Summary

RNA结合蛋白的检测通过<em>体外</em在脂肪细胞培养> RNA下拉

Published: July 22, 2016
doi:

Summary

的RNA下拉协议这里优化用于检测RNA结合蛋白(限制性商业惯例)和非编码以及编码RNA之间的相互作用。从雄激素受体(AR)的RNA片段作为例子来演示如何从初级的棕色脂肪细胞的lystate检索其RBP。

Abstract

RNA结合蛋白(限制性商业惯例)正在成为在脂肪的发育和功能的调节层。限制性商业惯例通过影响靶mRNA的稳定性和翻译效率发挥在转录后水平的基因表达的调控中起关键作用。 RNA的下拉技术已被广泛用于研究RNA-蛋白质相互作用,这是必要阐明该机制底层限制性商业惯例'以及长的非编码RNA“(lncRNAs)函数。然而,高血脂丰度在脂肪细胞构成在进行该实验中一个技术挑战。这里详细的RNA下拉协议是初级脂肪细胞培养进行了优化。从雄激素受体的(AR)3'非翻译区含作为一个例子来说明如何检索其RBP合作伙伴的HuR蛋白质,脂肪细胞从一个lystate富含腺苷酸尿苷酸-elementwas(3'UTR)的RNA片段。可以应用这里描述的方法来检测之间的相互作用限制性商业惯例和非编码RNA,以及间限制性商业惯例和编码RNA。

Introduction

限制性商业惯例是结合在细胞中的双链或单链RNA和参与形成RNA-蛋白复合物的蛋白质。限制性商业惯例可以结合多种RNA分子,包括mRNA和长非编码RNA(lncRNAs),并在发挥转录后水平的影响力。限制性商业惯例和lncRNAs在脂肪发展逐渐成为新的监管机构和功能1,2,3。理解RBP-的机制和细胞途径lncRNA介导的调节,它通常需要检测特定RNA分子和一个或多个限制性商业惯例之间的相互作用,并且,有时,以识别RNA的蛋白伴侣的全谱成绩单。然而,该实验可以是具有挑战性由于脂质的脂肪细胞的高含量。这里所描述的RNA的下拉协议可被用于检索来自原代培养4,5的脂肪细胞裂解物的特定RNA的蛋白质的合作伙伴。

理这个原山口总结如下。的RNA诱饵是在体外从DNA模板转录,生物素标记和缀合到链霉抗包被的磁珠4。所述RNA诱饵与细胞裂解物孵育以允许RNA-蛋白质复合物,其随后被拉下来的磁性支架的形成。更具体地,该RNA下拉协议如下所述使用的RNA片段从AR 3'UTR作为诱饵检索的HuR蛋白质,普遍表达RBP势必的mRNA 6,7的3'UTR,从theadipocytelysate原代培养。为了测试该测定的结合特异性,非相关RNAas以及空白链霉珠被包括作为对照。此协议是与蛋白质印迹或质谱(MS)兼容,以确认一个特定RBP的捕获或识别捕获的限制性商业惯例,分别为8的全剧目。

几种技术可用于研究RNA-蛋白质相互作用秒。揭示通过一个给定的RBP,RIP(RNA免疫沉淀)和CLIP(UV交联和免疫沉淀)结合的RNA可以应用。与此相反,以确定一个给定RNA的蛋白质伙伴,RNA下拉,啁啾(通过RNA纯化染色质分离),图表(RNA靶捕获杂交分析)和RAP(RNA反义纯化)都可以应用。在与后来者相比,RNA下拉技术花费较少的精力来设置。它可以用来捕获蛋白在体外 和体内 。 RNA的下拉,这在技术上是比其体外对应更具挑战性, 在体内的方法,通过在细胞中的交联保留RNA-蛋白质相互作用,捕获的从细胞中感兴趣的适体-标记的RNA,和随后检测结合的限制性商业惯例。 RNA的下拉可以用于充实低丰度限制性商业惯例,并且分离和鉴定在控制细胞调节9,10具有多样功能作用的RNA-蛋白质复合</s了>。

Protocol

注:在本研究的上下文中感兴趣的RNA为AR 3'UTR的片段。 1.生物素标记的RNA的制备以获得的RNA,使用商业试剂盒和以下生产商的说明11通过PCR扩增T7-AR-低聚,随后通过体外转录。 注:引物用于PCR列于表4:T7-AR-F和T7-AR-R。 对于非特异性结合控制,通过PCR扩增的萤火虫萤光素酶(FL)的DNA psiCHECK-2的质粒,随后通过体外转录的?…

Representative Results

在这个演示实验中,AR RNA片段作为诱饵捕捉到它的结合蛋白的HuR。两者FL的RNA诱饵即非相关的HuR蛋白,以及未缀合的链霉空白珠的等分试样用作阴性对照。 RNA-蛋白的相互作用,可能会发生无论是在细胞核或细胞质中,并且此下拉协议可以应用到无论是总或分级(核或细胞质)细胞裂解物。通过Western印迹的蛋白质的分析表明,15微升未分级细胞裂解物的样品(见4.8节),如…

Discussion

lncRNAs和限制性商业惯例在健康和疾病的重要角色,但这些分子的分子机制知之甚少。与lncRNA分子相互作用的蛋白的鉴定是朝着阐明的调节机制的关键步骤。通过将RNA下拉测定系统限制性商业惯例的富集是基于在溶液中相互作用的复杂,使得从细胞裂解物蛋白可使用结合于链霉抗磁珠的生物素化的RNA诱饵被选择性地提取的捕获。其他一些方法,如啁啾,图表,RAP可以达到同样的目的,但这些方法?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作是由新加坡NRF奖学金(NRF-2011NRF-NRFF001-025)以及CBRG(NMRC / CBRG / 0070/2014)的资助。

Materials

Major materials used in this study.
MEGAscript kit  Ambion
Biotin-14-CTP  Invitrogen
NucAway spin columns  Ambion
Dynabeads M-280 Streptavidin  Invitrogen
HuR (3A2) mouse monoclonal antibody (sc-5261)  Santa Cruz Biotechnology
Goat anti-mouse IgG-HRP(sc-2005)  Santa Cruz Biotechnology
Hypure Molecular Biology Grade Water (nuclease-free)  HyClone
Phosphate Buffer Saline (1×PBS)  HyClone
RNase inhibitor  Bioline
Protease inhibitor  Sigma
Pfu Turbo DNA polymerase  Agilent Technologies
TRIsure  Bioline
Name Company Catalog Number Comments
Major equipment used in this study.
Sorvall Legend Micro 21R centrifuge  Thermo Scientific
Sorvall Legend X1R centrifuge  Thermo Scientific
Bio-Rad T100 thermal cycler  Bio-Rad
Nanodrop 2000  Thermo Scientific
BOECO rotator Multi Bio RS-24  BOECO,Germany
Protein gel electrophoresis and blotting apparatus  Bio-Rad
DynaMag-2 magnet  Life Technologies

References

  1. Huot, M. &. #. 2. 0. 1. ;., et al. The Sam68 STAR RNA-binding protein regulates mTOR alternative splicing during adipogenesis. Mol Cell. 46 (2), 187-199 (2012).
  2. Sun, L., et al. Long noncoding RNAs regulate adipogenesis. Proc Natl Acad Sci U S A. 110 (9), 3387-3392 (2013).
  3. Engreitz, J. M., et al. The Xist lncRNA exploits three-dimensional genome architecture to spread across the X-chromosome. Science. 341 (6147), 1237973 (2013).
  4. Zhao, X. Y., Li, S., Wang, G. X., Yu, Q., Lin, J. D. A long noncoding RNA transcriptional regulatory circuit drives thermogenic adipocyte differentiation. Mol Cell. 55, 372-382 (2014).
  5. Alvarez-Dominguez, J. R., et al. De novo reconstruction of adipose tissue transcriptomes reveals long non-coding RNA regulators of brown adipocyte development. Cell Metab. 21, 764-776 (2015).
  6. Adams, D. J., Beveridge, D. J., van der Weyden, L., Mangs, H., Leedman, P. J., Morris, B. J. HADHB, HuR, and CP1 bind to the distal 3-untranslated region of human renin mRNA and differentially modulate renin expression. J Biol Chem. 278 (45), 44894-44903 (2003).
  7. Yeap, B. B., et al. Novel binding of HuR and poly(C)-binding protein to a conserved UC-rich motif within the 3´ untranslated region of the androgen receptor messenger RNA. J Biol Chem. 277, 27183-27192 (2002).
  8. König, J., Zarnack, K., Luscombe, N. M., Ule, J. Protein-RNA interactions: new genomic technologies and perspectives. Nat Rev Genet. 13, 77-83 (2012).
  9. Ferrè, F., Colantoni, A., Helmer-Citterich, M. Revealing protein-lncRNA interaction. Briefings in Bioinformatics. , 1-11 (2015).
  10. McHugh, C. A., Russell, P., Guttman, M. Methods for comprehensive experimental identification of RNA-protein interactions. Genome Biol. 15 (1), 203 (2014).
  11. Lee, Y. S., et al. AU-rich element-binding protein negatively regulates CCAAT enhancer binding protein mRNA stability during long term synaptic plasticity in Aplysia. Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (38), 15520-15525 (2012).
  12. Hermann, M., Cermak, T., Voytas, D. F., Pelczar, P. Mouse genome engineering using designer nucleases. J Vis Exp. (86), (2014).
  13. Tsai, M. C., et al. Long Noncoding RNA as Modular Scaffold of Histone Modification Complexes. Science. 329 (5992), 689-693 (2010).
  14. Wan, Y., et al. Landscape and variation of RNA secondary structure across the human transcriptome. Nature. 505, 706-709 (2014).
  15. Li, H., et al. Identification of mRNA binding proteins that regulate the stability of LDL receptor mRNA through AU rich elements. J Lipid Res. 50 (5), 820-831 (2009).
  16. McHugh, C. A., et al. The Xist lncRNA interacts directly with SHARP to silence transcription through HDAC3. Nature. 521 (7551), 232-236 (2015).
  17. Chu, C., et al. Systematic Discovery of Xist RNA Binding Proteins. Cell. 161 (2), 404-416 (2015).
  18. Chu, C., Spitale, R. C., Chang, H. Y. Technologies to probe functions and mechanisms of long noncoding RNAs. Nat Struct Mol Biol. 22 (1), 29-35 (2015).
  19. Zhao, J., et al. Genome-wide identification of Polycomb-associated RNAs by RIP-seq. Mol Cell. 40 (6), 939-953 (2010).

Play Video

Cite This Article
Bai, Q., Bai, Z., Xu, S., Sun, L. Detection of RNA-binding Proteins by In Vitro RNA Pull-down in Adipocyte Culture. J. Vis. Exp. (113), e54207, doi:10.3791/54207 (2016).

View Video