Summary

Поверхностный потенциал Измерение бактерий с помощью зонда Кельвина силовой микроскопии

Published: November 28, 2014
doi:

Summary

Here, we present a protocol explaining the use of Kelvin probe force microscopy as a tool for generating high resolution nano-scale surface potential maps. This tool was applied to assess the role of surface potential on the binding capacity of microorganisms to substrate surfaces.

Abstract

Потенциал поверхности часто забывают физическая характеристика, которая играет доминирующую роль в адгезии микроорганизмов к поверхности подложек. Зонда Кельвина-силовая микроскопия (KPFM) является модуль атомно-силовой микроскопии (АСМ), который измеряет контактной разности потенциалов между поверхностями на нано-масштабе. Сочетание KPFM с АСМ позволяет одновременной генерации поверхностного потенциала и топографических карт биологических образцов, таких как бактериальные клетки. Здесь мы используем KPFM для изучения влияния поверхностного потенциала на микробной адгезии к медицинским соответствующих поверхностей, таких как нержавеющая сталь и золото. Поверхностного потенциала карты выявлены различия в потенциале поверхности микробных мембран на различных материальных субстратов. Шаг высота график, был создан, чтобы показать различие в поверхностного потенциала в граничной области между поверхностью подложки и микроорганизмов. Изменения в клеточной мембране поверхностного потенциала были связаны с изменениемс в клеточного метаболизма и подвижности. Таким образом, KPFM представляет собой мощный инструмент, который может быть использован для изучения изменений микробной мембраны поверхностного потенциала от адгезией к различным поверхностям подложек. В этом исследовании мы демонстрируем процедуру, чтобы охарактеризовать потенциал поверхности отдельных метициллин-устойчивый золотистый стафилококк USA100 клеток нержавеющей стали и золота с использованием KPFM.

Introduction

Биопленки изготовленные на поверхностях оборудования и в кожных ран представляют проблему для медицинской промышленности, как биопленки непокорных снятию и может привести к увеличению темпов передачи заболевания и антимикробной резистентности. Привязанность является первым шагом в формировании биопленки и самый важный шаг из-за его обратимости 1-3. Поверхности подложки характеристики играют решающую роль в микробной привязанности. Такие факторы, как твердость поверхности, пористости, шероховатости и гидрофобности, как было показано, чтобы осуществить крепление микроорганизмов; Однако, мало исследований изучение роли поверхности подложки потенциала (ИП) на микробной адгезии было сделано 4,5. Отрицательно заряженные поверхности предотвратить прикрепление Bacillus Thuringiensis спор слюды, кремния и золота 6. Изменения в клеточном мембранного потенциала свидетельствуют об изменениях в клеточном привязанности и подвижности 5,7. Было отмечено, что электрически Хомogeneous поверхности с большей готовностью содействовать микробной адгезии 5. Определение характеристик поверхностного потенциала бактерий на наноуровне может обеспечить новый способ понять адгезии кинетику бактерий к различным поверхностям, и, таким образом, может помочь в разработке анти-обрастания стратегии. В отличие от других методов, используемых для характеристики электро кинетики бактерий, таких как электрофореза рассеяния света, дзета-потенциала и определение изоэлектрической точки, зонда Кельвина-силовая микроскопия (KPFM) позволяет для рассмотрения отдельных клеток, а не целых культур 8-11. Это выгодно, когда требуется сравнить клетка-клетка или биопленки электрические характеристики с высокой точностью и точностью.

KPFM является модуль атомно-силовой микроскопии (АСМ). АСМ был разработан как прямой результат сканирующего туннельного микроскопа (СТМ) 12. Первые опубликованные изображения, используя СТМ было сделано Герд Биннигом и Генрих Rorhrer в 1982 году 12 </suP>. Их изобретение было в состоянии решить атомные структуры на растра сканирования резкое проводящего зонда над проводящей поверхностью в воздухе. Последствия достижения изображения с высоким разрешением, возбуждаемые биологов, которые быстро попытались использовать СТМ изображения сухих образцах ДНК, белков и вирусов 12. STM также может быть сделано в жидкостях с использованием специализированных зонд советы 13. Это было показано Линдсей и др., Которые использовали СТМ и АСМ с молекулами ДНК изображение в 10 мМ HClO 4 и в воде, на золотых электродов 13. KPFM была продемонстрирована при определении поверхности потенциалы ДНК и белков анализ 25 и биомолекул взаимодействия с лигандами 26.

KPFM работает путем измерения контактной разности потенциалов (CPD) между проводящей острия кантилевера АСМ и идеально проводящей образца (рис 1, я) 14,15. Образцы, не обязательно должны быть проводящим (т.е. биологических SAMPLES). Изображений может осуществляться на слюде, стекла и поверхности кремния (непроводящих) до тех пор, как непроводящий поверхность тонкой и есть основная проводящий материал 6,7. ДСП эквивалентно потенциального напряжения поверхности и может быть описана как разница в рабочих функций между наконечником (φ наконечника) и образца (φ) образца, деленная на отрицательного заряда электронов (- е). При проводящий наконечник АСМ подносится близко к поверхности образца (разделены расстоянием D), электростатическая сила (F ES) генерируется за счет разницы в энергии Ферми (рис 1, II, в) 15. На данный момент, вакуумные энергии зондом и образцом (E V) находятся в равновесии и выровнены. После чего наконечник ближе к поверхности образца, зонда и образца поверхность вступают в электрический контакт и действовать в качестве параллельных конденсаторов пластины (фиг.1, II, B </stronг>) 14,15. В точке, энергии Ферми наконечника и на поверхности образца становятся выровнены, достигая стационарного равновесия (рис 1, II, б). Зонда и образца поверхность будет заряжена и V CPD образуют из-за разницы в е + е ~ 'ы и рабочих функций. F ES действует на электрической контактной области из-за образовавшегося V ДСП. Эта сила впоследствии недействительным путем применения внешнего постоянного тока до кончика, который имеет ту же величину, как и образовавшегося V ДСП (рис 1, б, в). Это приложенное напряжение постоянного тока устраняет поверхностный заряд в области электрического контакта, и количество постоянного тока необходимо устранить F ЭС V CPD равна разности работ выхода между SAmple поверхности и кончик 15. Следует отметить, что работа выхода наконечника известно и это предусмотрено производителей. Во всех методах KPFM, напряжение переменного тока (AC, примерно 100 – 500 мВ) также применяется к кончику, чтобы произвести колебательные электрические силы, действующие между зондом и образцом 14. Это обеспечивает более высокое разрешение при измерении изменения в V ДСП и / или F ES. В связи с этим, изменение частоты или амплитуды колебаний электрического может быть исправлена ​​путем постоянного тока, и потенциал поверхности карты могут быть получены. Данные из конкретных областей этих карт могут быть дополнительно проанализированы с целью обеспечения электрической информацию о конкретных топографических особенностей.

KPFM может работать в трех режимах: (1) Режим подъема, (2) с амплитудной модуляцией (AM), режим и (3) частота модуляции (FM) режиме 14,16. Режим подъема был первоначальный Incarnation из KPFM. Режим подъема опирается на метод двух частот, в которой колебались наконечник тащили по всей поверхности, чтобы получить топографическую изображение. Для второго прохода наконечник поднял заданное расстояние над образца (10 – 100 нм) и сканируют назад по тому же области. С помощью этого метода два прохода, режим подъема, по сравнению с избыточное и FM-KPFM, занимает наибольшее время для получения изображения. Повышение наконечник от поверхности гарантирует, что только дальний F ES измеряется. Кроме того, перекрестные помехи между топографией и при измерениях поверхностного потенциала отделяется за счет увеличения пространственным разрешением и чувствительностью.

AM-KPFM улучшает боковую разрешение и чувствительность с помощью Dual-частоты для одновременного измерения рельеф образца и поверхностного потенциала (за один проход сканирования) 14. В режиме AM, консольные механически колеблется, как правило, 5% ниже первой резонансной частоте (F 0), и электрически возбуждению (тhrough в V AC) на его второй резонансной частоты (F 1). Изменения в амплитуде F 0 приводят к генерации топографических данных, а изменения в амплитуде F 1, в связи с изменениями в F ES и V ДСП, дать потенциальным данные измерений на поверхности. F 0 и F 1 кантилевера разделены значительными частот и энергий, которые сигнализируют перекрестные помехи к минимуму 14. Напорный ящик электроника (Евр) АСМ выделяет два сигнала, чтобы дать как топографическая и поверхностного потенциала данных одновременно в одном цикле. FM-KPFM повышает разрешение еще ​​дальше, чем АМ-KPFM на биологические поверхности 14. FM-KPFM работает иначе, чем АМ-KPFM в том, что он измеряет изменения в электростатических градиентов сил, а не силы электростатического (F ов) 15. Как и в режиме АМ, ЧМ-режиме использует Dual-частоты и оде проход сканирующий механизм, чтобы получить топографическое и поверхностного потенциала данных одновременно 14. В режиме FM, консольные механически колеблется на F 0 и электрически колебались на низком модифицированной частоты (F мода, как правило, 1 – 5 кГц). По электростатических взаимодействий, F 0 и ф мод смеси для получения боковые полосы F 0 ± ф мод. Эти боковые полосы очень чувствительны к изменениям в электростатической силы, и может быть отделена от F 0 до СЭП АФМ-х годов. Так как программа FM-KPFM измеряет изменения в градиентов силы электростатического, советы вершина форма и ее обслуживание / целостность играть ключевую роль в общем поверхностного потенциала разрешением 14, 15. Поверхностного потенциала разрешение в AM и режимы FM в диапазоне от 1 нм в поперечном направлении 14 -16. Следует отметить, что изображения KPFM может быть сделано в неполярных жидкостей, а в последнее время, как было показано, быть сделано в условиях низкой ионной (<10 мм) полярных жидкостей (вс открытым контуром режимы KPFM, которые не требуют обратную связь смещения, что исключает применение постоянного напряжения смещения), такие как MilliQ воды; Однако, работы с изображениями KPFM еще предстоит сделать на живые клетки в полярных решений 17-20. Дополнительные проблемы, связанные с изображениями SP в жидкости, что растворы обычно используются для поддержания клеток (т.е., забуференный фосфатом физиологический раствор) имеют высокие концентрации подвижных ионов, что приведет к фарадеевского реакций, динамики заряда смещения, вызванного и диффузии ионов / перераспределени 20. Таким образом, для данного эксперимента, измерения были сделаны из высушенных и мертвых клеток MRSA на поли-L-лизин функционализированных стали и золота поверхностей из нержавеющей условиях окружающей среды. Изображений может быть проведена на воздухе или в условиях вакуума на биологических образцах, которые были предварительно высушенных или иммобилизованных на поверхности 20. Влажные условия также было показано, влияют KPFM изображений поверхностей 6.

В этом исследовании мы использовали FM-KPFMи АСМ для изучения роли С.П. крепления метициллин-устойчивый золотистый стафилококк USA100 (MRSA) с поли-L-лизин функциональными нержавеющей стали и золота поверхностей. MRSA недавно получил статус с множественной лекарственной устойчивостью (МЛУ) "Superbug" в связи с естественным выбранной его устойчивость ко многим β-лактамных антибиотиков и цефалоспоринов 21. MRSA инфекции в настоящее время более сложной, трудно, и превосходно для лечения, что приводит к использованию более жестких противомикробных препаратов, таких как ванкомицин или оксазолидинонов, имеющих более высокие уровни токсичности в организме человека, и поэтому не может быть использован в качестве длительного лечения 22. Нержавеющая сталь была выбрана из-за ее медицинской значимости и общего пользования в качестве материала в иглы для подкожных инъекций, подкладные судна, дверные ручки, раковины и т.д. золото было использовано в качестве сравнительного металла. FM-KPFM была использована для изучения, если микробная мембрана SP изменяется при добавлении к субстратов.

Protocol

1. Подготовка посуды и культур Прежде чем приступить к этой эксперименте, подготовить кровяной агар 5% овечьей (SBA) Плиты для выращивания MRSA. Инкубируйте пластины SBA в течение 24 ч при 37 ° С. По истечении этого времени, одиночные, хорошо изолированных колоний должны присутствовать, что…

Representative Results

Возможность измерения с помощью SP KPFM опирается на принципе, что и поверхность образца и кантилевера наконечника являются проводящими, в некоторой степени. Нержавеющая сталь и золото выступал в качестве проводящих поверхностей, к которым MRSA были прикреплены. KPFM изображения были взяты ?…

Discussion

KPFM был использован в качестве нового метода для получения поверхности электрические данные. Он обычно используется в качестве метода для изучения распределения заряда в области химии и только недавно начали применяться и для исследования биологических систем на микро- и нано-масштаб…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors sincerely thank the Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada, the Ontario Ministry of Research and Innovation, and the Canada Foundation for Innovation for funding this study.

Materials

Name of Reagent/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
5500ILM Atomic Force Microscope Agilent Technologies #N9435S
AFM/STM Metal Specimen Discs TED PELLA, INC. #16219 Stainless steel sample discs
DPE (Low-Noise) Conductive SPM Probes Mikromasch #HQ:DPE-XSC11 There are 4 Pt-coated cantilevers per chip.  We utilized cantilever B for experiments.
PELCO Gold Coated AFM/STM Metal Specimen Discs TED PELLA, INC. #16218-G Gold sample discs
PicoView Software Agilent Technologies #N9797B 5500ILM Atomic Force Microscope imaging software
Pico Image Software (Pico Image Basic) Agilent Technologies #N9797AU-1FP 5500 ILM Atomic Force Microscope post-image processing software
Scilogex D3024 High Speed Micro-Centrifuge Thomas Scientific #91201513 Centrifuge used in cell-washing steps to separate cells (pellet) from media
Trypticase Soy Agar with 5% Sheep Blood BD #221261 Pre-made plates
Tryptic Soy Broth BD #257107 Comes as a dry powder.  Instruction on how to make come on the container.

References

  1. Seth, A. K., et al. In vivo modeling of biofilm-infected wounds: a review. J. Surg. Research. 178 (1), 330-338 (2012).
  2. Wolcott, R. D., Ehrlich, G. D. Biofilms and chronic infections. JAMA. 299 (22), 2682-2684 (2008).
  3. Hoiby, N., et al. The clinical impact of bacterial biofilms. Micro. Infect. 3 (2), 55-65 (2011).
  4. Zhang, W., Hughes, J., Chen, Y. Impacts of hematite nanoparticle exposure on biomechanical, adhesive, and surface electrical properties of E. coli cells. Appl. Environ. Microbiol. 78 (11), 3905-3915 (2012).
  5. Lorite, G. S., et al. Surface physicochemical properties at the micro and nano length scales: role on bacterial adhesion and Xylella fastidiosa biofilm development. PLoS One. 8 (9), (2013).
  6. Lee, I., Chung, E., Kweon, H., Yiacoumi, S., Tsouris, C. Scanning surface potential microscopy of spore adhesion on surfaces. Coll. Surf. Biointer. 92, 271-276 (2012).
  7. Tsai, C., Hung, H., Liu, C., Chen, Y., Pan, C. Changes in plasma membrane surface potential of PC12 cells as measured by Kelvin probe force microscopy. PLoS One. 7 (4), (2012).
  8. Jucker, B. A., Harms, H., Zehnder, A. J. Adhesion of the positively charged bacterium Strenotrophomonas (Xanthomonas) maltophilia 70401 to glass and Teflon. J. Bacteriology. 178 (18), 5472-5479 (1996).
  9. Soon, R. L., et al. Different surface charge of colistin-susceptible and -resistant Acinetobacter baumannii cells measured with zeta potential as a function of growth phase and colistin treatment. J. Anti. Chemo. 66, 126-133 (2011).
  10. Tariq, M., Bruijs, C., Kok, J., Krom, B. P. Link between culture zeta potential homogeneity and Ebp in Enterococcus faecalis. Appl. Environ. Microbiol. 78 (7), 2282-2288 (2012).
  11. Ayala-Torres, C., Hernandez, N., Galeano, A., Novoa-Aponte, L., Soto, C. Zeta potential as a measure of the surface charge of mycobacterial cells. Ann Microbiol. , (2013).
  12. Allison, D. P., Mortensen, N. P., Sullivan, C. J., Doktycz, M. J. Atomic force microscopy of biological samples. Nanomed. Nanobiotech. 2 (6), 613-634 (2010).
  13. Lindsay, S. M., et al. Scanning tunneling microscopy and atomic force microscopy studies of biomaterials at a liquid-solid interface. J. Vac. Sci. Technol. 11 (4), 808-815 (1993).
  14. Moores, B., Hane, F., Eng, L., Leonenko, Z. Kelvin probe force microscopy in application to biomolecular films: frequency modulation, amplitude modulation, and lift mode. Ultramicroscopy. 110 (6), 708-711 (2010).
  15. Melitz, W., Shen, J., Kummel, A. C., Kelvin Lee, S. probe force microscopy and its application. Surf. Sci. Reports. 66 (1), 1-27 (2011).
  16. Loppacher, C., et al. FM demodulated Kelvin probe force microscopy for surface photovoltage tracking. Nanotechnology. 16 (3), (2005).
  17. Domanski, A. L., et al. Kelvin probe force microscopy in nonpolar liquids. Langmuir. 28 (39), 13892-13899 (2012).
  18. Collins, L., et al. Dual harmonic Kelvin probe force microscopy at the graphene-liquid interface. Appl. Phys. Letters. 104 (13), 133103 (2014).
  19. Kobayashi, N., Asakawa, H., Fukuma, T. Nanoscale potential measurements in liquid by frequency modulation atomic force microscopy. Rev. Sci. Instru. 81, (2010).
  20. Collins, L., et al. Probing charge screening dynamics and electrochemical processes at the solid-liquid interface with electrochemical force microscopy. Nature Comm. 5, 2871 (2014).
  21. Pastar, I., et al. Interactions of methicillin resistant Staphylococcus aureus USA300 and Pseudomonas aeruginosa in polymicrobial wound infection. PLoS One. 8 (2), (2013).
  22. Brien, D. J., Gould, I. M. Does vancomycin have a future in the treatment of skin infections. Cur. Opin. Infec. Diseas. 27 (2), 146-154 (2014).
  23. Wang, P., Kinraide, T. B., Zhou, D., Kopittke, P. M., Peijnenburg, W. J. G. M. Plasma membrane surface potential: dual effects upon ion uptake and. 155 (2), 808-820 (2011).
  24. Gross, M., Cramton, S. E., Gotz, F., Peschel, A. Key role of teichoic acid net charge in Staphylococcus aureus colonization of artificial surfaces. Infect. Immun. 69 (5), 3423-3426 (2001).
  25. Sinensky, A. M., Belcher, A. M. Label-free and high-resolution protein/DNA nanoarray analysis using Kelvin probe force microscopy. Nat. Nanotechnol. 2, 653-659 (2007).
  26. Park, J., et al. Single-molecule recognition of biomolecular interaction via kelvin probe force microscopy. ACS Nano. 5 (9), 6981-6990 (2011).
check_url/kr/52327?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Birkenhauer, E., Neethirajan, S. Surface Potential Measurement of Bacteria Using Kelvin Probe Force Microscopy. J. Vis. Exp. (93), e52327, doi:10.3791/52327 (2014).

View Video