Summary

Zuivering van ubiquitinated p53-eiwitten uit zoogdiercellen

Published: March 21, 2022
doi:

Summary

Het protocol beschrijft een stapsgewijze methode om ubiquitinated eiwitten uit zoogdiercellen te zuiveren met behulp van het p53 tumor suppressor-eiwit als voorbeeld. Ubiquitinated p53-eiwitten werden gezuiverd uit cellen onder strenge niet-condenserende en denaturerende omstandigheden.

Abstract

Ubiquitinatie is een soort posttranslationele modificatie die niet alleen de stabiliteit reguleert, maar ook de lokalisatie en functie van een substraateiwit. Het ubiquitinatieproces vindt intracellulair plaats in eukaryoten en reguleert bijna alle basale cellulaire biologische processen. Zuivering van ubiquitinated eiwitten helpt bij het onderzoek naar de rol van ubiquitinatie bij het beheersen van de functie van substraateiwitten. Hier wordt een stapsgewijze procedure beschreven om ubiquitinated eiwitten in zoogdiercellen te zuiveren met het p53 tumorsuppressorgeiwit als voorbeeld. Ubiquitinated p53-eiwitten werden gezuiverd onder strenge niet-denaturerende en denaturerende omstandigheden. Totaal cellulair Flag-tagged p53-eiwit werd gezuiverd met anti-Flag antilichaam-geconjugeerde agarose onder niet-denaturerende omstandigheden. Als alternatief werd het totale cellulaire His-tagged ubiquitinated eiwit gezuiverd met behulp van nikkel-geladen hars onder denatureringsomstandigheden. Ubiquitinated p53-eiwitten in de eluaten werden met succes gedetecteerd met specifieke antilichamen. Met behulp van deze procedure kunnen de alomtegenwoordige vormen van een bepaald eiwit efficiënt worden gezuiverd uit zoogdiercellen, waardoor studies naar de rol van ubiquitinatie bij het reguleren van de eiwitfunctie worden vergemakkelijkt.

Introduction

Ubiquitine is een evolutionair geconserveerd eiwit van 76 aminozuren 1,2,3. Ubiquitine bindt covalent lysineresiduen op doeleiwitten door middel van cascades met activerende (E1), conjugaterende (E2) en ligase (E3) enzymen. Ubiquitine wordt eerst geactiveerd door het E1-enzym en wordt vervolgens overgebracht naar de E2-conjugaterende enzymen. Vervolgens interageren E3-ubiquitine-ligases met zowel ubiquitine-geladen E2-enzymen als substraateiwitten en bemiddelen ze de vorming van een isopeptidebinding tussen de C-terminal van ubiquitine en een lysineresidu in het substraat 1,2,3,4,5. Ubiquitinatie omvat de aanhechting van ubiquitine moieties aan lysineresiduen op substraateiwitten of aan zichzelf, wat leidt tot eiwitmonoubiquitinatie of polyubiquitinatie. Dit ubiquitinatieproces vindt intracellulair plaats in eukaryoten en reguleert een grote verscheidenheid aan biologische processen. Ubiquitinatie resulteert in de afbraak van substraateiwitten via het ubiquitine-proteasoomsysteem 1,2,3,4,5. Bovendien moduleert ubiquitinatie eiwitsubcellulaire lokalisatie, eiwitcomplexvorming en eiwithandel in cellen 3,5. Ubiquitine moieties die aan substraateiwitten zijn toegevoegd, kunnen worden verwijderd door deubiquitinerende enzymen (DUB’s)6,7. Met name de verschillende manieren waarop ubiquitineketens worden samengesteld, bieden een groot aantal middelen om verschillende biologische processen te reguleren 1,5. De exacte rol van ubiquitinatie bij het reguleren van de substraateiwitfunctie blijft tot nu toe onvolledig begrepen. De zuivering van ubiquitinated eiwitten draagt bij aan de opheldering van de effecten van eiwitubiquitinatie op een verscheidenheid aan cellulaire processen.

Het p53-eiwit is een van de belangrijkste tumorsuppressorgeiwitten en vertoont genetische mutaties of inactivatie bij bijna alle menselijke kankers 8,9,10,11. p53 stabiliteit en activiteit worden in vivo subtiel gereguleerd door posttranslationele modificaties, waaronder ubiquitinatie, fosforylering, acetylering en methylatie12,13. Het p53-eiwit heeft een korte halfwaardetijd variërend van 6 min tot 40 minuten in verschillende cellen, wat voornamelijk het gevolg is van de polyubiquitinatie en daaropvolgende proteasomale afbraak10,12. Muis dubbele minuut 2 (Mdm2) is een E3 ubiquitine ligase van p53 dat bindt aan de N-terminus van p53 om zijn transcriptionele activiteit te remmen 12,14,15. Mdm2 bevordert de polyubiquitinatie en proteasomale afbraak van p53 om de stabiliteit ervan te beheersen en induceert monoubiquitinatie van p53 om de nucleaire export te vergemakkelijken 12,14,15,16. Hier wordt Mdm2-gemedieerde p53-ubiquitinatie als voorbeeld gebruikt om een methode voor de zuivering van ubiquitinated eiwitten uit zoogdiercellen in detail te introduceren. De regulatoren die de ubiquitinatiestatus van doeleiwitten beïnvloeden, kunnen worden geïdentificeerd met behulp van deze in vivo ubiquitinatietest wanneer ze overexpressie hebben of worden neergeslagen / uitgeschakeld in zoogdiercellen. Bovendien kunnen ubiquitinated eiwitten worden gebruikt als substraten voor in vitro deubiquitinatietest. Een high-throughput screening kan worden uitgevoerd om specifieke DUB’s voor doeleiwitten te identificeren door ubiquitinated substraten te incuberen met individuele DUB’s. Ubiquitinated eiwitten kunnen fungeren als een steiger om downstream signaaleiwitten in cellen te rekruteren. Een alomtegenwoordig doeleiwitcomplex kan worden gezuiverd door sequentiële immunoprecipitatie onder inheemse zuiveringsomstandigheden en worden geïdentificeerd door massaspectrometrie. Het huidige protocol kan uitgebreid worden gebruikt om de cellulaire eiwitten te onderzoeken die worden gereguleerd door ubiquitinatie.

Er zijn verschillende methoden vastgesteld om ubiquitinated eiwitten te zuiveren, waaronder het gebruik van affiniteit-tagged ubiquitine, ubiquitine-antilichamen, ubiquitine-bindende eiwitten en geïsoleerde ubiquitine-bindende domeinen (UBD’s)17. Hier bieden we een protocol met behulp van affiniteit-gelabeld ubiquitine als een mediator om ubiquitinated eiwitten in zoogdiercellen te zuiveren. Het gebruik van poly-His-tagged ubiquitine biedt voordelen ten opzichte van de andere methoden. Ubiquitinated eiwitten worden gezuiverd in de aanwezigheid van sterke denaturanten, die niet-specifieke binding aan nikkel-geladen hars verminderen door cellulaire eiwitten te lineariseren en eiwit-eiwitinteracties te verstoren. Daarentegen kan het gebruik van ubiquitine-antilichamen, ubiquitine-bindende eiwitten en geïsoleerde URD’s als mediatoren bindende partners niet effectief uitsluiten van doeleiwit omdat zuivering onder minder strenge voorwaarden moet worden uitgevoerd. Bovendien kan zuivering ook leiden tot een verhoogde binding van niet-gerelateerde eiwitten met behulp van deze mediatoren. Bovendien is er een bindende neiging voor verschillende ubiquitine-koppelingstypen en mono- en poly-ubiquitinatie door ubiquitine-bindende eiwitten of geïsoleerde UBD’s17. Het gebruik van poly-His-tagged ubiquitine draagt bij aan het naar beneden halen van alle cellulaire ubiquitinated eiwitten. Als alternatief maakt het gebruik van in de handel verkrijgbare anti-Flag of anti-HA antilichaam-geconjugeerde agarose het gemakkelijker om grootschalige Flag- of HA-gelabelde doeleiwitten onder niet-condenserende omstandigheden te immunopreciperen. Een tweede zuiveringsstap, bijvoorbeeld door nikkel-geladen hars gericht op poly-His-tagged ubiquitine, kan worden gebruikt om ubiquitinated doeleiwitten met een hoge zuiverheid te verkrijgen voor downstream experimenten. Met name een epitoop tagging zuiveringsstrategie kan worden aangepast wanneer een specifiek antilichaam niet kan worden verkregen om doeleiwitten effectief te immunoprecipitaat. Ten slotte behoudt de zuivering van ubiquitinated eiwitten in zoogdiercellen, in vergelijking met zuivering in vitro, de ubiquitine-koppelingsmodus van doeleiwitten onder meer fysiologische omstandigheden.

Protocol

OPMERKING: H1299-cellen werden vriendelijk verstrekt door de Stamcelbank, Chinese Academie van Wetenschappen en bleken negatief te zijn voor mycoplasmabesmetting. 1. Celkweek Plaats voor de initiële cultuur 1 x 106 cellen van menselijke longadenocarcinoomcellijn, H1299 in een petrischaaltje van 10 cm met 10-12 ml RPMI 1640 medium aangevuld met 10% foetaal runderserum (FBS), 1% glutamineadditief, 1% natriumpyruvaat en antibiotica (100 U / ml penicilline en…

Representative Results

Het schematische diagram toont de Flag-tagged p53 (Flag-p53) en His/HA double-tagged ubiquitine (HH-Ub) eiwitten (Figuur 1A). De procedures die worden gebruikt om ubiquitinated eiwitten te zuiveren zijn samengevat in figuur 1B. Poly-His-tagged ubiquitine kan worden geligeerd om eiwitten in zoogdiercellen te targeten. Ubiquitinated proteins kunnen worden gezuiverd met Flag/M2-kralen onder niet-aturerende omstandigheden of door geïmmobiliseerde metaalionaffinitei…

Discussion

Ubiquitinatie speelt een cruciale rol in bijna alle fysiologische en pathologische cellulaire processen2. In de afgelopen jaren is grote vooruitgang geboekt bij het begrijpen van de moleculaire rol van ubiquitine in signaalroutes en hoe veranderingen in het ubiquitinesysteem leiden tot verschillende menselijke ziekten2. De zuivering van ubiquitinated eiwitten draagt bij aan het inzichtelijk maken van de exacte rollen van ubiquitinatie in deze processen. De mengsels van ubiq…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door een subsidie van de National Natural Science Foundation of China (81972624) aan D.L.

Materials

β-mercaptoethanol Sangon Biotech M6250
Amersham ECL Mouse IgG, HRP-linked whole Ab (from sheep) GE healthcare NA931 Secondary antibdoy
Amersham ECL Rat IgG, HRP-linked whole Ab (from donkey) GE healthcare NA935 Secondary antibdoy
Anti-Flag M2 Affinity Gel Sigma-Aldrich A2220 FLAG/M2 beads
Anti-GFP monocolonal antibody Santa cruz sc-9996 Primary antibody
Anti-HA High Affinity Roche 11867423001 Primary antibody
Anti-Mdm2 monocolonal antibody (SMP14) Santa cruz sc-965 Primary antibody
Anti-p53 monocolonal antibody (DO-1) Santa cruz sc-126 Primary antibody
EDTA Sigma-Alddich E5134 solvent
Fetal Bovine Serum VivaCell C04001-500 FBS
FLAG Peptide Sigma-Alddich F3290 Prepare elution buffer
GlutaMAX Gibco 35050-061 supplement
Guanidine-HCI Sangon Biotech A100287-0500 solvent
H1299 Stem Cell Bank, Chinese Academy of Sciences
Image Lab Bio-rad software
Immidazole Sangon Biotech A500529-0100 solvent
Immobilon Western Chemiluminescent HRP Substrate Millipore WBKLS0500
Lipofectamine 2000 reagents Invitrogen 11668019 Transfection reagent
Na2HPO4 Sangon Biotech A501727-0500 solvent
NaCl Sangon Biotech A610476-0005 solvent
NaF Sigma-Alddich 201154 solvent
NaH2PO4 Sangon Biotech A501726-0500 solvent
Ni-NTA Agarose QIAGEN 30230 nickel-charged resin
Nitrocellulose Blotting membrane GE healthcare 10600002 0.45 µm pore size
Opti-MEM reduced serum medium Gibco 31985-070 Transfection medium
PBS Corning 21-040-cv
Penicillin-Streptomycin Solution Sangon Biotech E607011-0100 antibiotic
Protease inhibitor cocktail Sigma-Aldrich P8340
RPMI 1640 Biological Industries 01-100-1ACS medium
Sarkosyl Sigma-Alddich L5777 solvent
SDS Loading Buffer Beyotime P0015L
Sodium Pyruvate Gibco 11360-070 supplement
Tris-base Sangon Biotech A501492-0005 solvent
Tris-HCI Sangon Biotech A610103-0250 solvent
Triton X-100 Sangon Biotech A110694-0500 reagent
Tween-20 Sangon Biotech A100777-0500 supplement
Ultra High Sensitive Chemiluminescence Imaging System Bio-rad ChemiDoc XRS+
Urea Sangon Biotech A510907-0500 solvent

Riferimenti

  1. Kwon, Y. T., Ciechanover, A. The ubiquitin code in the ubiquitin-proteasome system and autophagy. Trends in Biochemical Sciences. 42 (11), 873-886 (2017).
  2. Popovic, D., Vucic, D., Dikic, I. Ubiquitination in disease pathogenesis and treatment. Nature Medicine. 20 (11), 1242-1253 (2014).
  3. Zheng, N., Shabek, N. Ubiquitin ligases: Structure, function, and regulation. Annual Review of Biochemistry. 86, 129-157 (2017).
  4. Dikic, I., Wakatsuki, S., Walters, K. J. Ubiquitin-binding domains – from structures to functions. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 10 (10), 659-671 (2009).
  5. Oh, E., Akopian, D., Rape, M. Principles of ubiquitin-dependent signaling. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 34, 137-162 (2018).
  6. Clague, M. J., Urbe, S., Komander, D. Breaking the chains: deubiquitylating enzyme specificity begets function. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 20 (6), 338-352 (2019).
  7. Harrigan, J. A., Jacq, X., Martin, N. M., Jackson, S. P. Deubiquitylating enzymes and drug discovery: emerging opportunities. Nature Reviews Drug Discovery. 17 (1), 57-78 (2018).
  8. Vogelstein, B., Lane, D., Levine, A. J. Surfing the p53 network. Nature. 408 (6810), 307-310 (2000).
  9. Boutelle, A. M., Attardi, L. D. p53 and Tumor suppression: It takes a network. Trends In Cell Biology. 31 (4), 298-310 (2021).
  10. Levine, A. J. p53: 800 million years of evolution and 40 years of discovery. Nature Reviews Cancer. 20 (8), 471-480 (2020).
  11. Vousden, K. H., Prives, C. Blinded by the light: The growing complexity of p53. Cell. 137 (3), 413-431 (2009).
  12. Brooks, C. L., Gu, W. p53 ubiquitination: Mdm2 and beyond. Molecular Cell. 21 (3), 307-315 (2006).
  13. Liu, Y., Tavana, O., Gu, W. p53 modifications: exquisite decorations of the powerful guardian. Journal Of Molecular Cell Biology. 11 (7), 564-577 (2019).
  14. Dobbelstein, M., Levine, A. J. Mdm2: Open questions. Cancer Science. 111 (7), 2203-2211 (2020).
  15. Kulikov, R., et al. Mdm2 facilitates the association of p53 with the proteasome. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (22), 10038-10043 (2010).
  16. Li, M., et al. Mono- versus polyubiquitination: differential control of p53 fate by Mdm2. Science. 302 (5652), 1972-1975 (2003).
  17. Tomlinson, E., Palaniyappan, N., Tooth, D., Layfield, R. Methods for the purification of ubiquitinated proteins. Proteomics. 7 (7), 1016-1022 (2007).
  18. Green, M., Sambrook, J. . Molecular Cloning A Laboratory Manual. (Fourth Edition). 2, 28 (2012).
check_url/it/63602?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Wu, D., He, M., Li, D. Purification of Ubiquitinated p53 Proteins from Mammalian Cells. J. Vis. Exp. (181), e63602, doi:10.3791/63602 (2022).

View Video