Summary
İnce bağırsağın farklı boyutlardaki partikülleri nasıl işlediğini incelemek için, ince bağırsak geçişini belirlemek için yerleşik bir in vivo yöntemi değiştirdik.
Abstract
Gastrointestinal (GI) motilitesi normal sindirim ve emilim için kritik öneme sahiptir. Besinleri emen ince bağırsakta, hareketlilik sindirim ve emilimi optimize eder. Bu nedenle, ince bağırsaktaki hareketlilik modellerinden bazıları, luminal içeriklerin karıştırılması için segmentasyon ve itici güçleri için peristalsis içerir. Luminal içeriğin fiziksel özellikleri, ince bağırsak hareketliliğinin kalıplarını modüle eder. GI mekanosensoriyel devrelerinin luminal içerikleri ve altta yatan bağırsak hareketliliğini geçirerek mekanik olarak uyarılması, karmaşık GI motor paternlerini başlatır ve modüle eder. Yine de, bu süreci yönlendiren mekanosensoriyel mekanizmalar tam olarak anlaşılamamıştır. Bu öncelikle ince bağırsağın farklı fiziksel özelliklere sahip materyalleri nasıl işlediğini incelemek için gerekli araçların eksikliğinden kaynaklanmaktadır. İnce bağırsağın farklı boyutlardaki partikülleri nasıl işlediğini incelemek için, ince bağırsak geçişini belirlemek için yerleşik bir in vivo yöntemi değiştirdik. Canlı fareleri floresan sıvı veya küçük floresan boncuklarla besliyoruz. 30 dakika sonra, floresan içeriğinin GI yolunun tamamı boyunca dağılımını görüntülemek için bağırsakları diseke ediyoruz. Geometrik merkezin yüksek çözünürlüklü ölçümlerine ek olarak, farklı malzemelerin ince bağırsak geçişini nasıl etkilediğini belirlemek için değişken boyutlu gruplama ve spektral analiz kullanıyoruz. Yakın zamanda keşfedilen bir "bağırsak dokunuşu" mekanizmasının bu yaklaşımı kullanarak ince bağırsak hareketliliğini nasıl etkilediğini araştırdık.
Introduction
İnsan gastrointestinal (GI) sistemi, kabaca farklı boyutlarda ve fiziksel özelliklerde bir tüp olarak yaklaşık olarak yaklaşık olarak çok ayak uzunluğunda bir organ sistemidir1. İçerikler uzunluğu boyunca hareket ettikçe, GI yolunun birincil işlevi yaşam için kritik olan maddeleri emmektir. İnce bağırsak özellikle besin emiliminden sorumludur. İnce bağırsağın geçişi, sindirim ve emilim fonksiyonlarına uyacak şekilde sıkı bir şekilde düzenlenir ve bu da çeşitli hareketlilik modellerine neden olur. Bayliss ve Starling, 1899'da "bağırsak yasasını"2 tanımladılar ve bugün peristaltik refleks olarak bilinen bağırsaktaki kasılma tahrik programını gösterdiler; gıda bolusuna yakın segment onu ileriye doğru itmek için büzülür ve distal segment onu almak için gevşer. Teorik olarak, bu model tek başına materyali oral olarak taşımak için yeterli olabilir, ancak bir yüzyıldan fazla süren araştırmalar, GI kanalındaki kasılma aktivitesinin daha karmaşık bir resmini çizmiştir. İnsanlarda üç ince bağırsak hareketlilik periyodu tanınır: göç eden motor kompleksi (MMC), açlık dönemi ve postprandiyal dönem3. Aynı modeller farelerdede bildirilmiştir 4,5. MMC, çoğu memelide korunan döngüsel bir motor modelidir 6,7. MMC, fonksiyonel GİS bozukluklarında yararlı bir klinik belirteç görevi gören karakteristik dört fazlı bir paterne sahiptir7. Dört faz, oluşum sırasına göre, (I) sessizlik, (II) düzensiz, düşük genlikli kasılmalar, (III) düzenli yüksek genlikli kasılmalar ve (IV) azalan aktivitenin rampa aşağı periyodu7'dir. MMC, oruç dönemi3'ün ana motor modelini işaretler. Oruç döneminin MMC'leri, bir sonraki öğüne hazırlanırken ince bağırsağın içeriğini temizler.
Postprandiyal dönemin motor paternleri sindirim ve emici fonksiyonlar için optimize edilmiştir3. Kalorik bileşimden bağımsız olarak, ilk transit ince bağırsak boyunca hızlıdır, içerikler bağırsağın uzunluğu boyunca yayılır ve transit daha sonra8'i yavaşlatır. Emilim, temas yüzeyi alanını artırarak ve ikamet süresini artırmak için yavaşlatarak optimize edilir. Besinler lümenin içine girdikten sonra, baskın patern yakın (<2 cm arayla) koordine edilmemiş kasılmalardan (segmentleme kasılmaları) oluşur ve ince bağırsağın tüm uzunluğunu kapsayan birkaç üst üste binmiş büyük genlikli kasılmalar (peristaltik kasılmalar)9. Segmentleme kasılmaları, intraluminal içeriği yerinde karıştırır. Ara sıra büyük peristaltik kasılmalar, içeriği kolona doğru iter.
MMC'lere bu geçişin zamanlaması, gıda hacmine ve kalorik bileşime bağlıdır10. Böylece, ince bağırsak, hareketlilik dönemleri arasında ne zaman geçiş yapılacağını düzenlemek için luminal ipuçlarını örnekler. Luminal içeriklerin fiziksel özellikleri 11, luminal hacim ve duvar gerilimi gibi mekanik ipuçları, GI duvarı 12,13,14,15,16'daki mekanoreseptör hücreleri devreye sokar. Gerçekten de, bir yemeğin katı bileşeninin arttırılması, ince bağırsak geçişinde bir artışa yol açar17. İntraluminal içeriğin sıvı veya katı hali gibi fiziksel özelliklerin, GI duvarı18'de ürettikleri çeşitli kuvvetler nedeniyle farklı mekanoreseptörleri devreye sokması gerektiğini düşünüyoruz.
İnsanlarda in vivo GI transitini ölçmek için altın standart, farelerde olduğu gibi, mideden çıkarken veya kolon19,20 boyunca geçerken sintigrafi ile ölçülen radyoaktif izleyicilerin kullanılmasıdır. Memelilerde, ince bağırsak öngörülemeyen şekillerde döngü yaparak, ince bağırsağın in vivo olarak güvenilir bir şekilde görüntülenmesini zorlaştırır, ancak ilerleme kaydedilmektedir21. Ayrıca, şu anda ince bağırsağın farklı özelliklere ve boyutlara sahip partikülleri nasıl işlediğini ölçmek için araç eksikliği vardır. Buradaki başlangıç noktası, ince bağırsak transiti22,23,24 vebariyer fonksiyonu 22 çalışmasını standartlaştıran altın standart bir teknikti. Floresan bir malzeme ile farelerin gavaging edilmesi, GI hareketliliğinin malzemeyi taşımasını beklemek, GI kanalını eksize etmek, mideden kolona kadar birkaç bölüme ayırmak, floresan niceliği için intraluminal içeriği bölümlemek ve homojenize etmekten oluşur. İki iyileştirme yaptık. İlk olarak, ince bağırsağın fiziksel parçacıkları nasıl dağıttığını belirlemek için gavaged içeriğinin makyajını floresan mikroskobik boncuklar içerecek şekilde değiştirdik. İkincisi, mideden kolon ex vivo'ya kadar tüm GI yolunu görüntüleyerek uzamsal çözünürlüğü geliştirdik ve analizimizi hayvanlar arasında standartlaştırmak için değişken boyutlu bağlama kullandık. Bunun, postprandiyal faz sırasında itici ve segmentleme kasılmalarının dengesi hakkında yeni bilgiler ortaya koyduğunu varsayıyoruz.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Burada açıklanan tüm yöntemler, Mayo Clinic'in Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC) tarafından onaylanmıştır.
1. Kurulum
- 8 ila 10 haftalık fareleri 4 saat boyunca hızlı. Farelerin suya erişimini sağlayın.
NOT: Burada sunulan tüm deneyler için vahşi tip erkek C57BL / 6J fareleri kullanıyoruz, ancak bunlar herhangi bir suş, cinsiyet ve genotipteki fareler üzerinde gerçekleştirilebilir. - 15 mL damıtılmış suyu 4 °C'lik bir buzdolabında 50 mL'lik konik bir tüpte soğutun.
- Yaklaşık 80-90 ° C'ye kadar manyetik karıştırma çubuğuna sahip bir sıcak plaka kullanarak bir beherde 15 mL damıtılmış su daha ısıtın.
- Toplam 30 mL (0.15 g) için% 0.5 metilselüloz ölçün.
- Kümelenmemesi için 15 mL sıcak suya yavaşça metilselüloz ekleyin. Metilselüloz çözeltisi bu işlem sırasında bulanık olacaktır.
- Çözüldükten sonra, beheri sıcak plakadan çıkarın ve 15 mL soğutulmuş suyu sıcak beherin içine ekleyin.
- Çözelti temizlenene kadar yaklaşık 15-20 dakika 4 ° C'lik bir buzdolabına koyun.
- Berrak olduğunda, 5 mL% 0.5 metilselüloz çözeltisi başına 3 mg rodamin izotiyosiyanat (RITC)-dekstran tartın ve birleştirmek için karıştırın. Bu, Temsili Sonuçlar bölümündeki sıvı durumdur.
- Alternatif olarak, 25 mg floresan polietilen mikrosferi tartın ve iyi bir şekilde birleşene kadar 200 μL metilselüloz çözeltisi ile karıştırın. Mikrosferlerin kapsamlı bir şekilde dahil edilmesi, gavage öncesi vorteks tarafından sağlanır. Deneyci, karışımdaki asılı mikrosferlerin homojen dağılımını görselleştirmelidir .
- RITC-dextran çözeltisi ışığa duyarlı olduğundan, çözeltiyi soğutun. RITC-dextran çözeltisini ve mikroshpere karışımını önceden hazırlayın ve 2 ay içinde kullanın. Kullanmadan önce mikrosfer karışımını yeniden askıya alın.
NOT: Farklı boyuttaki mikrosferler, farklı malzemelerin gastrointestinal kullanımını incelemek için kullanılır. Temsili Sonuçlar bölümünde, küçük (çap: 75-90 μm) ve daha büyük (çap: 180-212 μm) mikrosferlerin kullanılmasının sonuçlarını gösteriyoruz.
2. İntraluminal içerikli gavage
- 1 mL'lik bir şırıngaya 18 Ga x 50 mm'lik bir besleme tüpü takarak ve 200 μL RITC çözeltisi veya mikrosfer çözeltisi çekerek gavajı hazırlayın.
- Tek elle kısıtlama tekniğini kullanarak oruç tutan hayvanı manuel olarak kısıtlayın25. Kurumun uygun murin kısıtlama teknikleri hakkındaki bilgilerine bakın.
- Besleme tüpünü, mideye girene kadar farenin ağzından ve yemek borusundan yavaşça yerleştirin.
NOT: Gavage adımı, başarılı bir deney için kritik öneme sahiptir. Tüpü her fareye kabaca aynı mesafeye sürekli olarak yerleştirebilen deneyimli eller gerektirir. Bu adımın, protokolü uygulayan deneyciler tarafından standartlaştırılması gerekiyor. Aynı deneyci, birbirleriyle karşılaştırılacak tüm fare kohortlarını gavage etmelidir. - Şırınga içeriğini yavaşça mideye atın ve tüpü fareden dikkatlice çıkarın.
- Gavage'ı takiben, fareyi kafese geri getirin.
- Gavage tüpünü atın.
- İstenilen sayıda hayvan için işlemi gerektiği gibi tekrarlayın.
3. Bağırsak diseksiyonu
- Diseksiyonlara başlamadan önce, sıcaklığa gelmesine izin vermek için in vivo görüntüleme cihazını açın.
- Gavage'den 30 dakika sonra fareyi feda edin. Fareyi feda etmek için karbondioksit inhalasyonunu kullanın, ardından başarılı ötenazi sağlamak için servikal çıkık izleyin.
- Başarılı ötenaziyi onayladıktan sonra, fareyi diseksiyon aşamasında sırtüstü pozisyonda yerleştirin ve karnına erişebilmek için dört uzantısını sahneye sabitleyin. Karın kıllarını ıslatmak için karın yüzeyini% 70 etanol ile ıslatın.
- Cildi çekmek için mikro diseksiyon forseps kullanın ve anüsün 1 cm yukarısında enine bir kesi yapmak için keskin cerrahi makas elde edin. İntraperitoneal boşluğu açığa çıkarmak için, insizyonu göğüs kafesine kadar karın boyunca dikey olarak devam ettirin.
- Distal kolonu açığa çıkarmak için çekumu mikro diseksiyon forseps ile yavaşça sola doğru hareket ettirin.
- Distal kolonu rektuma sadece proksimal mikro diseksiyon makası ile kesin.
- Kolon, çekum ve ince bağırsağı yavaşça ters yönde çekerek yavaşça çözün.
NOT: Disseke edilmiş bağırsakların sürekli bir segmentte tutulması, araştırmacı için en fazla kolaylığı yaratacaktır. Segment boyunca yırtılmalar ve yırtılmalar, sonraki adımların daha zor olmasına neden olacaktır. - Mideye proksimal kesmek için mikro diseksiyon makası kullanın.
- Disseke edilmiş bağırsakları ölçüm sayfasına aktarmak için forseps kullanın (Şekil 1). Mideyi 0 mm'ye yerleştirin ve bağırsakları cetvel boyunca 200 mm'ye kadar düzenleyin. 200 mm'de kesmek için mikro diseksiyon makası kullanın. Bağırsakların oryantasyonunun karışmadığından emin olurken, bağırsakları cetveller boyunca 0 mm'den 200 mm'ye hizalama işlemini tekrarlayın.
- Cetvellere hizalanırken bağırsakları germekten kaçının.
- Doku cetvel üzerine yerleştirildikten sonra, çekumu dokuya paralel olacak ancak onunla doğrudan temas etmeyecek şekilde düzenleyin (o bölgede herhangi bir floresan bulunursa, çekum ve bağırsaklar arasında net bir fark ayrımına ihtiyaç duyulacaktır).
- Ölçüm sayfasını disseke edilmiş doku ile karanlık bir alana yerleştirin, böylece floresan görüntü zamanı gelene kadar korunabilir.
4. Ex vivo görüntüleme
- İn vivo görüntüleme yazılımını açın ve giriş yapın.
- Görüntü yakalamaya hazır olması için görüntüleme aygıtını başlatın.
- 'Uyarılma' ve 'Emisyon' alanlarını boncuk veya RITC gavajı için kullanılan karşılık gelen renge ayarlayın. Kırmızı (sıvı): uyarma 535 nm / emisyon 600 nm. Yeşil (mikrosferler): uyarma 465 nm / emisyon 520 nm.
- Pozlamayı "Otomatik" olarak ayarlayın.
- Görüş alanını seçin.
- Ölçüm sayfasını cihaza yerleştirmeden önce, taşıma sırasında bağırsakların kaymadığından emin olun.
- Ölçüm sayfasını görüş alanı içindeki cihaza yerleştirin.
- Cihazın kapısını güvenli bir şekilde kapatın ve görüş alanını fotoğraflamak için Anlık Görüntü'yü seçin.
- Toplanan resimleri analiz için bir flash sürücüye kaydedin. Floresan ve fotoğraf görüntülerinin ayrı ayrı çekimlerini kaydedin. Fotoğrafın ve floresanın bir bindirmesi, floresan malzemenin GI kanalındaki yerini gösterir (Şekil 1).
NOT: Dosyaları aşağı akış işleme için Etiket Resim Dosyası (.tif) biçiminde kaydetmenizi öneririz.
5. Analiz
- Floresan ve fotoğraf görüntü dosyalarını bir resim düzenleme yazılımında açın.
- Her iki görüntünün piksel boyutunu da aynı boyutlara sahip olacak şekilde ayarlayın (kuralımız her iki görüntüyü de 1280 piksele 850 piksel [yükseklik x genişlik]) ayarlamaktı).
- Fotoğraf dosyasını kapatın. Aşağıdaki adımlar yalnızca floresan görüntüyü içerir.
- Arka planı kaldırmak ve şeffaf hale getirmek için bir silgi aracı kullanın. Kalan arka planın yamalarını kaldırmak için bir silgi gerekebilir.
- Yeni bir katman oluşturun. Floresan sinyalinin tamamen siyah bir arka planını yapın. Bu, katmana siyah bir dolgu seçerek ve katmanı floresan görüntüyle katmanın altına uzanacak şekilde sürükleyerek elde edilebilir.
- Siyah bir arka plan üzerinde yalnızca floresan sinyalini içeren yeni floresan görüntüsünü yeni bir .tif dosyası olarak kaydedin.
- Yeni floresan ve fotoğraf görüntülerini ImageJ'de açın.
- Görüntü > Türü > 32 bit'i seçerek her görüntüyü 32 bit görüntüye dönüştürün.
- Görüntü > Renk > Kanalları Birleştir'i seçerek her ikisinin de birleştirilmiş görüntüsünü oluşturun. Açılan iletişim kutusunda, gri kanal için fotoğraf dosyasını ve herhangi bir renkli kanalın altındaki floresan dosyayı seçin.
- Ölçeği Analiz Et > Ayarla > Ölçeği Kaldırmak için Tıklat'ı seçerek birleştirilmiş görüntünün ölçeğini kapatın.
- ImageJ'de "Dikdörtgen" aracını seçin.
- İnce bağırsağın bir bölümünün etrafına bir dikdörtgen çizin. Tüm YG'ler arasında sabit kalması gerektiğinden, bu ilgi bölgesinin (YG) genişliğine çok dikkat edin. Nominal değer gerekli değildir, sadece bu görüntüde çizilen tüm YG'ler arasında tutarlı tutulur [ince bağırsak birkaç sırayı devraldığından, ince bağırsağın her bir bölümüne farklı bir satırda ayrı YG'ler çizilecektir (Şekil 1)]. Şekil 2 , ImageJ araç çubuğundaki genişlik değerinin konumunu gösterir.
- Görüntü > Çoğalt'ı seçerek YG'yi çoğaltın. Yalnızca renkli kanala karşılık gelen kanalı seçin.
- Tamamen yeni görüntünün üzerine bir yatırım getirisi çizmek için dikdörtgen aracını tekrar kullanın.
- Analiz > Grafik Profilini seçerek floresan profilini alın. Elde edilen grafik, y ekseninde, YG'nin uzunluğu boyunca her piksel için ortalama yoğunluğu çizer. Bu, 5.12. adımda, ince bağırsağın analiz edilen bölümünün uzunluğu olarak seçildi.
- Değerler listesini açın ve bunları bir e-tablo yazılımına kopyalayın.
- İnce bağırsağın her bölümü için 5.12-5.16 arasındaki adımları farklı bir cetvel satırında yineleyin. Değerleri, önceki her bir değer kümesinin hemen altına aynı elektronik tablo dosyasına yapıştırmaya devam edin, böylece bu sütundaki tüm sürekli satırlar ince bağırsağın tüm uzunluğu için ortalama yoğunluk değerini içerir.
- Elektronik tablo yazılımında, her ortalama yoğunluk değerini, adım 5.12'de oluşturulan yatırım getirisi dikdörtgeninin sabit genişliğiyle çarpın. Bu, her noktada ince bağırsak boyunca gerçek yoğunluk değerini verecektir.
NOT: Farklı hayvanların ince bağırsak uzunluğu üzerinde hafif varyasyonları olacaktır. Uzunluk farklılıklarının aşağı akış veri analizinin sonucunu etkilemesini önlemek için, yoğunluk değerleri dizesinin tüm deneysel örneklerde tutarlı sayıda bölmeye bağlanması gerekir (Şekil 3, Şekil 4 ve Şekil 5, üç bölme boyutu için sonuçları görüntüler). - Yoğunluk değerlerinin sayısını istenen kutu sayısına bölün. Elde edilen S bölümü, her bir bölmeye dahil edilen yoğunluk değerlerinin sayısını belirler.
- Bir yuvarlama formülü kullanarak her ham yoğunluk değerinin gideceği bölmeyi belirleyin. Bu adım, her ham yoğunluk değerini bir kutuya yerleştirir. Her ham yoğunluk değeri kronolojik olarak N tamsayısı ile indekslenir. N/S bölümü, her ham değere atanan bin sayısını belirler. Yuvarlama formülü bu bölümü ondalık olmayan bir tam sayıya yuvarlamalıdır.
- Bir averageif formülü kullanarak her bölme için değer oluşturun. Amaç, Adım 5.20'de belirli bir bölmeye atanan ham değerlerin ortalamasını almaktır. Bu nedenle, formüldeki bağımsız değişkenler şöyle olmalıdır: (1) Adım 5.20'de oluşturulan atanmış kutular, (2) bin sayısı, (3) ham yoğunluk değerleri.
NOT: Bağlanmış veriler üzerinde yapabileceğimiz ilk analiz, ince bağırsak boyunca en yüksek floresan yoğunluğunu ne kadar gözlemlediğimizi ölçen geometrik bir merkez analizidir (Şekil 4). - Her yoğunluk değerini toplam floresan yoğunluğu üzerinden normalleştirin. Başka bir deyişle, her yoğunluk değerini tüm yoğunlukların toplamına bölün.
- Normalleştirilmiş her değeri bin sayısıyla çarpın. Ürün, her bir kutunun nispi ağırlığını yansıtır ve toplam floresan yoğunluğuna katkıda bulunur.
- Adım 5.23'te üretilen tüm değerlerin eklenmesi, floresan sinyalinin merkezindeki kutu numarasını verir. Geometrik merkezi, floresan merkezi tarafından hareket eden ince bağırsak fraksiyonu olarak ifade etmek için kutu sayısına bölün.
NOT: Sinyalin uzamsal dağılımını yansıtmak için bir sonraki adım, bağlanmış yoğunluk veri kümesinin güç spektrumunu oluşturmaktır (Şekil 5). - Elektronik tablo yazılımında bir Hızlı Fourier Dönüşümü (FFT) sihirbazı açın. Girişi ciltlenmiş veri kümesi olarak ve çıkışı bölmelerle aynı sayıda satırdan oluşan boş bir küme olarak seçin.
- FFT'nin gerçek değer bileşenini ayıklayın.
- FFT'nin her gerçek değerini ikinci güce yükseltin. Bu, bir veri kümesi güç spektrumu verir.
- Güç spektrumu veri kümesinin ilk yarısını seçin ve ikinci yarının altında kalacak şekilde taşıyın. Bu, bir sonraki adımda çizildiğinde güç spektrumlarını merkez frekansın etrafında merkezleme etkisine sahiptir.
- Güç spektrumlarını, x ekseni değerlerinin -1 x (kutu sayısı/2) ile (kutu sayısı/2) -1 arasında olduğu bir x-y grafiğinin y ekseni üzerinde çizin. 1000 bin durumunda, eksen değerleri -500 ile 499 arasında değişir.
- Her hayvan için güç spektrumları, sıfır olmayan zirvelerin yayılmasına ve bu sıfır olmayan zirvelerin yüksekliklerine göre karşılaştırılmalıdır.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Adım 3'ten itibaren temsili sonuçlar gösteriyoruz. Şekil 1 , floresan ölçümleri üst üste yerleştirilmiş sağlam ekşi bağırsakları göstermektedir. Mide (mor) ince bağırsak (turuncu) ile aynı eksen boyunca serilir, ancak kalın bağırsakla (turuncu) örtüşmeyi önlemek için çekumu (mavi) yana doğru hareket ettirmeyi tercih ederiz. Sol panelde kanıtlandığı gibi, organ büyüklüğü nedeniyle bu her zaman mümkün değildir. Sürekli segmentlerin kapsamını en üst düzeye çıkarmak için ince bağırsağı ~ 200 mm'de kesiyoruz, ancak mezenterin bağırsakları açma yeteneğini sınırlaması ve floresan peletler veya çekum gibi yapıları kesmemeyi tercih etmemiz nedeniyle bu her zaman mümkün değildir. Şekil 1'in sol panelindeki kırmızı yoğunluk ve orta ve sağ panellerin yeşil yoğunlukları, Şekil 3'ü oluşturmak için farklı boyutlarda kutulara ayrılır. Sadece turuncu ROI'ler (ince bağırsak) içindeki yoğunluklar analiz için çıkarılır. İnce bağırsağın tam uzunluğu (her paneldeki her turuncu ROI) analiz için çıkarılır. Turuncu yatırım getirileri, ImageJ'de görüntülenenle aynı genişliktedir (Şekil 2). Bağlamadan önce tüm yoğunlukları sırayla yerleştirerek birbirine dikilirler. Şekil 3 , kohort başına SEM ± ortalama floresan izini göstermektedir; ayrıntılar için şekil açıklamasına bakın.
Son iki rakam analizlerin sonuçlarını göstermektedir: geometrik merkez ve güç spektrumu. Geometrik merkez, Şekil 3'teki floresan sinyallerinin ortalama konumunu ölçer ve ortalamayı her bir kutunun sinyal gücüne göre tartar. Bu nedenle, izdeki daha yüksek zirveler, ortalamayı o zirvenin konumuna yaklaştırır. Geometrik merkez, intraluminal içeriklerin mekansal dağılımını tamamen karakterize edemez. Örneğin, aynı geometrik merkez, tek bir noktada yoğunlaşmış bir bolustan ve aynı nokta etrafında merkezlenmiş bir yayılma sinyalinden elde edilebilir. Geometrik merkez ölçümünün bu sınırlaması, sıvılar ve daha büyük boncuklar arasındaki karşılaştırmada belirgindir (Şekil 3 ve Şekil 4). Sıvı floresan izinin çoğunluğu iki erken tepe noktası etrafında merkezlenirken, daha büyük boncuklar ince bağırsağın tam uzunluğu boyunca birden fazla tepe noktası gösterir (Şekil 3, sol ve sağ paneller). Daha büyük boncukların floresan izi daha fazla dağılmıştır, ancak yalnızca geometrik merkeze odaklanmanın sınırlamasını vurgulayan bağlama granülerliğinden bağımsız olarak sıvınınkine benzer bir noktaya kadar ortalamasını alır (Şekil 4). İnce bağırsak kasılmalarının dağıtıcı doğasını açıklamak için, protokole bir güç spektral analizi ekledik. Güç spektrumu analizi, uzaydaki floresan dağılımını farklı uzamsal frekansların çoklu sinüzoid eğrilerine dönüştürerek çalışır. Her uzamsal frekans, floresan izinde rastgele seçilen iki nokta arasındaki mesafeyi yansıtır. Bu mesafelerin bazıları diğerlerinden daha sık meydana gelir, bu nedenle her birine bir güç (güç) atfedilir. Güç, iki rastgele noktanın bu mesafeyle ne sıklıkta ayrıldığı ile ilişkilidir. Güç spektrumunu çizerek (Şekil 5), ölçülen sinyale (spektrumun yayılması) kaç uzamsal frekansın katkıda bulunduğunu gösterebilir ve bu katkıların göreceli gücünü (spektrumun yüksekliği) karşılaştırabiliriz. Bu, floresanın GI yolu boyunca yayılmasını nicel olarak tanımlamamızı sağlar.
Şekil 1. Disseke edilmiş bağırsaklar, fotoğraf ve floresan ölçümünden önce ekilir ve lamine cetvel kağıdına yerleştirilir. Floresan yoğunluğu, gavaged malzemenin doğal floresansına uyacak şekilde kaplanmış ve sözde renklendirilmiştir. Solda: kırmızı spektrumda sıvı rodamin izotiyosiyanat (RITC) floresanları; Orta: küçük (çap: 75-90 μm) ve Sağ: daha büyük (çap: 180-212 μm) boncukların her ikisi de yeşil spektrumda floresan yapar. Mor, turuncu, mavi ve pembe kutular, sırasıyla her örnekte mide, ince bağırsak, çekum ve kolondaki ilgi alanlarını (ROI'ler) çevreler. Her yatırım getirisinin genişliği, aşağı akış analizi sırasında ham floresan yoğunluğunu hesaplarken karışıklığı önlemek için satırlar arasında tutarlı tutulur. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 2. İlgi alanı genişliğindeki bölgenin konumu (piksel cinsinden) ImageJ araç çubuğunda (sarı alt çizgi). Yinelemek gerekirse, genişlik yalnızca ölçek kaldırılmışsa piksel cinsinden görüntülenir (Adım 5.10). Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 3. Floresan, ince bağırsağın uzunluğu boyunca izler. Çizgi, belirli bir kutudaki ortalama floresanı gösterir. Gölgeli alan, ortalamanın standart hatasını (SEM) gösterir. Floresan malzemenin dağılımı, intraluminal içeriğin (sütunların) malzeme özelliklerine göre değişir. Solda: Gavage'den 30 dakika sonra birkaç ince bağırsak segmentinde sıvı (n = 7 fare) dağılımı. Orta ve sağ: küçük (n = 6 fare) ve daha büyük (n = 5 fare) boncuklar, gavage'den 30 dakika sonra ince bağırsak boyunca daha geniş bir şekilde dağılır. Aynı ham veri kümelerini sıralamak için kullanılan kutu sayısını artırmak, daha az bölme (satır) ile çözülemeyen ayrıntılı izleme özelliklerini ortaya çıkarır. Daha küçük kutular ölçüm belirsizliğini azaltır, uzamsal çözünürlüğü arttırır ve ince bağırsak kasılmalarının dağıtıcı bileşenini daha iyi yansıtır. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 4. Sıvı RITC, küçük boncuklar (75-90 μm) ve daha büyük boncuklar (180-212 μm) ile gavage işleminden 30 dakika sonra ince bağırsakta floresan dağılımının geometrik merkezi (ortalama ± SEM, n = 7, n = 6, n = 5, Bonferroni düzeltmeli tek yönlü ANOVA). Kutu boyutu, küçük boncukların gavajdan 30 dakika sonra sıvılardan daha distal olarak taşındığı transit yorumunu etkilemez, ancak daha büyük boncuklar o kadar geniş bir şekilde dağılır ki, geometrik merkezlerinde hem sıvılara hem de küçük boncuklara kıyasla önemli bir fark yoktur (* P < 0.05. ns = istatistiksel olarak anlamlı değildir). Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 5. Güç spektrumları, malzeme özelliğine (sütunlar) ve kutu boyutuna (satırlar) göre kategorize edilir. Uzamsal çözünürlükteki ve daha küçük gruplamadaki gelişmeler belirgindir. Üst sıra: Geniş ölçüde bağlanmış spektrumlarda birkaç fark ayırt edilebilir. Alt sıra: Kutu boyutları küçüldükçe, daha büyük boncukların spektrumunda bulunan önemli baskın frekansları takdir edebiliriz, ancak küçük boncuklarınkinde değil. Bu ek baskın frekansların hepsi olmasa da bazıları sıvı spektrumunda bulunur. Alt sıra spektrumlarını kullanarak, Şekil 3'teki floresan izleriyle karşılaştırabiliriz. Şekil 3'te, sıvı floresan izi, güç spektrumundaki birkaç baskın tepe noktasıyla ilişkili olan iki belirgin tepe noktasını gösterir. Şekil 3'teki küçük boncuk izi, güç spektrumundaki tek bir baskın tepe noktasıyla ilişkili olan tek bir baskın tepe noktası görüntüler. Şekil 3'teki daha büyük boncuk izi daha baskın zirveler göstermektedir. Buna göre, güç spektrumu daha fazla sayıda baskın frekans gösterir. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
GI yolu, kan damarları gibi diğer boru şeklindeki organlar gibi, homeostazı korumak için mekanik sensörler ve efektörler gerektirir26,27,28. Bununla birlikte, GI yolu, onu geçen malzemelerin fiziksel özelliklerinin öğünler arasında sabit olmaması bakımından benzersizdir. Çeşitli fiziksel özelliklerin (katı, sıvı ve gaz) intraluminal içeriği bağırsaktan geçerek GI mekanoreseptörlerine farklı mekanik girdiler üretir. Gerçekten de, kolondaki farklı mekanik uyaranlar, farklı yollar tarafından algılanır ve iletilir29.
Bu protokol, rutin fare işi yapan herkes tarafından teknik olarak erişilebilir, ancak birkaç kritik adım yakından ilgilenilmesini gerektirir. Çalışmaya başlamadan önce oruç tutan farelerin önemli olduğunu düşünüyoruz, çünkü floresan sinyalini seyrelten önceki yemeklerden gelen katkıyı ortadan kaldırıyor. Ayrıca, standart bir diyetle beslenen fareler, diyet bileşenlerinden, özellikle klorofil bileşeni30'dan intraluminal floresan sergiler. Oruç ve florofor seçimi yoluyla, chow floresansının bu protokolde özetlenen deneylerin kontrollü koşullarına müdahale etmesini önlüyoruz. Deneycilerin, seçilen açlık süresinin ince bağırsaktaki spesifik olmayan floresanı ortadan kaldırmak için yeterli olduğunu bağımsız olarak doğrulamalarını öneririz, çünkü bu suş, yaş veya cinsiyete göre değişebilir. Deneyci, gavaged içeriklerin homojen dağılımını görsel olarak değerlendirmelidir. Aksi takdirde, teslimatlarında ve çalışma sonuçlarında belirsizlik olacaktır. Gavages, aynı deneyci, tercihen teknikle ilgili deneyim geliştirmiş biri tarafından tutarlı bir şekilde yapılmalıdır. Deneyci, içeriğin mideye tutarlı bir şekilde iletilmesini hedeflemelidir. Yemek borusunda veya sadece midede floresan bulmak, ince bağırsağın gavaged içeriğine aynı erişime sahip olup olmadığı belirsiz olduğundan, bir hayvanı analizden dışlamak için gerekçelerdir. Gavagingden sonra, erken veya geç transit aşamalarının ilgi çekici olup olmadığına bağlı olarak bekleme süreleri 15 dakikaya kadar kısaltılabilir veya 90 dakikaya uzatılabilir22. Sıvı gavage kullanan orijinal protokol, malzemenin çoğunluğunun 30 dakika sonra ince bağırsakta bulunduğunu göstermiştir. Ayrıca, diseksiyon adımı sırasında aceleyle çalışmak kritik olsa da, intraluminal içeriğin yerini bozmamaya ve GI yolunu yırtmamaya özen gösterilmelidir.
Bu protokol, ince bağırsağı beş ila 10 segmente bölerek fiziksel olarak bağlayan ve floresan / radyoaktivite ölçümü22,23,24'ten önce intraluminal içeriği homojenize eden daha önce yayınlanmış yaklaşımlardan gelişti. Önceki yaklaşım önemliydi çünkü ince bağırsak geçişinin ölçümünü standartlaştırdı. İnce bağırsak, karın boşluğunun içindeki karmaşık ve öngörülemeyen desenlerde kötü şöhretli bir şekilde döngü yapar. Görüntülemeye dayalı transit çalışmaları, türlerden bağımsız olarak zordur31,32. Protokolümüz insanlara genişletilemeyen bir terminal deneyi olarak kalırken, uzamsal çözünürlüğü önemli ölçüde iyileştiriyoruz ve bölgesel geçişleri çözmek ve bunları ince bağırsak (güç spektrumu) içindeki yayılmanın tarafsız bir ölçümüne dönüştürmek için bu gelişmeyi kullanıyoruz.
Bu protokolde, uzamsal çözünürlük, kameranın görüntüleme sistemindeki çözünürlüğü ile sınırlıdır. Binning, hayvanlar arasında ince bağırsak uzunluğunu normalleştirdiğinden, intraluminal içeriğin ortalama konumunu doğrudan karşılaştırabiliriz. Şekil 3 , büyük kutu boyutlandırmasından kaynaklanan sert yumuşatma, artan belirsizlik ve azalan çözünürlüğü açıkça göstermektedir. Geometrik merkez, GI yolu boyunca floresan merkezini ölçer (Şekil 4). Beklendiği gibi, bu ölçüm kutu boyutundan önemli ölçüde etkilenmez. Güç spektrumu, Şekil 3'teki floresan izlerindeki piklerin ve yayılmaların analizini standartlaştıran tarafsız ve tamamlayıcı bir yöntemdir. Çözünürlüğün iyileştirilmesi, hesaplanan spektrumları iyileştirerek floresan izleri arasındaki görünür farklılıkları göstermeyi mümkün kılar (Şekil 5). Düşük çözünürlükte (10 kutu), sıvılar ve daha büyük boncuklar arasında, geometrik merkez veya spektrum değerlendirmeleri ile ayırt etmek zor olacaktır, ancak floresan izlerine bakıldığında, uzayda benzer şekilde dağılmadıkları açıktır. Daha yüksek çözünürlükte (1000 kutu), geometrik merkezler hala benzerdir (geometrik merkezin ortalama bir ölçüm olması nedeniyle), ancak güç spektrumu her iki kohort arasında ayrım yapmak için güvenilir bir şekilde kullanılabilir. Floresan izlerin, öncü ölçümler gibi diğer analiz türlerine uygun olduğunu belirtmek gerekir. Geometrik merkezde beklenen değişiklikler, deneylere başlamadan önce örneklem büyüklüğü hesaplamaları sırasında kullanılabilir. Sıvıların geometrik merkezi yaklaşık 0.4-0.518 olduğunu bilerek, her grupta% 45'e varan değişiklikleri istatistiksel olarak çözmek için en az beş fare kullandık.
Kapsamı genişlettik ve bu protokolü ince bağırsaktaki katıların geçişini incelemek için kullandık. Sıvılarda olduğu gibi, katı mikrosferleri mideye boşalttık. Pilorik sfinkter mide-ince bağırsak geçişinde bulunur. Bu sfinkter, boyut dışlama filtresi olarak çalışır. Farelerde, boyut kesimi ~ 300 μm'dir, partiküller <300 μm'dir ve ince bağırsak33'e girmede dirençle karşılaşmaz, ancak bu yaklaşım aynı zamanda yakın tarihli bir çalışmada kullandığımız biraz daha büyük partiküllerle de çalışır18. Son çalışmayı tamamlayan bir dizi boyut sağlamak için mikrosfer boyutlarımızı burada seçtik. 75-90 μm ve 180-212 μm çaplara sahip iki ticari floresan boncuk preparatı kullandık. Şekil 1 , kohortlar arasında midede benzer floresan yoğunluğu ve profilleri göstermektedir, bu da ne sıvıların ne de partiküllerin mide tarafından farklı şekilde tutulmadığını göstermektedir. Burada sunulan orijinal veriler, vahşi tip farelerin ince bağırsağının sıvıları ve mikroskobik katıları nasıl farklı şekilde ele aldığını göstermektedir. Şimdiye kadar, bağımsız deneme başına bir boyut aralığındaki boncukları kullandık. Gelecekteki çalışmalar, farklı büyüklükteki parçacıkların karışımlarının nasıl ele alındığına ve çeşitli fiziksel özelliklere sahip floresan sıvıların, ince bağırsak tarafından nasıl daha gerçekçi kekik karışımlarının işlendiğini belirlemek için floresan boncuklarla karıştırılmasına odaklanabilir.
Burada bildirilen dağılım farklılıkları, farklı özelliklere sahip malzemeler tarafından aktive edilen hareketlilik modellerinde bir fark olduğunu göstermektedir. Segmentleme ve itici kasılmaların dengesinin, malzemelerin ince bağırsağı ne kadar uzağa ve ne kadar homojen bir şekilde geçirdiğini belirlediğini varsayıyoruz. Küçük boncuklar için geometrik merkez, sıvılara kıyasla ince bağırsak boyunca daha uzaktır, bu da küçük katı parçacıkların itici kasılmalara karıştığını düşündürmektedir. Öte yandan, daha büyük boncuklar için geometrik merkez bir sıvıya benzerken, spektral analiz, daha büyük boncuk ayarında daha fazla segmentasyon kasılmalarının bir sonucu olabilecek mekansal dağılımda önemli farklılıklar göstermektedir. İnce bağırsağın, bir tür mekanosensoriyel devre olan boyut ayrımcılığını, kasılma tipleri arasındaki dengeye karar vermeyi besleyen girdilerden biri olarak kullandığını varsayıyoruz. Örneğin, Dogiel tip II nöronları, iticiden kasılmaları segmentlere ayırmaya geçişi yönlendirmede rol oynadığı tahmin edilen mekanosensoriyel nöronlardır16,34. Bu ilgi çekici spekülasyonlar, GI yolunun fiziksel özellikleri algıladığı ve bunları kasılmalar gibi fizyolojik çıktılara dönüştürdüğü mekanizmaları belirlemek için daha fazla araştırma gerektirir.
Bu protokolün, moleküllerden hücrelere ve organ fonksiyonlarına kadar olan boşluğu kapatmak için ek bir araç olarak yararlı olacağına inanıyoruz. GI epitelyal mekanoreseptörlerinin deri mekanoreseptörleri ile gelişimsel ve yapısal benzerlikler taşıdığını fark ettik35. Yukarıda özetlenen protokolü kullanarak, bu GI epitelyal mekanoreseptörlerinin hafif mekanik uyaranları algıladığı ve içsel dokunsal duyarlılığa katıldığı "bağırsak dokunuşunun" duyusal rolünü göstermeye yardımcı olduk18. Bu protokolün, diğer duyusal devrelerin ince bağırsak geçişine nasıl katkıda bulunduğunu incelemek için benzer şekilde yararlı olacağını tahmin ediyoruz.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Hiç kimse.
Acknowledgments
İdari yardım için Bayan Lyndsay Busby'ye ve medya desteği için Bay Joel Pino'ya teşekkür ederiz. NIH hibeleri bu çalışmayı destekledi: DK123549, AT010875, DK052766, DK128913 ve Mayo Clinic Gastroenterolojide Hücre Sinyalizasyonu Merkezi (DK084567).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| C57BL/6J mice | Jackson Laboratory | 664 | other mice can be used with this protocol |
| Dissection tools | n/a | n/a | |
| Excel software | Microsoft | n/a | used for spreadsheet analysis |
| Fluorescent Green Polyethylene Microspheres 1.00g/cc 75-90um - 10g | Cospheric | UVPMS-BG-1.00 75-90um - 10g | "smaller beads" in the manuscript |
| Fluorescent Green Polyethylene Microspheres 1.00g/cc 180-212um - 10g | Cospheric | UVPMS-BG-1.00 180-212um - 10g | "larger beads" in the manuscript |
| Gavage needles | Instech | FTP-18-50-50 | |
| ImageJ software | n/a | n/a | used to extract fluorescence profile |
| Laminated ruler paper (prepared in-house) | n/a | n/a | |
| Methyl cellulose (viscosity: 400 cP) | Sigma | M0262 | |
| Photoshop software | Adobe | n/a | used for image processing |
| Rhodamine B isothiocyanate-Dextran | Sigma | r8881-100mg | "liquid" condition in the manuscript |
| Xenogen IVIS 200 | Perkin Elmer | 124262 | In vivo imaging system |
References
- Stevens, C. E., Hume, I. D. Comparative Physiology of the Vertebrate Digestive System. 2nd ed. , Cambridge University Press. (2004).
- Bayliss, W. M., Starling, E. H. The movements and innervation of the small intestine. The Journal of Physiology. 24 (2), 99-143 (1899).
- Husebye, E. The patterns of small bowel motility: physiology and implications in organic disease and functional disorders. Neurogastroenterology and Motility. (11), 141-161 (1999).
- Bush, T. G., et al. Effects of alosetron on spontaneous migrating motor complexes in murine small and large bowel in vitro. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 281 (4), 974-983 (2001).
- Der-Silaphet, T., et al. Interstitial cells of cajal direct normal propulsive contractile activity in the mouse small intestine. Gastroenterology. 114 (4), 724-736 (1998).
- Szurszewski, J. H. A migrating electric complex of the canine small intestine. American Journal of Physiology. 217 (6), 1757-1763 (1969).
- Deloose, E., et al. The migrating motor complex: control mechanisms and its role in health and disease. Nature Reviews Gastroenterology and Hepatology. 9 (5), 271-285 (2012).
- Johansoon, C., Ekelund, K. Relation between body weight and the gastric and intestinal handling of an oral caloric load. Gut. 17, 456-462 (1976).
- Sarna, S. K., et al. Spatial and temporal patterns of human jejunal contractions. American Journal of Physiology. 257 (1), 423-432 (1989).
- Hall, K. E., El-Sharkawy, T. Y., Diamant, N. E. Vagal control ofcanine postprandial upper gastrointestinal motility. American Journal of Physiology. 250, 501-510 (1986).
- Mayer, E. A. Gut feelings: the emerging biology of gut-brain communication. Nature Reviews Neuroscience. 12 (8), 453-466 (2011).
- Alcaino, C., et al. A population of gut epithelial enterochromaffin cells is mechanosensitive and requires Piezo2 to convert force into serotonin release. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America Sciences. 115 (32), 7632-7641 (2018).
- Kugler, E. M., et al. Mechanical stress activates neurites and somata of myenteric neurons. Frontiers in Cellular Neuroscience. 9, 342 (2015).
- Mazzuoli, G., Schemann, M. Mechanosensitive enteric neurons in the myenteric plexus of the mouse intestine. PloS One. 7 (7), 39887 (2012).
- Won, K. J., Sanders, K. M., Ward, S. M. Interstitial cells of Cajal mediate mechanosensitive responses in the stomach. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102 (41), 14913-14918 (2005).
- Mao, Y., Wang, B., Kunze, W. Characterization of myenteric sensory neurons in the mouse small intestine. Journal of Neurophysiology. 96 (3), 998-1010 (2006).
- McIntyre, A., et al. Effect of bran, ispaghula, and inert plastic particles on gastric emptying and small bowel transit in humans: the role of physical factors. Gut. 40 (2), 223-227 (1997).
- Treichel, A. J., et al. Specialized mechanosensory epithelial cells in mouse gut intrinsic tactile sensitivity. Gastroenterology. 162 (2), 535-547 (2022).
- Bharucha, A. E., Anderson, B., Bouchoucha, M. More movement with evaluating colonic transit in humans. Neurogastroenterology and Motility. 31 (2), 13541 (2019).
- Camilleri, M., et al. Human gastric emptying and colonic filling of solids characterized by a new method. American Journal of Physiology. 257 (2), 284-290 (1989).
- Wang, D., et al. Trans-illumination intestine projection imaging of intestinal motility in mice. Nature Communications. 12 (1), 1682 (2021).
- Woting, A., Blaut, M. Small intestinal permeability and gut-transit time determined with low and high molecular weight fluorescein isothiocyanate-dextrans in C3H mice. Nutrients. 10 (6), 685 (2018).
- Miller, M. S., Galligan, J. J., Burks, T. F. Accurate measurement of intestinal transit in the rat. The Journal of Pharmacologial and Toxicological Methods. 6 (3), 211-217 (1981).
- Moore, B. A., et al. Inhaled carbon monoxide suppresses the development of postoperative ileus in the murine small intestine. Gastroenterology. 124 (2), 377-391 (2003).
- Machholz, E., et al. Manual restraint and common compound administration routes in mice and rats. Journal of Visualized Experiments. (67), e2771 (2012).
- Baeyens, N., Schwartz, M. A. Biomechanics of vascular mechanosensation and remodeling. Molecular Biology of the Cell. 27 (1), 7-11 (2016).
- Ye, G. J., Nesmith, A. P., Parker, K. K. The role of mechanotransduction on vascular smooth muscle myocytes' cytoskeleton and contractile function. The Anatomical Record (Hoboken). 297 (9), 1758-1769 (2014).
- Mercado-Perez, A., Beyder, A. Gut feelings: mechanosensing in the gastrointestinal tract. Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology. , 1-14 (2022).
- Brierley, S. M., et al. Splanchnic and pelvic mechanosensory afferents signal different qualities of colonic stimuli in mice. Gastroenterology. 127 (1), 166-178 (2004).
- Inoue, Y., et al. Diet and abdominal autofluorescence detected by in vivo fluorescence imaging of living mice. Molecular Imaging. 7 (1), 21-27 (2008).
- Szarka, L. A., Camilleri, M. Methods for the assessment of small-bowel and colonic transit. Seminars in Nuclear Medicine. 42 (2), 113-123 (2012).
- Padmanabhan, P., et al. Gastrointestinal transit measurements in mice with 99mTc-DTPA-labeled activated charcoal using NanoSPECT-CT. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 3 (1), 1-8 (2013).
- Jang, S. F., et al. Size discrimination in rat and mouse gastric emptying. Biopharmaceutics and Drug Disposition. 34 (2), 107-124 (2013).
- Zhu, Y. F., et al. Enteric sensory neurons communicate with interstitial cells of Cajal to affect pacemaker activity in the small intestine. Pflügers Archiv: European Journal of Physiology. 446 (7), 1467-1475 (2014).
- Treichel, A. J., Farrugia, G., Beyder, A. The touchy business of gastrointestinal (GI) mechanosensitivity. Brain Research. 1693, 197-200 (2018).
