=5c47a897&edit_requested =true |
|
5200 Fragment Analyzer system | Agilent | M5310AA | |
70 um FlowMi cell strainer | Bel-Art | H13680-0070 | |
Allegra X-12R Centrifuge | VWR | BK392302 | |
Bovine Serum Albumin | Sigma-Aldrich | A9647 | |
Chromium Next GEM Chip G | 10x Genomics | PN-1000120 | |
Chromium Next GEM Chip H | 10x Genomics | PN-1000161 | |
Chromium Next Gem Single Cell ATAC Reagent Kit v1.1 | 10x Genomics | PN-1000175 | |
Chromium Single Cell 3' GEM, Library & Gel Bead Kit v3.1 | 10x Genomics | PN-1000121 | |
Digitonin | Fisher Scientific | BN2006 | |
Dissection microscope | Leica | ||
DNA LoBind Tubes, 1.5 mL | Eppendorf | 22431021 | |
Dry Ice | |||
EVA Foam Ice Pan | Tequipment | 04393-54 | |
FA 12-Capillary Array Short, 33 cm | Agilent | A2300-1250-3355 | |
Fisherbrand Isotemp Water Bath | Fisher Scientific | 15-460-20Q | |
Forma CO2 Water Jacketed Incubator | ThermoFisher Scientific | 3110 | |
Glycerol 50% Aqueous solution | Ricca Chemical Company | 3290-32 | |
Hausser Scientific Bright-Line Counting Chamber | Fisher Scientific | 02-671-51B | |
Illumina NextSeq or NovaSeq | Illumina | ||
Kapa Hifi Hotstart ReadyMix | HiFi | 7958927001 | |
Low TE Buffer | Quality Biological | 351-324-721 | |
Magnesium Chloride Solution 1 M | Sigma-Aldrich | M1028 | |
Magnetic Separator Rack for 1.5 mL tubes | Millipore Sigma | 20-400 | |
Magnetic Separator Rack for 200 µL tubes | 10x Genomics | NC1469069 | |
MULTI-seq Primer | Sigma or IDT | See sequence list | |
MyFuge Mini Centrifuge | Benchmark Scientific | C1008 | |
Nonidet P40 Substitute | Sigma-Aldrich | 74385 | |
Nuclease-free water | Fisher Scientific | AM9937 | |
P2, P10, P20, P200, P1000 micropipettes | Eppendorf | ||
Papain Dissociation System | Worthington Biochemical Corporation | LK003150 | |
PBS pH 7.4 (1X) | Fisher Scientific | 10010-023 | |
Qiagen Buffer EB | Qiagen | 19086 | |
Refridgerated Centrifuge 5424 R | Eppendorf | 2231000655 | |
RNase-free Disposable Pellet Pestles | Fisher Scientific | 12-141-368 | |
RNasin Plus RNase Inhibitor | Promega | N2615 | |
RPI primer | Sigma or IDT | See sequence list | |
Single Index Kit N, Set A | 10x Genomics | PN-1000212 | |
Single Index Kit T Set A | 10x Genomics | PN-1000213 | |
Sodium Chloride Solution 5 M | Sigma-Aldrich | 59222C | |
SPRIselect Reagent Kit | Beckman Coulter | B23318 | |
Standard Disposable Transfer Pipettes | Fisher Scientific | 13-711-7M | |
TempAssure PCR 8-tube strip | USA Scientific | 1402-4700 | |
Trizma Hydrochloride Solution, pH 7.4 | Sigma-Aldrich | T2194 | |
Trypan Blue Solution, 0.4% (w/v) | Corning | 25-900-CI | |
Universal I5 primer | Sigma or IDT | See sequence list | |
Veriti Thermal Cycler | Applied Biosystems | 4375786 | |
Vortex Mixer | VWR | 10153-838 |