Summary

השימוש בChemostats בביולוגיה מיקרוביאלית מערכות

Published: October 14, 2013
doi:

Summary

שיעור צמיחת תאים הוא תהליך מוסדר וקובע עיקרי של פיזיולוגיה של תא. culturing הרציף באמצעות chemostats מאפשר שליטה חיצונית של שיעור צמיחת תאים על ידי הגבלה תזונתית להקל על הלימוד של רשתות מולקולריות השולטות צמיחת תאים וכיצד רשתות אלה להתפתח כדי לייעל את צמיחת תאים.

Abstract

תאים לווסת את קצב צמיחה שלהם בתגובה לאותות מהעולם החיצוני. כתא גדל, תהליכים תאיים שונים חייבים להיות מתואמים ביניהם סינתזת macromolecular, חילוף חומרים וסופו של דבר, מחויבת למחזור חלוקת תא. Chemostat, שיטה של ​​ניסוי שליטה שיעור צמיחת תאים, מספקת אמצעי רב עוצמה של שיטתי לומד כיצד תהליכים תאיים משפיע שיעור צמיחה – הכוללים ביטוי גנים וחילוף חומרים – ורשתות רגולטורים ששולטות בקצב גדילת תאים. כאשר נשמר במשך מאות דורות chemostats יכול לשמש כדי לחקור אבולוציה אדפטיבית של חיידקים בתנאים סביבתיים המגבילים את צמיחת תאים. אנו מתארים את העיקרון של תרבויות chemostat, להדגים את פעולתם ולספק דוגמאות של היישומים השונים שלהם. לאחר תקופה של חוסר שימוש לאחר כניסתה שלהם באמצע המאה העשרים, ההתכנסות של מתודולוגיות הגנום בקנה מידה עם מחודשת בterest בויסות גדילת תאים ואת הבסיס המולקולרי של אבולוציה אדפטיבית הוא מגרה רנסנס בשימוש בchemostats במחקר ביולוגי.

Introduction

הצמיחה של תאים מווסתות על ידי רשתות מורכבות של האינטראקציה 1,2 גורמים גנטיים וסביבתיים. הרגולציה multifactorial של צמיחת תאים מחייבת גישה ברמת מערכת למחקר שלה. עם זאת, המחקר הקפדני של צמיחת תאים מוסדרת הוא קרא תיגר על ידי הקושי בניסוי שליטה על הקצב שבו תאים לגדול. יתר על כן, אפילו בניסויים הפשוטים תנאים תאיים הם לעתים קרובות דינמיים ומורכבים כמו תאים ברציפות לשנות את הסביבה שלהם כמו שהם מתרבים. פתרון לבעיות אלו מסופק על ידי chemostat: שיטה של ​​culturing תאים המאפשרת שליטת ניסיוני של שיעורי צמיחת תאים בסביבות מוגדרות, בלתי משתנה ומבוקרות.

השיטה של תרבית רציפה באמצעות chemostat תוארה באופן עצמאי על ידי מונה 3 ונוביק & 4 סילארד ב1950. כמו נולד במקור, תאים גדלים בנפח קבוע של תקשורת שהוא קוןדילול tinually על ידי תוספת של מדיה חדשה וההסרה בו זמנית של אמצעי תקשורת ותאים ישנים (איור 1). משוואות דיפרנציאליות רגילות יחד (איור 2) מתארות את שיעור השינוי בתא צפיפות (x) ואת הריכוז של חומר מזין הגבלת צמיחה (ים) בכלי chemostat. חשוב מכך, מערכת זו של משוואות צופה בודד (שאינו אפס) יציב מצב יציב (איור 3) עם המשמעות יוצאת דופן, כי במצב יציב, קצב הגידול הספציפי של התאים (כלומר קבוע שיעור צמיחה מעריכית) שווה לשיעור שבתרבות בדילול מלא (ד '). על ידי שינוי שיעור דילול זה אפשרי להקים אוכלוסיות מצב יציב של תאים על שיעורי צמיחה שונים ובתנאים שונים של הגבלה תזונתית.

השליטה הניסיונית של שיעור צמיחה באמצעות chemostats הייתה קריטית להתפתחות של הבנה של אופן ששינויים בפיזיולוגיה של תאיםעם שיעורים של 5,6 צמיחה. עם זאת, עמוד התווך לשעבר זה של שיטות מיקרוביולוגיות הפך מעורפל יותר ויותר במהלך הפיצוץ במחקר בביולוגיה מולקולרית בשלהיי המאה העשרים. כיום, עניין מחודש בצמיחת שליטה בשני חיידקים ויצורים רב תאיים וכניסתו של שיטות הגנום בקנה מידה לניתוח ברמת מערכות חידש מוטיבציה לשימוש בchemostats. כאן, אנו מתארים שלושה יישומים שמנצלים את השליטה המדויקת של שיעורי צמיחת תא והסביבה החיצונית, כי הם ייחודי אפשריים באמצעות chemostats. ראשית, אנו מתארים את השימוש של chemostats לחקור כיצד השפע של אלפי ביומולקולות – כגון תמלילים ומטבוליטים – מוסדרים מתואם עם קצב צמיחה. שנית, אנו מתארים כיצד ניתן להשתמש chemostats לקבל אומדנים מדויקים של הבדלי צמיחה בשיעור שבין גנוטיפים שונים בסביבות מוגבלות תזונתיים באמצעות ניסויי תחרות. שלישית, אנו מתארים כיצד chemostats יכוללשמש כדי לחקור אבולוציה אדפטיבית של תאים גדל בסביבות תזונתיות ירודה קבועים. דוגמאות אלה ממחישים את הדרכים שבהן chemostats מאפשרות לחקירות ברמת מערכות של רגולציה צמיחת תאים, גן על ידי אינטראקציות סביבה והתפתחות אדפטיבית.

Protocol

עיקרון culturing הרציף באמצעות chemostat יכול להתממש במגוון רחב של יישומים. בכל chemostats זה חיוני שיהיה לי 1) שיטות לשמירה על סטריליות של כל הרכיבים, 2) תרבות מעורבת היטב, 3) אוורור מתאים של כלי התרבות ו4) אמצעי אמין של תקשורת ובנוסף הסרת התרבות. כאן, אנו מתארים את השימוש של bioreactor Sixfors …

Representative Results

יתרון עיקרי של chemostats הוא היכולת לשלוט על קצב הצמיחה של תאים בניסוי על ידי שינוי שיעור הדילול. בשמרי ניצנים, שמר אפייה, המורפולוגיה של תא הוא אינפורמטיבי של השלב שלה במחזור חלוקת תא. אוכלוסיות עם שיעורי צמיחה גבוהים יותר מכילות שיעור גבוה יותר של תאים המתחלקים באופן פע…

Discussion

Chemostats לאפשר הטיפוח של חיידקים בתנאי מצב יציב בשליטת צמיחה. התאים גדלים ברציפות בקצב קבוע וכתוצאה מכך סביבה חיצונית משתנה. זאת בניגוד לשיטות התרבות אצווה שבסביבה החיצונית משתנית ללא הרף ובקצב צמיחת תאים נקבע על ידי האינטראקציה המורכבת של הסביבה וגנוטיפ. לפיכך, יתרון …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי להתחיל את כספים בצורה של אוניברסיטת ניו יורק. אנו מודים מאטרייה דאנהם ומאט בראואר, שפתח בתחילה את השימוש בbioreactors Sixfors כchemostats.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Infors-HT Sixfors Chemostat Appropriate Technical Resources, Inc.    
Glass Bottle 9.5 L Fisher Scientific 02-887-1 For Media Vessel and Hosing
Pinchcock Fisher Scientific 05-867 For Media Vessel and Hosing
Stopper, Size 12, Green Neoprene Cole-Palmer EW-62991-42 For Media Vessel and Hosing
Straight Connector Cole-Palmer EW-30703-02 For Media Vessel and Hosing
General purpose ties 4 in Fisher Scientific NC9557052 For Media Vessel and Hosing
Tubing, Silicone Rubber Small Parts B000FMWTDE For Media Vessel and Hosing
Tubing, Silicone, 3/8 in OD Fisher Scientific 02-587-1Q For Media Vessel and Hosing
Tubing, Silicone, 7/32 in OD Fisher Scientific 02-587-1E For Media Vessel and Hosing
Tubing, Stainless Steel, 3/16 in OD McMaster-Carr 6100K164 For Media Vessel and Hosing
Tubing, Stainless Steel, 3/8 in OD McMaster-Carr 6100K161 For Media Vessel and Hosing
Hook Connectors Fisher Scientific 14-66-18Q For Media Vessel and Hosing
Ratchet Clamp Cole-Palmer EW-06403-11 For Media Vessel and Hosing
Luer, Female Cole-Palmer EW-45512-34 For Media Vessel and Hosing
Luer, Male Cole-Palmer EW-45513-04 For Media Vessel and Hosing
Millipore Aervent MTGR05010 62 mm Filter, 0.2 μm Fisher Scientific MTGR05010 For Media Vessel and Hosing
PTFE Acrodisc CR 13 mm filters, 0.2 μm Fisher Scientific NC9131037 For Media Vessel and Hosing
Direct-Reading Flowtube for Air Cole-Palmer EW-32047-77 For Nitrogen Gas Setup
Direct-Reading Flowtube for Nitrogen Cole-Palmer EW-32048-63 For Nitrogen Gas Setup
Gas Proportioner Multitube Frames Cole-Palmer EW-03218-50 For Nitrogen Gas Setup
Regulator, Two-Stage Analytical Airgas Y12-N145D580 For Nitrogen Gas Setup
Hose Adaptor, Stainless Steel Airgas Y99-26450 For Nitrogen Gas Setup
Hose Male Adaptor Airgas WES544 For Nitrogen Gas Setup
Norprene Tubing US Plastics 57280 For Nitrogen Gas Setup
Tripod Base Cole-Palmer EW-03218-58 For Nitrogen Gas Setup
Valve Cartridges Cole-Palmer EW-03217-92 For Nitrogen Gas Setup
Carboy 10 L Fisher Scientific 02-963-2A For Media Preperation
Steritop Sterile Vacuum Bottle-Top Filters, 1,000 ml, PES membrane; for 45 mm neck size Fisher Scientific SCGP-T10-RE For Media Preperation
Media Bottle 100 ml, 45 mm neck size Fisher Scientific FB-800-100 For Media Preperation
calcium chloride·2H2O Fisher Scientific C79-500 Media Reagents
sodium chloride Fisher Scientific BP358-1 Media Reagents
magnesium sulfate·7H2O Sigma Aldrich 230391 Media Reagents
potassium phosphate monobasic Fisher Scientific AC424205000 Media Reagents
ammonium sulfate Fisher Scientific AC423400010 Media Reagents
potassium chloride Sigma Aldrich P9541 Media Reagents
boric acid Sigma Aldrich B6768 Media Reagents
copper sulfate·5H2O Sigma Aldrich 209198 Media Reagents
potassium iodide Sigma Aldrich 60400 Media Reagents
ferric chloride·6H2O Fisher Scientific I88-100 Media Reagents
manganese sulfate·H2O Sigma Aldrich 230391 Media Reagents
sodium molybdate·2H2O Sigma Aldrich M7634 Media Reagents
zinc sulfate·7H2O Fisher Scientific Z68-500 Media Reagents
biotin Fisher Scientific BP232-1 Media Reagents
calcium pantothenate Fisher Scientific AC24330-1000 Media Reagents
folic acid Sigma Aldrich F7876 Media Reagents
inositol (aka myo-inositol) Fisher Scientific AC12226-1000 Media Reagents
niacin (aka nicotinic acid) Sigma Aldrich N4126 Media Reagents
p-aminobenzoic acid Fisher Scientific AC14621-2500 Media Reagents
pyridoxine HCl Sigma Aldrich P9755 Media Reagents
riboflavin Sigma Aldrich R4500-25G Media Reagents
thiamine HCl Fisher Scientific BP892-100 Media Reagents
Leucine Sigma Aldrich L8000-100G Media Reagents
Uracil Sigma Aldrich U0750 Media Reagents
Dextrose Fisher Scientific DF0155-08-5 Media Reagents

References

  1. Ingraham, J. L., Maaloe, O., Neidhardt, F. C. . Growth of the Bacterial Cell. , (1983).
  2. Hall, M. N., Raff, M. C., Thomas, G. . Cell Growth: Control of Cell Size. , (2004).
  3. Monod, J. La technique de culture continue, theorie et applications. Ann. Inst. Pasteur. 79, 390-410 (1950).
  4. Novick, A., Szilard, L. Description of the chemostat. Science. 112, 715-716 (1950).
  5. Kjeldgaard, N. O., Maaloe, O., Schaechter, M. The transition between different physiological states during balanced growth of Salmonella typhimurium. J. Gen. Microbiol. 19, 607-616 (1958).
  6. Maaloe, O., Kjeldgaard, N. O. Control of macromolecular synthesis. , (1966).
  7. Saldanha, A. J., Brauer, M. J., Botstein, D. Nutritional Homeostasis in Batch and Steady-State. Culture of Yeast. Mol. Biol. Cell. 15, 4089-4104 (2004).
  8. Boer, V. M., Crutchfield, C. A., Bradley, P. H., Botstein, D., Rabinowitz, J. D. Growth-limiting intracellular metabolites in yeast growing under diverse nutrient limitations. Mol. Biol. Cell. 21, 198-211 (2010).
  9. Boer, V. M., de Winde, J. H., Pronk, J. T., Piper, M. D. The genome-wide transcriptional responses of Saccharomyces cerevisiae grown on glucose in aerobic chemostat cultures limited for carbon, nitrogen, phosphorus, or sulfur. J. Biol. Chem. 278, 3265-3274 (2003).
  10. Brauer, M. J., et al. Coordination of growth rate, cell cycle, stress response, and metabolic activity in yeast. Mol. Biol. Cell. 19, 352-367 (2008).
  11. Gresham, D., et al. Adaptation to diverse nitrogen-limited environments by deletion or extrachromosomal element formation of the GAP1 locus. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 18551-18556 (2010).
  12. Regenberg, B., et al. Growth-rate regulated genes have profound impact on interpretation of transcriptome profiling in Saccharomyces cerevisiae. Genome Biol. 7, R107 (2006).
  13. Castrillo, J. I., et al. Growth control of the eukaryote cell: a systems biology study in yeast. J. Biol. 6, 4 (2007).
  14. Cipollina, C., et al. Revisiting the role of yeast Sfp1 in ribosome biogenesis and cell size control: a chemostat study. Microbiology. 154, 337-346 (2008).
  15. Gresham, D., et al. System-level analysis of genes and functions affecting survival during nutrient starvation in Saccharomyces cerevisiae. 유전학. 187, 299-317 (2011).
  16. Levy, S. F., Ziv, N., Siegal, M. L. Bet hedging in yeast by heterogeneous, age-correlated expression of a stress protectant. PLoS Biol. 10, e1001325 (2012).
  17. Kao, K. C., Sherlock, G. Molecular characterization of clonal interference during adaptive evolution in asexual populations of Saccharomyces cerevisiae. Nat. Genet. 40, 1499-1504 (2008).
  18. Gresham, D., et al. The repertoire and dynamics of evolutionary adaptations to controlled nutrient-limited environments in yeast. PLoS Genet. 4, e1000303 (2008).
  19. Wenger, J. W., et al. Hunger Artists: Yeast Adapted to Carbon Limitation Show Trade-Offs under Carbon Sufficiency. PLoS Genet. 7, e1002202 (2011).
  20. Dunham, M. J., et al. Characteristic genome rearrangements in experimental evolution of Saccharomyces cerevisiae. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 99, 16144-16149 (2002).
  21. Ronen, M., Botstein, D. Transcriptional response of steady-state yeast cultures to transient perturbations in carbon source. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 103, 389-394 (2006).
  22. Kresnowati, M. T. A. P., et al. When transcriptome meets metabolome: fast cellular responses of yeast to sudden relief of glucose limitation. Mol. Sys. Biol. 2, 49 (2006).
  23. Tu, B. P., Kudlicki, A., Rowicka, M., McKnight, S. L. Logic of the yeast metabolic cycle: temporal compartmentalization of cellular processes. Science. 310, 1152-1158 (2005).
  24. Tzur, A., Kafri, R., LeBleu, V. S., Lahav, G., Kirschner, M. W. Cell Growth and Size Homeostasis in Proliferating Animal Cells. Science. 325, 167-171 (2009).
  25. Conlon, I., Raff, M. Size control in animal development. Cell. 96, 235-244 (1999).
  26. Conlon, I. J., Dunn, G. A., Mudge, A. W., Raff, M. C. Extracellular control of cell size. Nat. Cell Biol. 3, 918-921 (2001).
  27. Fussmann, G. F., Ellner, S. P., Shertzer, K. W., Hairston, N. G. Crossing the hopf bifurcation in a live predator-prey system. Science. 290, 1358-1360 (2000).
  28. Cohen, E. P., Eagle, H. A simplified chemostat for the growth of mammalian cells: characteristics of cell growth in continuous culture. J. Exp. Med. 113, 467-474 (1961).
check_url/kr/50168?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Ziv, N., Brandt, N. J., Gresham, D. The Use of Chemostats in Microbial Systems Biology. J. Vis. Exp. (80), e50168, doi:10.3791/50168 (2013).

View Video