Summary

마우스 관상 내피 세포의 분리

Published: July 03, 2016
doi:

Summary

This protocol is prepared to share our method of isolating mouse coronary endothelial cells for the purpose of imaging or to conduct molecular biological experiments.

Abstract

내피 세포는 혈관의 내벽 라인 혈관 톤, 혈관 투과성, 새로운 혈관 형성의 조절에 중요​​한 역할을한다. 내피 세포 기능 장애, 허혈성 심장 질환을 포함한 다양한 심혈 관계 질환의 발생 및 진행에 관여한다. 함수 관상 내피 세포의 특성을 조사하기 위해, 세포 격리 첫 단계이며 이후의 실험을 높은 순도 및 품질을 필요로한다. 이 프로토콜은 성인 마우스 관상 동맥 내피 세포를 분리하는 효율적인 방법을 설명합니다. 마우스 심장 해부 및 작은 조각으로 다진된다. 디스 파제 II와 콜라게나 제를 사용하여 심장의 소화 후, 세포를 세척하고, 항 CD31 항체가 결합되는 자성 비드와 인큐베이션. 내피 세포와 구슬은 세척 몇 번이고 이미징 및 분자 생물학적 experime 등 다양한 애플리케이션에서 사용할 준비가국세청. 효율적인 분리는 90 % 이상의 순도 하나의 심장 당 약 104 세포를 얻을 수 있습니다.

Introduction

다양한 심장 혈관 질병 및 대사성 질환의 마우스 모델은 환자에서 발견되는 것과 유사한 생체 분자 변화를 견딜. 또한, 마우스의 유전 적 변화는 우리 질환의 발생 및 진행에 특정 유전자의 병원성 역할을 조사 할 수있는 강력한 도구이다. 현재, 세포 유형 특이 적 유전자의 노크 또는 -out 생쥐 쉽게 마우스 진정 유전자 변형되었는지 여부를 결정하는 첫 번째 단계는 특정 유형의 세포에서 많은 실험실 mRNA를 측정 및 단백질 수준에서 발생한다.

내피 세포는 혈관 내피 세포되는 EC () 라인 안쪽 혈관 벽의 얇은 단일 층이다. 내피 세포는 혈관 장력, 혈관 투과성, 새로운 혈관 형성 1,2- 조절에 중요한 역할을한다. 내피 기능 장애는 많은 병리학 적 조건과 내피 세포 기능의 변화의 특징은 다양한 자동차로 이어질 수있다diovascular 질병 3,4. 이 병태 생리 학적 조건하에 내피 세포의 기능을 연구하는 것이 중요하다.

가 EC에 5-8을 분리하는 방법에는 여러 가지가 있으며, 상기 분리 방법은 조직과 종 사용될에 따라 최적화되어야한다. 다양한 조직으로부터의 EC가 표면 마커에 대한 단백질 발현 9 이질성의 높은 수준을 표시하기 때문이다. 내피 세포의 성공적인 분리는 종종 도전하고 훈련과 연습의 어느 정도를 필요로 할 수 있습니다. 달성되면,이 프로토콜에서 제안 된 분리 방법은 안정적이고 효율적인 것으로 증명한다.

이 방법의 전체 목표는 높은 품질과 양의 관상 마우스의 EC (MCECs)을 획득하는 것이다. 심장에서 수집 된 세포의 양이 다른 기술을 이용하여 다른 조직에서 수집 된 세포보다 작은 경우에도,이 방법은 여전히​​ 내기 제공터 품질. 얻어진 인구 내피 세포의 순도는 90 %보다 크다. 따라서,이 기술은 세포 이미징 순전히 절연 내피 세포에 의존하는 애플리케이션에 적합하다.

Protocol

쥐에 대한 연구는 아리조나 대학의 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)의 승인을하고, 국립 보건 연구소 (NIH) 지침에 따라 수행 하였다. 주 : 섹션 1, 2, 3은 설치와 실험 하루 전에 수행되어야한다. 1. 준비 솔루션 CD31 완충액 (50 mL) 중 50 ML 튜브에 50 ㎖ × 1 인산 버퍼 식염수 (PBS)를 추가합니다. 0.05 g 소 혈청 알부민 (BSA) 및 0.037 g 에틸렌 디아민 테트라 아세트산 (EDTA)를 달아…

Representative Results

마우스 마음에서 관상 동맥 내피 세포의 성공적인 분리는 일반적으로 조약돌 모양으로 90 % 이상의 순도 약 10 4 세포를 얻을 수 있습니다. 내피 세포의 순수한 인구를 들어,주의는 오염이없는 무균 환경을 보장하기 위해 프로토콜을 통해주의해야한다. 신장 세포 집단 내 세포의 확대 외관은 다른 유형의 세포, 평활근 세포 및 섬유 아세포 오염을 나타낸다. 내피 세?…

Discussion

연구에서 가장 널리 사용되는 혈관 내피 세포 때문에 편리 성과 용이성 배양 인간 제대 정맥 내피 세포 (HUVEC에)에있다. 그러나, 많은 연구가 다른 특정 기관 (10)으로부터 내피 세포의 분리에 의해 달성 생리 모델의 이용을 필요로한다. 내피 세포는 심장 조직에서 세포의 매우 작은 인구를 구성; 자신의 분리 및 배양이 매우 어려운 것으로 증명할 수 있습니다.

이 프로?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작품은 건강 (A. 마키노에 HL115578)의 국립 연구소에서 보조금에 의해 지원되었다.

Materials

BSA Sigma A3311-10G
EDTA Fisher BP120-500
HBSS Fisher SH3026801
Hepes Sigma-Aldrich H4034-500G
Sodium Bicarbonate  Sigma S5761
D-(+)-Glucose  Sigma G7021-1KG
Sheep anti-rat IgG beads  Life Technologies F-410L DynaBeads pan mouse IgG , Thermo Fisher Scientific, cat# 11035
Rat anti-mouse PECAM Antibody  BD Pharmigen 550274 BD Biosciences
IFCS  Fisher SH30072.04
M199 Fisher MT10060-CV
Dispase (Neutral Protease) Worthington Biochemical Corp./Fisher LS02109
Collagenase Type II  Worthington Biochemical Corp./Fisher LS004176
Glycerol  Fisher BP381-1
Igepal Sigma 13021-50ml I3021-50 ml
Phosphatase inhibitor cocktail Sigma P0044-1ml
Protease inhibitor cocktail Sigma P8340-1 ml
Heparin  Sigma H3149-100KU
FBS  Fisher/Mediatech MT35010CV
D-Valine Sigma V1255-5G
EGS BD 356006 Corning
Penicillin/Streptomycin Fisher/Mediatech MT-30-002-Cl MT-30-002-CI

References

  1. Michiels, C. Endothelial cell functions. J Cell Physiol. 196, 430-443 (2003).
  2. Sumpio, B. E., Riley, J. T., Dardik, A. Cells in focus: endothelial cell. Int J Biochem Cell Biol. 34, 1508-1512 (2002).
  3. Cines, D. B., et al. Endothelial cells in physiology and in the pathophysiology of vascular disorders. Blood. 91, 3527-3561 (1998).
  4. Deanfield, J. E., Halcox, J. P., Rabelink, T. J. Endothelial function and dysfunction: testing and clinical relevance. Circulation. 115, 1285-1295 (2007).
  5. Jin, Y., Liu, Y., Antonyak, M., Peng, X. Isolation and characterization of vascular endothelial cells from murine heart and lung. Methods Mol Biol. 843, 147-154 (2012).
  6. Makino, A., Platoshyn, O., Suarez, J., Yuan, J. X., Dillmann, W. H. Downregulation of connexin40 is associated with coronary endothelial cell dysfunction in streptozotocin-induced diabetic mice. Am J Physiol Cell Physiol. 295, C221-C230 (2008).
  7. Marelli-Berg, F. M., Peek, E., Lidington, E. A., Stauss, H. J., Lechler, R. I. Isolation of endothelial cells from murine tissue. J Immunol Methods. 244, 205-215 (2000).
  8. van Beijnum, J. R., Rousch, M., Castermans, K., vander Linden, E., Griffioen, A. W. Isolation of endothelial cells from fresh tissues. Nat Protoc. 3, 1085-1091 (2008).
  9. Nolan, D. J., et al. Molecular signatures of tissue-specific microvascular endothelial cell heterogeneity in organ maintenance and regeneration. Dev Cell. 26, 204-219 (2013).
  10. Sobczak, M., Dargatz, J., Chrzanowska-Wodnicka, M. Isolation and culture of pulmonary endothelial cells from neonatal mice. J Vis Exp. , (2010).
  11. Makino, A., Dai, A., Han, Y., Youssef, K. D., Wang, W., Donthamsetty, R., Scott, B. T., Wang, H., Dillmann, W. H. O-GlcNAcase overexpression reverses coronary endothelial cell dysfunction in type 1 diabetic mice. Am J Physiol Cell Physiol. 309, C593-C599 (2015).
  12. Sasaki, K., Donthamsetty, R., Heldak, M., Cho, Y., Scott, B. T., Makino, A. VDAC: old protein with new roles in diabetes. Am J Physiol Cell Physiol. 303, C1055-C1060 (2012).
check_url/kr/53985?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Luo, S., Truong, A. H., Makino, A. Isolation of Mouse Coronary Endothelial Cells. J. Vis. Exp. (113), e53985, doi:10.3791/53985 (2016).

View Video