Summary

Fluorescentie geactiveerde celsortering van plantenprotoplasten

Published: February 18, 2010
doi:

Summary

Een methode voor het isoleren van specifieke celtypen uit plantaardig materiaal wordt gedemonstreerd. Deze techniek maakt gebruik van transgene marker lijnen uitdrukken fluorescerende eiwitten in het bijzonder celtypen, cellulaire dissociatie en fluorescentie geactiveerde cel sortering. Daarnaast wordt een groei setup hier vast te staan ​​dat vergemakkelijkt de behandeling van<em> Arabidopsis thaliana</em> Zaailingen voorafgaand aan de cell sorting.

Abstract

Hoge-resolutie, celtype-specifieke analyse van genexpressie vergroot begrip van de ontwikkelings-regelgeving en reacties op prikkels uit de omgeving in een meercellig organisme. In situ hybridisatie en reportergen visualisatie kan in beperkte mate worden gebruikt voor dit doel, maar voor hoge resolutie kwantitatieve RT-PCR of high-throughput transcriptoom-brede analyse van de isolatie van RNA uit bepaalde celtypen is vereiste. Cellulaire dissociatie van weefsel expressie brengen van een fluorescerend eiwit marker in een bepaald celtype en de daaropvolgende Fluorescentie Activated Cell Sorting (FACS) maakt het mogelijk om voldoende hoeveelheden materiaal te verzamelen voor RNA-extractie, cDNA synthese / versterking en microarray analyse.

Een uitgebreide set van celtype-specifieke tl-reporter-lijnen is beschikbaar voor de plant onderzoeksgemeenschap. In dit geval worden twee marker lijnen van de Arabidopsis thaliana wortel gebruikt: P SCR:: GFP (endodermis en rust midden) en P WOX5:: GFP (quiescent center). Grote aantallen (duizenden) van zaailingen zijn hydroponically of op agarplaten geteeld en geoogst om voldoende wortel materiaal voor verdere analyse te verkrijgen. Cellulaire dissociatie van plantmateriaal wordt bereikt door enzymatische afbraak van de celwand. Deze procedure maakt gebruik van een hoge osmolariteit-geïnduceerde plasmolyse en commercieel beschikbaar cellulasen, om pectinasen en hemicellulasen vrijkomen protoplasten in de oplossing.

FACS van GFP-positieve cellen maakt gebruik van de visualisatie van de groene versus de rode emissie spectra van protoplasten opgewekt door een 488 nm laser. GFP-positieve protoplasten kunnen worden onderscheiden door hun verhoogde ratio van groen naar rood emissie. Protoplasten worden meestal direct gesorteerd op RNA-extractie buffer en opgeslagen voor verdere verwerking op een later tijdstip.

Deze techniek is geopenbaard worden eenvoudig en uitvoerbaar zijn. Verder wordt aangetoond dat het kan worden gebruikt zonder moeite om voldoende aantallen cellen te isoleren voor het transcriptoom analyse, zelfs voor zeer schaars celtypes (bv. quiescent center cellen). Ten slotte wordt een groei setup voor Arabidopsis zaailingen aangetoond dat in staat stelt eerdere ongecompliceerde behandeling van de planten naar cel sorteren (bijvoorbeeld voor het celtype-specifieke analyse van de biotische of abiotische stress-reacties). Mogelijke aanvullende toepassingen voor FACS van plantenprotoplasten worden besproken.

Protocol

1) Voorbereiding van het plantmateriaal Protoplasten kan worden afgeleid uit veel verschillende plantensoorten en weefsels op voorwaarde dat de juiste mix van celwand enzymen wordt 1 gebruikt. Voordat een full-scale experiment is uitgevoerd, een kleinschalige vertering van het materiaal is het raadzaam om de protoplasting efficiëntie van het weefsel, enzymen, enz. te evalueren en om het percentage positieve cellen voor celsortering te schatten. Hier, protoplasten afgeleid van de wortels van Ar…

Discussion

Protoplasten kunnen in principe worden afgeleid uit een verscheidenheid van plantaardige weefsels, het optimaliseren van gunstige voorwaarden zal sterk RNA kwaliteit en kwantiteit te verbeteren. Zowel de protoplasting oplossing en de electieve gebruikte incubatiebuffer invloed zal dit aspect.

Veel verschillende fluorescerende eiwitten kunnen worden gebruikt, afhankelijk van de mogelijkheden van de gebruikte FACS, bijvoorbeeld GFP, RFP, YFP, GVB of hun vele varianten en derivaten. De…

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door de National Science Foundation (subsidie ​​niet. DBI 0.519.984) en de National Institutes of Health (subsidie ​​niet. 5R01GM078279) ..

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
250 μm nylon mesh   Sefar Filtration NITEX 03-250/50  
100 μm nylon mesh   Sefar Filtration NITEX 03-100/47  
Square petri dishes   Fisher Scientific 08-757-10k  
Phytatrays   Sigma P1552  
Murashige and Skoog Basal Medium (MS)   Sigma M5519  
sucrose   Fisher Scientific S5-3  
MES   Sigma M2933  
KOH   Sigma P1767 10 M stock
Eclipse 90i microscope   Nikon    
Cellulase R-10   Yakult Pharmaceutical    
Macerozyme R-10   Yakult Pharmaceutical    
D-mannitol   Sigma M9546  
KCl   Sigma P8041 1 M stock
BSA   Sigma A3912  
β-mercaptoethanol   CALBIOCHEM 444203  
CaCl2   Sigma C2536 1 M stock
orbital shaker   LAB-LINE    
40 μm cell strainer   BD Falcon 352340  
conical 15 ml tubes   BD Falcon 352196  
table centrifuge   Sorvall Legend RT  
NaCl   Sigma S3014  
FACSAria   BD    
1.5 ml microfuge tubes   VWR 20170-38  
RNeasy micro kit   QIAGEN 74004  
WT-Ovation Pico RNA Amplification System   NuGEN 3300_12  
FL-Ovation cDNA Biotin Module V2   NuGEN 4200_12  

References

  1. Sheen, J. Signal transduction in maize and Arabidopsis mesophyll protoplasts. Plant Physiol. 127, 1466-1475 (2001).
  2. Wysocka-Diller, J. W., Helariutta, Y., Fukaki, H., Malamy, J. E., Benfey, P. N. Molecular analysis of SCARECROW function reveals a radial patterning mechanism common to root and shoot. Development. 127, 595-603 (2000).
  3. Blilou, I., Xu, J., Wildwater, M., Willemsen, V., Paponov, I., Friml, J., Heidstra, R., Aida, M., Palme, K., Scheres, B. The PIN auxin efflux facilitator network controls growth and patterning in Arabidopsis roots. Nature. 433, 39-44 (2005).
  4. Gifford, M. L., Dean, A., Gutierrez, R. A., Coruzzi, G. M., Birnbaum, K. D. Cell-specific nitrogen responses mediate developmental plasticity. Proc Natl Acad Sci U S A. 105, 803-808 (2008).
  5. Bargmann, B. O. R., Birnbaum, K. D. Positive fluorescent selection permits precise, rapid, and in-depth overexpression analysis in plant protoplasts. Plant Physiol. 149, 1231-1239 (2009).
  6. Petersson, S. V., Johansson, A. I., Kowalczyk, M., Makoveychuk, A., Wang, J. Y., Moritz, T., Grebe, M., Benfey, P. N., Sandberg, G., Ljung, K. An Auxin Gradient and Maximum in the Arabidopsis Root Apex Shown by High-Resolution Cell-Specific Analysis of IAA Distribution and Synthesis. Plant Cell. 21, 1659-1668 (2009).
check_url/kr/1673?article_type=t&slug=fluorescence-activated-cell-sorting-of-plant-protoplasts

Play Video

Cite This Article
Bargmann, B. O. R., Birnbaum, K. D. Fluorescence Activated Cell Sorting of Plant Protoplasts. J. Vis. Exp. (36), e1673, doi:10.3791/1673 (2010).

View Video