Summary

استخدام الكيموستات في الميكروبية بيولوجيا الأنظمة

Published: October 14, 2013
doi:

Summary

معدل نمو الخلايا هو عملية تنظيم والمحددات الأساسية لعلم وظائف الأعضاء الخلية. زراعة المستمر باستخدام الكيموستات يمكن السيطرة خارجي من معدل نمو الخلايا بالتقادم المغذيات تسهيل دراسة الشبكات الجزيئية التي تتحكم في نمو الخلايا وكيف تتطور هذه الشبكات لتحسين نمو الخلايا.

Abstract

خلايا تنظيم معدل نموها في استجابة لإشارات من العالم الخارجي. مع نمو الخلية والعمليات الخلوية المختلفة يجب أن تكون منسقة بما في ذلك تجميع الجزيئات، والتمثيل الغذائي، وفي نهاية المطاف، والالتزام دورة انقسام الخلية. وناظم كيميائي، وهي طريقة للسيطرة على تجريبيا معدل نمو الخلايا، ويوفر وسيلة قوية لدراسة منهجية كيفية تأثير معدل نمو العمليات الخلوية – بما في ذلك التعبير الجيني والتمثيل الغذائي – والشبكات التنظيمية التي تتحكم في معدل نمو الخلايا. عندما يحتفظ به لمئات من الأجيال الكيموستات يمكن استخدامها لدراسة تطور التكيف من الميكروبات في الظروف البيئية التي تحد من نمو الخلايا. وصفنا مبدأ ناظم كيميائي الثقافات، وإظهار عملها وتقديم أمثلة من التطبيقات المختلفة. بعد فترة من الاهمال بعد بدء العمل بها في منتصف القرن العشرين، تلاقي المنهجيات الجينوم على نطاق ومع تجدد فيterest في تنظيم نمو الخلايا والأساس الجزيئي للتطور التكيف هو تحفيز نهضة في استخدام الكيموستات في الأبحاث البيولوجية.

Introduction

وينظم نمو الخلايا من خلال شبكات معقدة من التفاعل عوامل وراثية وبيئية 1،2. تنظيم سياقاتها من نمو الخلايا يتطلب نهجا على مستوى النظام لدراستها. ومع ذلك، يتم الطعن في دراسة دقيقة من نمو الخلايا ينظمها صعوبة السيطرة تجريبيا المعدل الذي تنمو الخلايا. علاوة على ذلك، حتى في أبسط التجارب الظروف خارج الخلية هي في كثير من الأحيان ديناميكية ومعقدة كخلايا تغيير بيئتهم بشكل مستمر لأنها تتكاثر. يتم توفير حل لهذه المشاكل من قبل ناظم كيميائي: وسيلة لزرع الخلايا التي يمكن السيطرة التجريبية من معدلات نمو الخلايا في بيئات محددة، ثابتة والسيطرة عليها.

طريقة زراعة المستمر باستخدام ناظم كيميائي وصفت بشكل مستقل من قبل مونود 3 و 4 نوفيك وزيلارد في عام 1950. كما تصور في الأصل، وتزرع الخلايا في حجم ثابت من وسائل الإعلام وهذا هو يخدعالمخفف tinually بإضافة وسائل الإعلام الجديدة وإزالة في وقت واحد من وسائل الإعلام القديمة والخلايا (الشكل 1). إلى جانب المعادلات التفاضلية العادية (الشكل 2) وصف معدل التغير في كثافة الخلية (س) وتركيز المغذيات منظم النمو (ق) في السفينة ناظم كيميائي. الأهم من ذلك، هذا النظام من المعادلات تتنبأ واحد (صفرية) مستقرة ثابتة للدولة (الشكل 3) مع ضمنا ملحوظا أنه في الحالة المستقرة، ومعدل نمو محدد من الخلايا (أي ثابت معدل النمو الأسي) يساوي معدل الذي يتم تخفيفه ثقافة (D). من خلال تغيير معدل التخفيف من الممكن لإقامة السكان المطرد للدولة من الخلايا في معدلات نمو مختلفة وتحت ظروف مختلفة من قيود المغذيات.

كانت السيطرة التجريبية من معدل النمو باستخدام الكيموستات حاسمة لتطوير فهم كيف يمكن للتغييرات فسيولوجية الخليةمع معدلات النمو 5،6. ومع ذلك، أصبح هذا دعامة السابق الأساليب الميكروبيولوجية غامضة بشكل متزايد خلال انفجار في البحوث البيولوجيا الجزيئية في أواخر القرن العشرين. اليوم، تجدد الاهتمام في السيطرة النمو في كل من الميكروبات والكائنات الحية متعددة الخلايا وظهور أساليب الجينوم على نطاق وللتحليل على مستوى النظم جددت الدافع لاستخدام الكيموستات. هنا، نحن تصف ثلاثة التطبيقات التي تستفيد من مراقبة دقيقة لمعدلات نمو الخلية والبيئة الخارجية التي من الممكن فريد باستخدام الكيموستات. أولا، نحن تصف استخدام الكيموستات إلى التحقيق في كيفية وفرة الآلاف من الجزيئات الحيوية – وينظم coordinately مع معدل النمو – مثل النصوص ونواتج الأيض. الثاني، نحن تصف كيف يمكن استخدام الكيموستات للحصول على تقديرات دقيقة للاختلافات معدل النمو بين الأنماط الجينية المختلفة في بيئات محدودة المغذيات باستخدام التجارب المنافسة. الثالث، ونحن تصف كيفية الكيموستات يمكنأن تستخدم لدراسة التطور على التكيف من خلايا تنمو في بيئات فقيرة بالمغذيات ثابتة. هذه الأمثلة أمثلة الطرق التي الكيموستات يتم تمكين التحقيقات على مستوى نظم تنظيم نمو الخلايا، الجين عن طريق تفاعلات البيئة والتطور على التكيف.

Protocol

لا يمكن أن تتحقق مبدأ زراعة المستمر باستخدام ناظم كيميائي في مجموعة متنوعة من التطبيقات. في جميع الكيموستات فمن الضروري أن يكون 1) وسائل للحفاظ على عقم جميع المكونات، 2) ثقافة مختلطة جيدا، 3) التهوية المناسبة للسفينة الثقافة و 4) وسيلة يمكن الاعتماد عليها من وسائل الإعل…

Representative Results

والميزة الرئيسية لالكيموستات هو القدرة على التحكم في معدل نمو الخلايا تجريبيا من خلال تغيير معدل التخفيف. في الخميرة في مهدها، خميرة الخباز، مورفولوجية الخلية بالمعلومات من مرحلته في دورة انقسام الخلية. السكان مع ارتفاع معدلات النمو تحتوي على نسبة أعلى من تقسيم الخ…

Discussion

الكيموستات تمكين زراعة الميكروبات في ظروف الحالة المستقرة التي تسيطر عليها النمو. الخلايا تنمو بشكل مستمر بمعدل ثابت مما يؤدي إلى بيئة خارجية ثابتة. هذا هو على النقيض من الأساليب ثقافة دفعة في البيئة الخارجية التي تتغير باستمرار ويتم تحديد معدل نمو الخلايا من خلال ا…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل عن طريق بدء الأموال من جامعة نيويورك. نشكر مايتريا دنهام ومات براور الذي طور في البداية استخدام المفاعلات الحيوية Sixfors كما الكيموستات.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Infors-HT Sixfors Chemostat Appropriate Technical Resources, Inc.    
Glass Bottle 9.5 L Fisher Scientific 02-887-1 For Media Vessel and Hosing
Pinchcock Fisher Scientific 05-867 For Media Vessel and Hosing
Stopper, Size 12, Green Neoprene Cole-Palmer EW-62991-42 For Media Vessel and Hosing
Straight Connector Cole-Palmer EW-30703-02 For Media Vessel and Hosing
General purpose ties 4 in Fisher Scientific NC9557052 For Media Vessel and Hosing
Tubing, Silicone Rubber Small Parts B000FMWTDE For Media Vessel and Hosing
Tubing, Silicone, 3/8 in OD Fisher Scientific 02-587-1Q For Media Vessel and Hosing
Tubing, Silicone, 7/32 in OD Fisher Scientific 02-587-1E For Media Vessel and Hosing
Tubing, Stainless Steel, 3/16 in OD McMaster-Carr 6100K164 For Media Vessel and Hosing
Tubing, Stainless Steel, 3/8 in OD McMaster-Carr 6100K161 For Media Vessel and Hosing
Hook Connectors Fisher Scientific 14-66-18Q For Media Vessel and Hosing
Ratchet Clamp Cole-Palmer EW-06403-11 For Media Vessel and Hosing
Luer, Female Cole-Palmer EW-45512-34 For Media Vessel and Hosing
Luer, Male Cole-Palmer EW-45513-04 For Media Vessel and Hosing
Millipore Aervent MTGR05010 62 mm Filter, 0.2 μm Fisher Scientific MTGR05010 For Media Vessel and Hosing
PTFE Acrodisc CR 13 mm filters, 0.2 μm Fisher Scientific NC9131037 For Media Vessel and Hosing
Direct-Reading Flowtube for Air Cole-Palmer EW-32047-77 For Nitrogen Gas Setup
Direct-Reading Flowtube for Nitrogen Cole-Palmer EW-32048-63 For Nitrogen Gas Setup
Gas Proportioner Multitube Frames Cole-Palmer EW-03218-50 For Nitrogen Gas Setup
Regulator, Two-Stage Analytical Airgas Y12-N145D580 For Nitrogen Gas Setup
Hose Adaptor, Stainless Steel Airgas Y99-26450 For Nitrogen Gas Setup
Hose Male Adaptor Airgas WES544 For Nitrogen Gas Setup
Norprene Tubing US Plastics 57280 For Nitrogen Gas Setup
Tripod Base Cole-Palmer EW-03218-58 For Nitrogen Gas Setup
Valve Cartridges Cole-Palmer EW-03217-92 For Nitrogen Gas Setup
Carboy 10 L Fisher Scientific 02-963-2A For Media Preperation
Steritop Sterile Vacuum Bottle-Top Filters, 1,000 ml, PES membrane; for 45 mm neck size Fisher Scientific SCGP-T10-RE For Media Preperation
Media Bottle 100 ml, 45 mm neck size Fisher Scientific FB-800-100 For Media Preperation
calcium chloride·2H2O Fisher Scientific C79-500 Media Reagents
sodium chloride Fisher Scientific BP358-1 Media Reagents
magnesium sulfate·7H2O Sigma Aldrich 230391 Media Reagents
potassium phosphate monobasic Fisher Scientific AC424205000 Media Reagents
ammonium sulfate Fisher Scientific AC423400010 Media Reagents
potassium chloride Sigma Aldrich P9541 Media Reagents
boric acid Sigma Aldrich B6768 Media Reagents
copper sulfate·5H2O Sigma Aldrich 209198 Media Reagents
potassium iodide Sigma Aldrich 60400 Media Reagents
ferric chloride·6H2O Fisher Scientific I88-100 Media Reagents
manganese sulfate·H2O Sigma Aldrich 230391 Media Reagents
sodium molybdate·2H2O Sigma Aldrich M7634 Media Reagents
zinc sulfate·7H2O Fisher Scientific Z68-500 Media Reagents
biotin Fisher Scientific BP232-1 Media Reagents
calcium pantothenate Fisher Scientific AC24330-1000 Media Reagents
folic acid Sigma Aldrich F7876 Media Reagents
inositol (aka myo-inositol) Fisher Scientific AC12226-1000 Media Reagents
niacin (aka nicotinic acid) Sigma Aldrich N4126 Media Reagents
p-aminobenzoic acid Fisher Scientific AC14621-2500 Media Reagents
pyridoxine HCl Sigma Aldrich P9755 Media Reagents
riboflavin Sigma Aldrich R4500-25G Media Reagents
thiamine HCl Fisher Scientific BP892-100 Media Reagents
Leucine Sigma Aldrich L8000-100G Media Reagents
Uracil Sigma Aldrich U0750 Media Reagents
Dextrose Fisher Scientific DF0155-08-5 Media Reagents

References

  1. Ingraham, J. L., Maaloe, O., Neidhardt, F. C. . Growth of the Bacterial Cell. , (1983).
  2. Hall, M. N., Raff, M. C., Thomas, G. . Cell Growth: Control of Cell Size. , (2004).
  3. Monod, J. La technique de culture continue, theorie et applications. Ann. Inst. Pasteur. 79, 390-410 (1950).
  4. Novick, A., Szilard, L. Description of the chemostat. Science. 112, 715-716 (1950).
  5. Kjeldgaard, N. O., Maaloe, O., Schaechter, M. The transition between different physiological states during balanced growth of Salmonella typhimurium. J. Gen. Microbiol. 19, 607-616 (1958).
  6. Maaloe, O., Kjeldgaard, N. O. Control of macromolecular synthesis. , (1966).
  7. Saldanha, A. J., Brauer, M. J., Botstein, D. Nutritional Homeostasis in Batch and Steady-State. Culture of Yeast. Mol. Biol. Cell. 15, 4089-4104 (2004).
  8. Boer, V. M., Crutchfield, C. A., Bradley, P. H., Botstein, D., Rabinowitz, J. D. Growth-limiting intracellular metabolites in yeast growing under diverse nutrient limitations. Mol. Biol. Cell. 21, 198-211 (2010).
  9. Boer, V. M., de Winde, J. H., Pronk, J. T., Piper, M. D. The genome-wide transcriptional responses of Saccharomyces cerevisiae grown on glucose in aerobic chemostat cultures limited for carbon, nitrogen, phosphorus, or sulfur. J. Biol. Chem. 278, 3265-3274 (2003).
  10. Brauer, M. J., et al. Coordination of growth rate, cell cycle, stress response, and metabolic activity in yeast. Mol. Biol. Cell. 19, 352-367 (2008).
  11. Gresham, D., et al. Adaptation to diverse nitrogen-limited environments by deletion or extrachromosomal element formation of the GAP1 locus. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 18551-18556 (2010).
  12. Regenberg, B., et al. Growth-rate regulated genes have profound impact on interpretation of transcriptome profiling in Saccharomyces cerevisiae. Genome Biol. 7, R107 (2006).
  13. Castrillo, J. I., et al. Growth control of the eukaryote cell: a systems biology study in yeast. J. Biol. 6, 4 (2007).
  14. Cipollina, C., et al. Revisiting the role of yeast Sfp1 in ribosome biogenesis and cell size control: a chemostat study. Microbiology. 154, 337-346 (2008).
  15. Gresham, D., et al. System-level analysis of genes and functions affecting survival during nutrient starvation in Saccharomyces cerevisiae. 유전학. 187, 299-317 (2011).
  16. Levy, S. F., Ziv, N., Siegal, M. L. Bet hedging in yeast by heterogeneous, age-correlated expression of a stress protectant. PLoS Biol. 10, e1001325 (2012).
  17. Kao, K. C., Sherlock, G. Molecular characterization of clonal interference during adaptive evolution in asexual populations of Saccharomyces cerevisiae. Nat. Genet. 40, 1499-1504 (2008).
  18. Gresham, D., et al. The repertoire and dynamics of evolutionary adaptations to controlled nutrient-limited environments in yeast. PLoS Genet. 4, e1000303 (2008).
  19. Wenger, J. W., et al. Hunger Artists: Yeast Adapted to Carbon Limitation Show Trade-Offs under Carbon Sufficiency. PLoS Genet. 7, e1002202 (2011).
  20. Dunham, M. J., et al. Characteristic genome rearrangements in experimental evolution of Saccharomyces cerevisiae. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 99, 16144-16149 (2002).
  21. Ronen, M., Botstein, D. Transcriptional response of steady-state yeast cultures to transient perturbations in carbon source. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 103, 389-394 (2006).
  22. Kresnowati, M. T. A. P., et al. When transcriptome meets metabolome: fast cellular responses of yeast to sudden relief of glucose limitation. Mol. Sys. Biol. 2, 49 (2006).
  23. Tu, B. P., Kudlicki, A., Rowicka, M., McKnight, S. L. Logic of the yeast metabolic cycle: temporal compartmentalization of cellular processes. Science. 310, 1152-1158 (2005).
  24. Tzur, A., Kafri, R., LeBleu, V. S., Lahav, G., Kirschner, M. W. Cell Growth and Size Homeostasis in Proliferating Animal Cells. Science. 325, 167-171 (2009).
  25. Conlon, I., Raff, M. Size control in animal development. Cell. 96, 235-244 (1999).
  26. Conlon, I. J., Dunn, G. A., Mudge, A. W., Raff, M. C. Extracellular control of cell size. Nat. Cell Biol. 3, 918-921 (2001).
  27. Fussmann, G. F., Ellner, S. P., Shertzer, K. W., Hairston, N. G. Crossing the hopf bifurcation in a live predator-prey system. Science. 290, 1358-1360 (2000).
  28. Cohen, E. P., Eagle, H. A simplified chemostat for the growth of mammalian cells: characteristics of cell growth in continuous culture. J. Exp. Med. 113, 467-474 (1961).
check_url/kr/50168?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Ziv, N., Brandt, N. J., Gresham, D. The Use of Chemostats in Microbial Systems Biology. J. Vis. Exp. (80), e50168, doi:10.3791/50168 (2013).

View Video