Summary

Doku Esansı Yüksek Çözünürlük Nükleer Manyetik Rezonans Spektroskopisi ile Sıçan Beyin metabolomic Analizi

Published: September 21, 2014
doi:

Summary

The neurochemistry of mammalian brain is changed in many neurological and systemic diseases. Characteristic profiles of cerebral metabolites can be efficiently obtained based on crude extracts of brain tissue. To this end, high-resolution NMR spectroscopy is employed, enabling detailed quantitative analysis of metabolite concentrations (metabolomics).

Abstract

Studies of gene expression on the RNA and protein levels have long been used to explore biological processes underlying disease. More recently, genomics and proteomics have been complemented by comprehensive quantitative analysis of the metabolite pool present in biological systems. This strategy, termed metabolomics, strives to provide a global characterization of the small-molecule complement involved in metabolism. While the genome and the proteome define the tasks cells can perform, the metabolome is part of the actual phenotype. Among the methods currently used in metabolomics, spectroscopic techniques are of special interest because they allow one to simultaneously analyze a large number of metabolites without prior selection for specific biochemical pathways, thus enabling a broad unbiased approach. Here, an optimized experimental protocol for metabolomic analysis by high-resolution NMR spectroscopy is presented, which is the method of choice for efficient quantification of tissue metabolites. Important strengths of this method are (i) the use of crude extracts, without the need to purify the sample and/or separate metabolites; (ii) the intrinsically quantitative nature of NMR, permitting quantitation of all metabolites represented by an NMR spectrum with one reference compound only; and (iii) the nondestructive nature of NMR enabling repeated use of the same sample for multiple measurements. The dynamic range of metabolite concentrations that can be covered is considerable due to the linear response of NMR signals, although metabolites occurring at extremely low concentrations may be difficult to detect. For the least abundant compounds, the highly sensitive mass spectrometry method may be advantageous although this technique requires more intricate sample preparation and quantification procedures than NMR spectroscopy. We present here an NMR protocol adjusted to rat brain analysis; however, the same protocol can be applied to other tissues with minor modifications.

Introduction

Murin modeller beyin araştırması 1 yaygın olarak kullanılmıştır. Genotip-fenotip, diğer korelasyon 2-6 üzerinde, bir yandan, RNA ve / veya protein seviyelerde gen ifadesinin inceleyerek fare ve sıçan beyinleri incelenmiş ve morfolojik fonksiyonel elektrofizyolojik ve / veya davranış fenotipleri edilmiştir. Ancak, tamamen genotipi ile fenotipi bağlayan mekanizmalarını anlamak için, o aşağı protein ifadesi, yani moleküler olayları araştırmak için zorunludur. enzimler 7 hareket bunun üzerine biyokimyasal substratların metabolizması. Bu gereklilik biyoloji 8,9 birçok dalında metabolik araştırma rönesans için, son 10 ila 15 yıl içinde, yol açtı. Klasik metabolik çalışmalar genellikle belirli yolların ayrıntıları odaklanmış olsa da, yeni metabolomic yaklaşım göz altında dokusunun küresel metabolik profilinin her şeyi kapsayan bir soruşturma yönelikse.Bu kavram bir sonucu özel metabolik yolları ve / veya bileşiklerin sınıflarına karşı verevi en aza indirmek analitik araçlar için açık bir ihtiyaç vardır. Bununla birlikte, klasik biyokimyasal analizi deneyi gerçekleştirilir önce belirtilmesi gereken belirli bir analit bir kimyasal reaksiyona dayanır. Bunun aksine, nükleer manyetik rezonans (NMR) spektroskopi ve kütle spektrometrisi (MS) (i) spektroskopik teknikler biyokimyasal bileşiklerin, özellikle molekül (fiziksel) özelliklerine dayanır her biri bir spektrum içinde bir ya da birden fazla farklı sinyal yol açar bir deney sırasında tespit edilmiştir; ve (ii), deney başına farklı bileşiklerin çok sayıda tespit eder.

Böylece, her bir spektrum metabolitlerin bir dizi kombine bilgileri içerir. Önceden seçme analitin doğası ile ilgili 8 ölçülecek yapılması gereken Bu nedenle, spektroskopik yöntemler, metabolitler için uygun araçlardır </sus>. Bunlar büyük ölçüde beklenmedik metabolik değişimlerin saptanmasını kolaylaştırmak için bir sonucu olarak, bu teknikler, doğal keşif çalışmaları kendilerini katmaktadır.

NMR ve MS spektroskopi birçok metabolitlerin analizi için birbirlerinin yerine kullanılabilir, ancak her iki yöntemle de avantaj ve yakın zamanda gözden geçirilmiştir 10 dezavantajları da vardır. Kısaca, NMR spektroskopi, genellikle kaba özütündeki gerçekleştirilebilir ve analizden önce örnek bileşiklerin kromatografik ayırmaya gerek yoktur. Buna göre, MS gibi kütle spektrometresi görüntüleme gibi belirli son gelişmelerin dışında, gaz veya sıvı kromatografisi (GC veya LC) ayrılması ile çalışır. Farklı şekerlerin rezonans hatları (1H) NMR spektrası, proton aktif rol oynamaktadır, çünkü bu tür şekerlerin analizi bir kaç özel durumda, LC ayırma, hem de NMR spektroskopi için bir zorunluluk olabilir. CHR olmadan Bununla birlikte, 1H-NMR spektroskopisiomatographic ayırma en popüler, neredeyse evrensel uygulamalı metabolomic NMR yöntemi kalır. Genel olarak, bu numune hazırlama NMR spektroskopisi için olduğu gibi, MS daha zaman alıcı ve karmaşıktır. Matriks etkileri nedeniyle ciddi sorunlar çok onlar oldukça zayıflatılmış sinyallerine neden olabilir nerede MS daha NMR spektroskopisi az yaygındır. Metabolit niceleme Her iki yöntem ile elde edilebilir. Bununla birlikte, çoklu standart bileşiklerin, metabolitleri arasında matriks etkileri ve iyonizasyon verimliliği varyasyonlara MS için gereklidir. Buna karşılık, numune başına sadece bir standart için uygun ölçüm koşulları altında, bir NMR spektroskopisi ile analiz için gerekli olan, ikinci yöntem ise esas olarak gözlenen çekirdekleri tarafından kesinlikle lineer tepki NMR nicel sayesinde. NMR önemli bir dezavantajı nispeten düşük hassasiyettir. MS, özellikle LC-MS, büyüklük birkaç emir tarafından NMR daha duyarlıdır; Bu nedenle, MS için NMR fazla tercih edilmelidirçok düşük konsantrasyonlarda meydana gelen bileşiklerin analizi. Öte yandan, bir NMR deneyinde bozulmayan doğası MS üzerinde açık bir avantaj olan; Bu şekilde, örneğin 1 H-NMR, fosfor-31 (31 p), karbon-13 (13 ° C), farklı NMR aktif çekirdekleri için, örneğin, aynı numune üzerinde tekrar tekrar yapılabilir flor-19 (19 C) vb., MS ölçümleri karşı önemli bir NMR ile tüketilir gibi.

NMR ve MS hem farklı modlarda kullanılabilir, her biri özel bir kimyasal özelliklere sahip bileşiklerin tespit edilmesi için uygun olan. Hemen hemen tüm fosforlu metabolitleri de protonlar ihtiva eden, ancak, örneğin, 31P NMR, genellikle orta konsantre fosforlu bileşiklerin analizi için 1H NMR göre daha uygundur. Ancak, 1H NMR sinyalleri ise ikinci, diğer fosforilatlanmamış bileşiklerinden 1H NMR sinyallerinin tarafından gizlenmiş edilebilirAçıkçası 31P NMR spektrumlarda arka plan sinyallerini neden olmaz. 13C NMR özel durum neredeyse sadece ilgi ise analog durumda, 19 NMR analizi, florlanmış bileşikler, örneğin, florinlenmiş ilaçlar (endojen metabolit herhangi bir arka plan sinyalleri) için tercih edilecek ise 13 C kaderi Eksojen etiketli metabolik ön yüzünden 13 C izotopu (yaklaşık% 1), son derece düşük bir doğal bolluğu, takip edilmelidir. Birçok kütle spektrometreleri da negatif iyon modunda ya pozitif iyon modunda ya da çalışır. Bu nedenle önümüzdeki iyonlar negatif veya pozitif yüklü hale gelen dikkat edilmesi olup analiz bilmek önemlidir. Bu yöntem örnek hazırlama a için gerekli (I) 'in zaman açısından düşük maliyetle önemli metabolit konsantrasyonları çok sayıda verir çünkü 1H ve31P NMR spektroskopi ile beyin dokusu metabolome analizi için bir protokol burada odaknd, (ii) bir çaba metabolit miktarının belirlenmesi için gerekli. Bütün deneyler, standart bir ıslak-kimya laboratuvar ekipman ve yüksek resolüsyon NMR spektroskopisi odası kullanılarak da gerçekleştirilebilir. Bundan başka değişiklikler aşağıdaki protokol kısmında açıklanmaktadır.

Protocol

NOT: HAYVAN ETİK BEYANI Sıçanlarda Hayvan çalışmaları Fransa'da geçerli yönergeleri takip ve Yerel Etik Kurulu (# 40.04, Aix-Marseille Üniversitesi Tıp Fakültesi, Marsilya, Fransa) tarafından onaylanmıştır. 1. Hasat ve Rat Beyin Donma Gerekli öğeleri hazırlayın: Sıvı azot (N 2liq.) Dewar bir dondurma kelepçe (en azından 2-3 L hacim) tutmak için yeterince büyük olduğunu; anestetik (örneğin, izofluran, ya da, ketamin / ksi…

Representative Results

Özü çözümler mevcut: beyin ve diğer doku özleri metabolik NMR spektrumları iyi çözünürlük elde etmek için, uzun kaldırmak veya (paramanyetik iyonlar en önemlisi) maske metal iyonları yaygın bir uygulama olmuştur. Bu, ya da Chelex-100 20 gibi bir iyon alışveriş reçinesi ile özü geçirilerek, ekstre 19, EDTA veya CDTA gibi bir kenetleme maddesinin ilave edilmesi yoluyla elde edilmiştir. Şekil 1'de sunulan sonuçlar, beyin ekstreleri dikkatli bir şekild…

Discussion

NMR spektroskopisi, bir çok yeniden üretilebilir ve doğru bir şekilde çözelti içinde kimyasal bileşiklerin konsantrasyonlarının ölçülmesi için etkili bir yöntemdir. Ancak, yüksek kalitede veri elde etmek için bu örnek hazırlama ve analizleri konusunda belirli kurallara uymak gereklidir. Gözlemlenen bir sinyalin yoğunluğu algılama eşiğini (özellikle zayıf sinyal) yaklaşımları edilmiştir, NMR spektroskopi ile metabolit konsantrasyonlarının belirlenmesinde, üretim ya NMR sinyalinin alım d…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Support by Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS, UMR 6612 and 7339) is gratefully acknowledged.

Materials

Isoflurane Virbac Vetflurane Anesthetic for animals
Isoflurane vaporizer Ohmeda Isotec 3 Newer model available: Isotec 4
Scalpel, scissors, forceps, clamps Harvard Apparatus
Fisher Scientific
various
various
Surgical equipment for animals
Freeze-clamp tool homebuilt n/a Tong with aluminium plates, to be inserted
in liquid nitrogen for cooling
Dewar Nalgene 4150-4000
Liquid nitrogen Air Liquide n/a
Nitrogen gas Air Liquide n/a
Nitrogen evaporator Organomation Associates N-EVAP 111 Can be replaced by homebuilt device
Mortar Sigma-Aldrich Z247472
Pestle Sigma-Aldrich Z247510
Tissue homogenizer Kinematica Polytron With test tubes fitting homogenizer shaft
Electronic scale Sartorius n/a
Methanol Sigma-Aldrich M3641
Chloroform Sigma-Aldrich 366910
Glass centrifuge tubes Kimble 45500-15, 45500-30 Kimax 15-mL, 30-mL tube
Microcentrifuge tubes Kimble 45150-2 Kimax 2-mL tube; should replace "Eppen-dorf" tube if compatible with centrifuge rotor
polystyrene pipettes Costar Corning Stripettes 5 and 10-mL volumes
Deuterochloroform Sigma-Aldrich 431915 99.96 % deuterated
Deuterium oxide Sigma-Aldrich 423459 99.96 % deuterated
Deuterium chloride Alpha Aesar 42406 20 % in deuterium oxide
Sodium deuteroxide Sigma-Aldrich 164488 30 % in deuterium oxide
Lyophilizer Christ Alpha 1-2
Cold centrifuge Heraeus Megafuge 16R
pH meter Eutech Cybernetics Cyberscan
CDTA Sigma-Aldrich D0922
Cesium hydroxide Sigma-Aldrich 516988
NMR tubes Wilmad 528-PP
NMR stem coaxial insert Sigma-Aldrich Z278513 By Wilmad
NMR pipettes Sigma-Aldrich Z255688
Pipettes Eppendorf 연구 With tips for volumes from 0.5 to 1000 μL
Pipet-Aid Drummond XP
NMR spectrometer Bruker AVANCE 400 including probe and other accessories
NMR software Bruker TopSpin 1.3 newer version available: Topspin 3.2
Water-soluble standard compounds Sigma-Aldrich various
Phospholipid standard compounds Avanti Polar Lipids
Doosan Serdary
Sigma-Aldrich
various
various
various
 
Source for plasmalogens, but may be
< 70 – 80 % purity
Methylenediphosphonate Sigma-Aldrich M9508
TSP-d4 Sigma-Aldrich 269913

References

  1. Manger, P. R., et al. Is 21st century neuroscience too focused on the rat/mouse model of brain function and dysfunction. Front Neuroanat. 2, 5 (2008).
  2. Buxbaum, J. D., et al. Optimizing the phenotyping of rodent ASD models enrichment analysis of mouse and human neurobiological phenotypes associated with high-risk autism genes identifies morphological, electrophysiological, neurological, and behavioral features. Mol Autism. 3, 1 (2012).
  3. Papaioannou, V., Behringer, R. R. . Mouse Phenotypes A Handbook of Mutation Analysis. , (2004).
  4. Yu, F. H., et al. Reduced sodium current in GABAergic interneurons in a mouse model of severe myoclonic epilepsy in infancy. Nat Neurosci. 9, 1142-1149 (2006).
  5. Mallolas, J., et al. A polymorphism in the EAAT2 promoter is associated with higher glutamate concentrations and higher frequency of progressing stroke. The Journal of Experimental Medicine. 203, 711-717 (2006).
  6. Crusio, W. E., Sluyter, F., Gerlai, R. T., Pietropaolo, S. . Behavioral Genetics of the Mouse Genetics of Behavioral Phenotypes. Vol. 1, (2013).
  7. Viola, A., Saywell, V., Villard, L., Cozzone, P. J., Lutz, N. W. Metabolic fingerprints of altered brain growth, osmoregulation and neurotransmission in a Rett syndrome model. PLoS ONE. 2, e157 (2007).
  8. Lutz, N. W., Sweedler, J. V., Wevers, R. A. . Methodologies for Metabolomics. , (2013).
  9. Rabinowitz, J. D., Purdy, J. G., Vastag, L., Shenk, T., Koyuncu, E. Metabolomics in drug target discovery. Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 76, 235-246 (2011).
  10. Wishart, D. S., Wevers, R. A., Lutz, N. W., Sweedler, J. V., et al. . Methodologies for Metabolomics. , (2013).
  11. Ponten, U., Ratcheson, R. A., Salford, L. G., Siesjo, B. K. Optimal freezing conditions for cerebral metabolites in rats. Journal of Neurochemistry. 21, 1127-1138 (1973).
  12. Henry, P. G., Oz, G., Provencher, S., Gruetter, R. Toward dynamic isotopomer analysis in the rat brain in vivo automatic quantitation of 13C NMR spectra using LCModel. NMR Biomed. 16, 400-412 (2003).
  13. Lutz, N. W., Cozzone, P. J. Multiparametric optimization of (31)P NMR spectroscopic analysis of phospholipids in crude tissue extracts 2 Line width and spectral resolution. Anal Chem. 82, 5441-5446 (2010).
  14. Lutz, N. W., Cozzone, P. J. Multiparametric optimization of (31)P NMR spectroscopic analysis of phospholipids in crude tissue extracts. 1. Chemical shift and signal separation. Anal Chem. 82, 5433-5440 (2010).
  15. Lutz, N. W., Cozzone, P. J., Lutz, N. W., Sweedler, J. V., Wevers, R. A. . Methodologies for Metabolomics. , (2013).
  16. Lutz, N. W., Fernandez, C., Pellissier, J. F., Cozzone, P. J., Beraud, E. Cerebral biochemical pathways in experimental autoimmune encephalomyelitis and adjuvant arthritis a comparative metabolomic study. PLoS ONE. 8, e56101 (2013).
  17. Lutz, N. W., Cozzone, P. J. Principles of multiparametric optimization for phospholipidomics by 31P NMR spectroscopy. Biophys Rev. 5, 295-304 (2013).
  18. Pearson, G. A. . Shimming an NMR magnet. , (1991).
  19. Lane, A. N., Fan, T. W. M., Higashi, R. M., Correia, J. J., Detrich, H. W. . Biophysical tools for biologists. Vol. 1, In vitro techniques, (2008).
  20. Peeling, J., Wong, D., Sutherland, G. R. Nuclear magnetic resonance study of regional metabolism after forebrain ischemia in rats. Stroke. 20, 633-640 (1989).
check_url/kr/51829?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lutz, N. W., Béraud, E., Cozzone, P. J. Metabolomic Analysis of Rat Brain by High Resolution Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy of Tissue Extracts. J. Vis. Exp. (91), e51829, doi:10.3791/51829 (2014).

View Video