Summary

Un modèle d’abrasion épithéliale pour étudier la cicatrisation des plaies cornéennes

Published: December 29, 2021
doi:

Summary

Ici, un protocole pour créer une plaie d’abrasion épithéliale cornéenne centrale chez la souris à l’aide d’une tréphine et d’un spud de club de golf émoussé est décrit. Ce modèle de cicatrisation des plaies cornéennes est hautement reproductible et est maintenant utilisé pour évaluer la cicatrisation des plaies cornéennes compromises dans le contexte de maladies.

Abstract

La cornée est essentielle à la vision, représentant environ les deux tiers du pouvoir réfractif de l’œil. Sa transparence est cruciale pour le rôle de la cornée dans la vision. Cependant, en raison de sa position externe, la cornée est très sensible à une grande variété de blessures pouvant entraîner une perte de transparence cornéenne et éventuellement la cécité. Une cicatrisation efficace des plaies cornéennes en réponse à ces blessures est essentielle au maintien de l’homéostasie cornéenne et à la préservation de la transparence cornéenne et des capacités de réfraction. En cas de cicatrisation compromise des plaies cornéennes, la cornée devient vulnérable aux infections, aux ulcérations et aux cicatrices. Compte tenu de l’importance fondamentale de la cicatrisation des plaies cornéennes pour la préservation de la transparence et de la vision cornéennes, une meilleure compréhension du processus normal de cicatrisation des plaies cornéennes est une condition préalable à la compréhension de la cicatrisation altérée des plaies cornéennes associées à une infection et à une maladie. Pour atteindre cet objectif, les modèles murins de plaies cornéennes se sont avérés utiles pour approfondir notre compréhension des mécanismes de cicatrisation des plaies cornéennes fonctionnant dans des conditions physiologiques normales. Ici, un protocole pour créer une abrasion épithéliale cornéenne centrale chez la souris à l’aide d’une tréphine et d’un spud de club de golf émoussé est décrit. Dans ce modèle, une tréphine circulaire de 2 mm de diamètre, centrée sur la cornée, est utilisée pour délimiter la zone de la plaie. Le spud de club de golf est utilisé avec soin pour débrider l’épithélium et créer une plaie circulaire sans endommager la membrane basale épithéliale cornéenne. La réponse inflammatoire qui en résulte se déroule sous la forme d’une cascade bien caractérisée d’événements cellulaires et moléculaires essentiels à une cicatrisation efficace des plaies. Ce modèle simple de cicatrisation des plaies cornéennes est hautement reproductible et bien publié et est maintenant utilisé pour évaluer la cicatrisation compromise des plaies cornéennes dans le contexte de la maladie.

Introduction

La cornée est le tiers antérieur transparent de l’œil. La cornée remplit plusieurs fonctions, notamment la protection des structures internes de l’œil et la formation d’une barrière structurelle qui protège l’œil contre les infections1. Plus important encore, la cornée est essentielle à la vision, fournissant environ les deux tiers du pouvoir réfractif de l’œil 2,3. Sa transparence est cruciale pour le rôle de la cornée dans la vision. Cependant, en raison de sa position vers l’extérieur, la cornée est exposée à une grande variété de blessures au quotidien qui peuvent entraîner une perturbation de sa fonction de barrière, une perte de transparence et éventuellement la cécité. La perte de transparence cornéenne est l’une des principales causes de déficience visuelle dans le monde 4,5. Les abrasions cornéennes sont une raison courante des visites à la salle d’urgence , représentant la moitié des cas oculaires présentés à l’urgence6. On estime que plus de 1 million de personnes souffrent de blessures oculaires chaque année aux États-Unis7. Une cicatrisation efficace des plaies cornéennes en réponse à ces blessures est essentielle au maintien de l’homéostasie cornéenne et à la préservation de sa transparence et de ses capacités de réfraction. En cas de cicatrisation compromise de la plaie cornéenne, la cornée devient vulnérable aux infections, aux ulcérations et aux cicatrices 8,9. En outre, la popularité croissante des chirurgies réfractives place un défi traumatique unique sur la cornée10. Compte tenu de l’importance fondamentale de la cicatrisation des plaies cornéennes pour la préservation de la transparence et de la vision cornéennes, une meilleure compréhension du processus normal de cicatrisation des plaies cornéennes est une condition préalable à la compréhension de la cicatrisation altérée des plaies cornéennes associées à une infection et à une maladie.

À cette fin, plusieurs modèles animaux de cicatrisation des plaies cornéennes ont été développés 11,12,13,14,15. Les modèles murins de cicatrisation des plaies cornéennes se sont révélés utiles pour approfondir notre compréhension des mécanismes de cicatrisation des plaies cornéennes opérant dans des conditions physiologiques normales. Différents types de plaies cornéennes ont été utilisés dans l’étude de la cicatrisation des plaies cornéennes, chacune convenant à l’étude de différents aspects du processus de cicatrisation des plaies. Les types de modèles de plaies les plus courants utilisés dans les études sur la cicatrisation des plaies cornéennes sont les modèles de plaies mécaniques et chimiques. Les plaies cornéennes chimiques, impliquant principalement la création de brûlures alcalines sur la cornée, sont utiles pour étudier les ulcères cornéens, l’opacification et la néovascularisation13. Les plaies cornéennes mécaniques impliquent des plaies de débridement (abrasion) et des plaies de kératectomie 14,15,16. Une membrane basale épithéliale cornéenne intacte ou percée définit respectivement le débridement et les plaies de kératectomie. Dans les plaies de débridement, la membrane basale épithéliale reste intacte, tandis que dans les plaies de kératectomie, la membrane basale est percée avec pénétration principalement dans le stroma antérieur. Les plaies de débridement sont les plus utiles pour étudier la réépithélialisation, la prolifération des cellules épithéliales, la réponse immunitaire et la régénération nerveuse après une blessure cornéenne. Les plaies de kératectomie, d’autre part, sont les plus utiles pour étudier les cicatrices cornéennes14,15.

Ici, un protocole pour créer une plaie d’abrasion épithéliale cornéenne centrale chez la souris à l’aide d’une tréphine et d’un spud de club de golf émoussé est décrit. Ce modèle simple de cicatrisation des plaies cornéennes est hautement reproductible et bien publié et est maintenant utilisé pour évaluer la cicatrisation des plaies cornéennes compromises dans le contexte de la maladie17.

Protocol

Tous les protocoles pour animaux ont été approuvés par les comités institutionnels de soins et d’utilisation des animaux de l’Université de Houston et du Baylor College of Medicine. Les lignes directrices décrites dans la déclaration de l’Association for Research in Vision and Ophthalmology (ARVO) sur l’utilisation des animaux dans la recherche sur la vision et l’ophtalmologie ont été suivies dans la manipulation et l’utilisation des souris. 1. Préparation<…

Representative Results

La figure 3 montre une micrographie électronique à transmission d’une plaie cornéenne créée avec le spud émoussé du club de golf, démontrant que la membrane basale épithéliale est en effet intacte après une blessure. Figure 3 : La membrane basale épithéliale reste intacte après abrasion cornéen…

Discussion

Le but de cet article sur les méthodes était de décrire un protocole pour créer une plaie d’abrasion épithéliale cornéenne centrale chez la souris à l’aide d’une tréphine et d’un spud de club de golf émoussé. Ce modèle murin a été utilisé pour étudier l’inflammation de la cornée et sa contribution à la cicatrisation des plaies. Ce type de modèle peut être utilisé pour étudier les mécanismes de cicatrisation des plaies cornéennes dans des conditions physiologiques normales et dans des pat…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Financement : Soutenu par : NIH EY018239 (A.R.B., C.W.S. et R.E.R.), P30EY007551 (A.R.B.) et Sigma Xi Grant in Aid of Research (P.K.A.). Le contenu relève de la seule responsabilité des auteurs et ne représente pas les points de vue officiels des National Institutes of Health ou de Sigma Xi.

Materials

Anti-CD31 antibody BD Bioscience, Pharmingen 550274
Anti-CD41 antibody BD Bioscience, Pharmingen 553847
Anti-Ly6G antibody BD Bioscience, Pharmingen 551459
Bovine serum albumin (BSA) ThermoFisher scientific B14
C57BL/6 mice Jackson Laboratories 664
DAPI Sigma Aldrich D8417
DeltaVision wide-field deconvolution fluorescence microscope GE Life Sciences
Dissecting microscope Leica microsystems
Electronic Toploading Balances (Weighing scale) Fisher Scientific
Ethanol ThermoFisher scientific T038181000CS
Golf-club spud Stephens instruments S2-1135
Iris curve scissors Fisher Scientific 31212
Isoflurane Patterson veterinary 07-893-1389
Ketamine Patterson veterinary 07-890-8598
Phospate buffered saline (PBS) ThermoFisher scientific AM9624
Sodium fluorescein salt Sigma Aldrich 46970
Surgical blade (scapel blade) Fine Science tools 10022-00
Trephine Integra Miltex 33-31
TritonX -100 Fisher Scientific 50-295-34
Forcep Fine Science tools 11923-13
Xylazine Patterson veterinary 07-808-1947

Riferimenti

  1. DelMonte, D. W., Kim, T. Anatomy and physiology of the cornea. Journal of Cataract and Refractive Surgery. 37 (3), 588-598 (2011).
  2. Meek, K. M., Knupp, C. Corneal structure and transparency. Progress in Retinal and Eye Research. 49, 1-16 (2015).
  3. Sridhar, M. S. Anatomy of cornea and ocular surface. Indian Journal of Ophthalmology. 66 (2), 190-194 (2018).
  4. Flaxman, S. R., et al. Global causes of blindness and distance vision impairment 1990-2020: a systematic review and meta-analysis. The Lancet Global Health. 5 (12), 1221-1234 (2017).
  5. Robaei, D., Watson, S. Corneal blindness: A global problem. Clinical & Experimental Ophthalmology. 42 (3), 213-214 (2014).
  6. McGwin, G., Owsley, C. Incidence of emergency department-treated eye injury in the United States. Archives of Ophthalmology. 123 (5), 662-666 (2005).
  7. Ljubimov, A. V., Saghizadeh, M. Progress in corneal wound healing. Progress in Retinal and Eye Research. 49, 17-45 (2015).
  8. Wilson, S. L., Haj, A. J. E., Yang, Y. Control of scar tissue formation in the cornea: Strategies in clinical and corneal tissue engineering. Journal of Functional Biomaterials. 3 (3), 642 (2012).
  9. Vaidyanathan, U., et al. Persistent corneal epithelial defects: A review article. Medical Hypothesis, Discovery and Innovation in Ophthalmology. 8 (3), 163-176 (2019).
  10. Netto, M., et al. Wound healing in the cornea: a review of refractive surgery complications and new prospects for therapy. Cornea. 24 (5), 509-522 (2005).
  11. Friedenwald, J. S., Buschke, W. Some factors concerned in the mitotic and wound-healing activities of the corneal epithelium. Transactions of the American Ophthalmological Society. 42, 371-383 (1944).
  12. Xu, K., Yu, F. -. S. X. Impaired epithelial wound healing and EGFR signaling pathways in the corneas of diabetic rats. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 52 (6), 3301-3308 (2011).
  13. Bai, J. Q., Qin, H. F., Zhao, S. H. Research on mouse model of grade II corneal alkali burn. International Journal of Ophthalmology. 9 (4), 487-490 (2016).
  14. Blanco-Mezquita, J. T., Hutcheon, A. E. K., Stepp, M. A., Zieske, J. D. αVβ6 integrin promotes corneal wound healing. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 52 (11), 8505-8513 (2011).
  15. Blanco-Mezquita, J. T., Hutcheon, A. E. K., Zieske, J. D. Role of thrombospondin-1 in repair of penetrating corneal wounds. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 54 (9), 6262-6268 (2013).
  16. Stepp, M. A., et al. Wounding the cornea to learn how it heals. Experimental Eye Research. 121, 178-193 (2014).
  17. Hargrave, A., et al. Corneal dysfunction precedes the onset of hyperglycemia in a mouse model of diet-induced obesity. PLoS ONE. 15, 0238750 (2020).
  18. Machholz, E., Mulder, G., Ruiz, C., Corning, B. F., Pritchett-Corning, K. R. Manual restraint and common compound administration routes in mice and rats. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (67), e2771 (2012).
  19. Bodner, L., Dayan, D. Effect of parotid submandibular and sublingual saliva on wound healing in rats. Comparative Biochemistry and Physiology. Part A, Physiology. 100 (4), 887-890 (1991).
  20. Abbasian, B., Azizi, S., Esmaeili, A. Effects of rat’s licking behavior on cutaneous wound healing. Iranian Journal of Basic Medical Sciences. 13 (1), 242-247 (2010).
  21. DeLisser, H. M., et al. Involvement of endothelial PECAM-1/CD31 in angiogenesis. The American Journal of Pathology. 151 (3), 671-677 (1997).
  22. Piali, L., et al. CD31/PECAM-1 is a ligand for alpha v beta 3 integrin involved in adhesion of leukocytes to endothelium. The Journal of Cell Biology. 130 (2), 451-460 (1995).
  23. Fleming, T. J., Fleming, M. L., Malek, T. R. Selective expression of Ly-6G on myeloid lineage cells in mouse bone marrow. RB6-8C5 mAb to granulocyte-differentiation antigen (Gr-1) detects members of the Ly-6 family. The Journal of Immunology. 151 (5), 2399-2408 (1993).
  24. Fleming, T. J., Malek, T. R. Multiple glycosylphosphatidylinositol-anchored Ly-6 molecules and transmembrane Ly-6E mediate inhibition of IL-2 production. The Journal of Immunology. 153 (5), 1955-1962 (1994).
  25. Phillips, D. R., Charo, I. F., Scarborough, R. M. GPIIb-IIIa: the responsive integrin. Cell. 65 (3), 359-362 (1991).
  26. Nieswandt, B., et al. Acute systemic reaction and lung alterations induced by an antiplatelet integrin gpIIb/IIIa antibody in mice. Blood. 94 (2), 684-693 (1999).
  27. Li, Z., Burns, A. R., Rumbaut, R. E., Smith, C. W. γδ T cells are necessary for platelet and neutrophil accumulation in limbal vessels and efficient epithelial repair after corneal abrasion. American Journal of Pathology. 171 (3), 838-845 (2007).
  28. Liu, Q., Smith, C. W., Zhang, W., Burns, A. R., Li, Z. NK cells modulate the inflammatory response to corneal epithelial abrasion and thereby support wound healing. American Journal of Pathology. 181 (2), 452-462 (2012).
  29. Gao, Y., et al. NK cells are necessary for recovery of corneal CD11c+ dendritic cells after epithelial abrasion injury. Journal of Leukocyte Biology. 94 (2), 343-351 (2013).
  30. Xiao, C., et al. Acute tobacco smoke exposure exacerbates the inflammatory response to corneal wounds in mice via the sympathetic nervous system. Communications Biology. 2, 33 (2019).
  31. Wang, H., et al. Epothilone B speeds corneal nerve regrowth and functional recovery through microtubule stabilization and increased nerve beading. Scientific Reports. 8 (1), 2647 (2018).
  32. Li, Z., Burns, A. R., Smith, C. W. Lymphocyte function-associated Antigen-1-dependent inhibition of corneal wound healing. Cell Injury. 169, 1590-1600 (2006).
  33. Wu, M., et al. The neuroregenerative effects of topical decorin on the injured mouse cornea. Journal of Neuroinflammation. 17 (1), 1-14 (2020).
  34. Rodrigues, M., Kosaric, N., Bonham, C. A., Gurtner, G. C. Wound healing: A cellular perspective. Physiological Reviews. 99 (1), 665-706 (2019).
  35. Rennard, S. I. Inflammation and repair processes in chronic obstructive pulmonary disease. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 160 (5), 12-16 (1999).
  36. Landén, N. X., Li, D., Ståhle, M. Transition from inflammation to proliferation: a critical step during wound healing. Cellular and Molecular Life Sciences. 73 (20), 3861-3885 (2016).
  37. Li, Z., Rumbaut, R. E., Burns, A. R., Smith, C. W. Platelet response to corneal abrasion is necessary for acute inflammation and efficient re-epithelialteation. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 47, 4794-4802 (2006).
  38. Lam, F. W., Burns, A. R., Smith, C. W., Rumbaut, R. E. Platelets enhance neutrophil transendothelial migration via P-selectin glycoprotein ligand-1. American Journal of Physiology – Heart and Circulatory Physiology. 300 (2), 468-475 (2011).
  39. La Cruz, A. D., et al. Platelet and erythrocyte extravasation across inflamed corneal venules depend on CD18, neutrophils, and mast cell degranulation. International Journal of Molecular Sciences. 22 (14), 7360 (2021).
  40. Li, Z., Burns, A. R., Smith, C. W. Two waves of neutrophil emigration in response to corneal epithelial abrasion: Distinct adhesion molecule requirements. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 47 (5), 1947-1955 (2006).
  41. Li, Z., Burns, A. R., Han, L., Rumbaut, R. E., Smith, C. W. IL-17 and VEGF Are Necessary for Efficient Corneal Nerve Regeneration. The American Journal of Pathology. 178 (3), 1106-1116 (2011).
  42. Xue, Y., et al. Modulation of circadian rhythms affects corneal epithelium renewal and repair in mice. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 58 (3), 1865-1874 (2017).
  43. Zhang, W., Magadi, S., Li, Z., Smith, C. W., Burns, A. R. IL-20 promotes epithelial healing of the injured mouse cornea. Experimental Eye Research. 154, 22-29 (2017).
  44. Li, Z., Burns, A. R., Miller, S. B., Smith, C. W. CCL20, γδ T cells, and IL-22 in corneal epithelial healing. FASEB Journal. 25 (8), 2659-2668 (2011).
  45. Li, Z., Burns, A. R., Han, L., Rumbaut, R. E., Smith, C. W. IL-17 and VEGF are necessary for efficient corneal nerve regeneration. American Journal of Pathology. 178 (3), 1106-1116 (2011).
  46. Reins, R. Y., Hanlon, S. D., Magadi, S., McDermott, A. M. Effects of topically applied Vitamin D during corneal wound healing. PLoS ONE. 11 (4), 0152889 (2016).
  47. Gagen, D., et al. ICAM-1 mediates surface contact between neutrophils and keratocytes following corneal epithelial abrasion in the mouse. Experimental Eye Research. 91 (5), 676-684 (2010).
  48. Li, Z., Rivera, C. A., Burns, A. R., Smith, C. W. Hindlimb unloading depresses corneal epithelial wound healing in mice. Journal of Applied Physiology. 97 (2), 641-647 (2004).
  49. Byeseda, S. E., et al. ICAM-1 is necessary for epithelial recruitment of γδ T cells and efficient corneal wound healing. American Journal of Pathology. 175 (2), 571-579 (2009).
  50. Li, Z., Burns, A. R., Rumbaut, R. E., Smith, C. W. γδ T cells are necessary for platelet and neutrophil accumulation in limbal vessels and efficient epithelial repair after corneal abrasion. American Journal of Pathology. 171 (3), 838-845 (2007).
  51. Petrescu, M. S., et al. Neutrophil interactions with keratocytes during corneal epithelial wound healing: A role for CD18 integrins. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 48 (11), 5023-5029 (2007).
  52. Pal-Ghosh, S., Pajoohesh-Ganji, A., Tadvalkar, G., Stepp, M. A. Removal of the basement membrane enhances corneal wound healing. Experimental Eye Research. 93 (6), 927-936 (2011).
  53. Pal-Ghosh, S., et al. Cytokine deposition alters leukocyte morphology and initial recruitment of monocytes and γδT cells after corneal injury. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 55 (4), 2757-2765 (2014).
  54. Pal-Ghosh, S., Tadvalkar, G., Jurjus, R. A., Zieske, J. D., Stepp, M. A. BALB/c and C57BL6 mouse strains vary in their ability to heal corneal epithelial debridement wounds. Experimental Eye Research. 87 (5), 478-486 (2008).
  55. Kato, T., Chang, J. H., Azar, D. T. Expression of type XVIII collagen during healing of corneal incisions and keratectomy wounds. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 44 (1), 78-85 (2003).
  56. Kure, T., et al. Corneal neovascularization after excimer keratectomy wounds in matrilysin-deficient mice. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 44 (1), 137-144 (2003).
  57. Lin, A., et al. Bacterial keratitis preferred practice pattern. Ophthalmology. 126 (1), 1-55 (2019).
  58. Cable, E. J., Onishi, K. G., Prendergast, B. J. Circadian rhythms accelerate wound healing in female Siberian hamsters. Physiology and Behavior. 171, 165-174 (2017).
  59. Lyons, A. B., Moy, L., Moy, R., Tung, R. Circadian rhythm and the skin: A review of the literature. Journal of Clinical and Aesthetic Dermatology. 12 (9), 42-45 (2019).
  60. Westman, J., Grinstein, S., Marques, P. E. Phagocytosis of Necrotic Debris at Sites of Injury and Inflammation. Frontiers in Immunology. 10, 3030 (2020).
  61. Gaudry, M., et al. Intracellular pool of vascular endothelial growth factor in human neutrophils. Blood. 90 (10), 4153-4161 (1997).
  62. Pan, Z., et al. Vascular endothelial growth factor promotes anatomical and functional recovery of injured peripheral nerves in the avascular cornea. FASEB Journal. 7, 2756-2767 (2013).
  63. Di, G., et al. VEGF-B promotes recovery of corneal innervations and trophic functions in diabetic mice. Scientific Reports. 7 (1), 1-13 (2017).
  64. Thomas, M. R., Storey, R. F. The role of platelets in inflammation. Thrombosis and Haemostasis. 114 (3), 449-458 (2015).
  65. Margraf, A., Zarbock, A. Platelets in inflammation and resolution. The Journal of Immunology. 203 (9), 2357-2367 (2019).
check_url/it/63112?article_type=t

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Akowuah, P. K., De La Cruz, A., Smith, C. W., Rumbaut, R. E., Burns, A. R. An Epithelial Abrasion Model for Studying Corneal Wound Healing. J. Vis. Exp. (178), e63112, doi:10.3791/63112 (2021).

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