Summary

Sviluppo di<em> Metarhizium anisopliae</em> Come micosintetizzatore: dall'isolamento al campo

Published: July 30, 2017
doi:

Summary

Qui riportiamo le varie fasi che interessano lo sviluppo della conoscenza di un miinoinsinidico efficace, incluso l'isolamento, l'identificazione, la selezione e la selezione del fungo entomopatogeno "best-fit", Metarhizium anisopliae , per il controllo dei parassiti insetti nell'agricoltura .

Abstract

Una preoccupazione importante per lo sviluppo di micosensitici commerciali è la velocità di uccisione rispetto a quella degli insetticidi chimici. Di conseguenza, l'isolamento e lo screening per la selezione di un fungo entomopatogeno ad azione rapida e altamente virulente sono passi importanti. I funghi entomopatogeni, come Metarhizium, Beauveria e Nomurea , che agiscono per contatto, sono più adatti a quelli del Bacillus thuringiensis o del virus nucleopolyhedrosis (NPV), che devono essere ingeriti dall'infezione insettica. Nel presente lavoro, abbiamo isolato 68 ceppi Metarhizium da insetti infetti usando una metodologia di diluizione del suolo e di esca. Gli isolati sono stati identificati mediante l'amplificazione e il sequenziamento della regione rDNA ITS1-5.8S-ITS2 e 26S. Il ceppo più virulento di Metarhizium anisopliae è stato selezionato sulla base della concentrazione letale media (LC 50 ) e del tempo (LT 50 ) ottenuta in bioassay insetti contro le larve III-instar di Helicoverpa armigera.La produzione di massa di spore dal ceppo selezionato è stata effettuata con fermentazione allo stato solido (SSF) utilizzando riso come substrato per 14 giorni. Spore vennero estratte dalla biomassa sporulata usando lo 0,1% di tween-80 e sono state preparate diverse formulazioni delle spore. Le prove in campo delle formulazioni per il controllo di un'infestazione H. armigera nei piselli di piccione sono state eseguite mediante un blocco randomizzato. I livelli di controllo dell'infestazione ottenuti con olio e formulazioni acquose (rispettivamente 78,0% e 70,9%) erano migliori rispetto al 63,4% ottenuto con pesticidi chimici.

Introduction

Dall'introduzione di pesticidi organoclorurati negli anni '40 in India, l'uso di pesticidi è aumentato in molte pieghe 1 , con i coltivatori che costano ancora miliardi di rupie 2 ogni anno in termini di perdita di rendimento nella produzione agricola. L'uso diffuso e non razionale di pesticidi sintetici è una minaccia continua per l'ambiente e la salute umana 1 . L'uso indiscriminato di pesticidi porta a residui nel suolo e l'esaurimento di predatori di peste naturali. Serve anche come una potente pressione di selezione per alterare il trucco genetico di una popolazione di parassiti, portando allo sviluppo della resistenza 1 . Nonostante gli enormi vantaggi della rivoluzione verde, che richiedono ingenti input, come fertilizzanti e pesticidi, i parassiti continuano ad essere un importante vincolo biotico. Una stima generale delle perdite annue delle colture registrate in India e in tutto il mondo è di 12 miliardi di dollariEf "> 2 e 2 000 miliardi di dollari 3 rispettivamente.

Quando i pesticidi chimici hanno effetti dannosi quando vengono usati per controllare i parassiti degli insetti, è indispensabile cercare metodi alternativi ecologicamente sani, affidabili, economici e sostenibili. Il controllo biologico offre un'alternativa appropriata e comprende l'uso di parassiti, predatori e patogeni microbici 4 . I funghi, per esempio, sono conosciuti per infettare un'ampia gamma di insetti di insetti, tra cui i lepidotteri, gli imenotteri, i coleopterani e i dipftani, spesso causando epizootica naturale. Inoltre, a differenza di altri agenti di controllo degli insetti batterici e virali, il modo di azione dei funghi patogeni insetti è dal contatto 5 . Questi funghi comprendono un gruppo eterogeneo di oltre 100 generi, con circa 750 specie riportate tra diversi insetti. I principali patogeni fungini sono: Metarhizium sp., Beauveria sP., Nomuraea rileyi , Lecanicillium lecanii e Hirsutella sp., Per citarne alcuni 6 . M. anisopliae (Metchnikoff) Sorokin è il secondo fungo entomopatogeno più diffuso nel biocontrollo. È noto per attaccare oltre 200 specie di insetti 7 .

In questo studio vengono presentati diversi stadi coinvolti nello sviluppo della conoscenza di un micopesticide usando M. anisopliae . Ciò include: 1) l'identificazione di una sorgente ( cioè insetti di terreno o di micosi) per entomopatogeni virulenti, 2) identificazione e selezione degli entomopatogenici, 3) strategie per mantenere la loro natura virulenta e l'efficacia nel laboratorio di biopsaggio e nel campo 4 ) La formulazione economica dei propagulatori infettivi, 5) lo sviluppo di parametri unici di controllo della qualità per la preparazione virulenta e 6) la bioprogettazione e l'aggiunta di valore.

Protocol

1. Isolamento di funghi entomopatogeni Metodo di diluizione del suolo Raccogliere i campioni di terreno e insetti micotizzati da diversi campi di coltura ( Tabella 1 ). Isolare i funghi entomopatogeni da campioni di terreno utilizzando il metodo di placcatura di diluizione del terreno 8 . Nota: In questo studio sono stati prelevati campioni dal Pune (18 ° 31'13''N; 73 ° 51'24''E) e Buldhana (19 ° 58'36&#39…

Representative Results

Durante le indagini sono stati isolati diversi tipi di Metarhizium, Beauveria e Nomuraea con vari metodi di isolamento (dati non mostrati) 6 , 14 Come i ceppi di Metarhizium sono stati trovati più efficaci nel controllare H. armigera , un terribile parassita negli impulsi 6 , 14 , Ulteriori isolamenti sono stati mirati ad isolare i ceppi di Metarhizium da div…

Discussion

Durante gli anni '80 il primo tentativo è stato quello di utilizzare Metarhizium per controllare il coleottero scarabeo Anisoplia austriaca e la barbabietola da zucchero curculio Cleonis punctiventris 21 . In questo protocollo, uno dei prerequisiti era quello di isolare un ceppo virulente, sia dal suolo che da insetti infetti. Infatti, altri parametri, come LC 50 , LT 50 e ST 50 , hanno contribuito significativamente all'e…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gli autori riconoscono il contributo dei collaboratori della Cooperazione indo-svizzera nel settore delle biotecnologie (ISCB) del Dipartimento di Biotecnologie di Nuova Delhi e dell'Agenzia svizzera per lo sviluppo e la cooperazione, Berna, Svizzera. Sono stati riconosciuti i contributi degli studenti del progetto e del personale coinvolto nello sviluppo del miocoinsettico, tra cui Vandana Ghormade, Pallavi Nahar, Priya Yadav, Shuklangi Kulkarni, Manisha Kapoor, Santosh Chavan, Ravindra Vidhate, Shamala Mane e Abhijeet Lande. L'ECP e l'SGT ringraziano rispettivamente per la borsa di studio della Commissione di Grants Commission dell'India e del Consiglio di ricerca scientifica e industriale (CSIR), India. MVD riconosce il sostegno del Consiglio di ricerca industriale e scientifica, New Delhi, per il programma Emeritus Scientist. Gli autori sono grati al Dipartimento di Biotecnologie, Nuova Delhi, India per il sostegno finanziario nell'ambito dei programmi ISCB e SBIRI. Siamo gratiRecensori per i loro input.

Materials

Agar Hi-Media RM666 Reagent
Ammonium sulphate  Thomas Baker 11645 Reagent
DNA analyzer  Applied biosystem ABI prism 3730   Instrument
DNA islation kit Qiagen 69104 Reagent
Dodine Sigma 45466 Reagent
Gel extraction kit Qiagen 28604 Reagent
Glucose Hi-Media GRM077 Reagent
Knapsac sparyer Kaypee HY-16L (1004) Instrument
Peptone Hi-Media RM006-500G Reagent
Polypropylene vials  Laxbro SV-50 Plasticware
Potato dextrose agar (PDA)  Hi-Media M096-500G Reagent
Tween-80 SRL 28940 Reagent
Ultra low volume sparyer Matabi INSECDISK Instrument
Unicorn-bags  Unicorn UP-140024-SMB Autoclavalbe bag for SSF
Yeast extract Hi-Media RM027-500G Reagent
Chromas 2.1 software

References

  1. Aktar, M. W., Sengupta, D., Chowdhury, A. Impact of pesticides use in agriculture: their benefits and hazards. Interdisciplinary Toxicology. 2 (1), 1-12 (2009).
  2. Dhaliwal, G. S., Jindal, V., Mohindru, B. Crop losses due to insect pests: Global and Indian scenario. Indian J Entomol. 77 (2), 165-168 (2015).
  3. Popp, J., Peto, K., Nagy, J. Pesticide productivity and food security. A review. Agronomy for Sustainable Development. 33 (1), 243-255 (2015).
  4. van Lenteren, J. C., Manzaroli, G., Albajes, R., Gullino, M. L., van Lenteren, J. C., Elad, Y. Evaluation and use of predators and parasitoids for biological control of pests in greenhouses. Integrated pest and disease management in greenhouse crops. , 183-201 (1999).
  5. Charnley, A. K., Collins, S. A., Kubicek, C. P., Druzhinina, I. S. Entomopathogenic fungi and their role in pest control. The Mycota IV: Environmental and Microbial Relationships. , 159-187 (2007).
  6. Deshpande, M. V., MV, D. e. s. h. p. a. n. d. e., et al. Comparative evaluation of indigenous fungal isolates, Metarhizium anisopliae M34412, Beauveria bassiana B3301 and Nomuraea rileyi N812 for the control of Helicoverpa armigera (Hüb.) on pulses. Proceeding of the international workshop on entomopathogenic fungi – a valuable alternative to fight against insect pests. , 51-59 (2004).
  7. Roberts, D. W., Hajek, A. E., Leathan, G. F. Entomopathogenic fungi as bioinsecticides. Frontiers in industrial mycology. , 144-159 (1992).
  8. Goettel, M., Inglis, G. D., Lacey, L. A. . Fungi: Hyphomycetes. Manual of techniques in insect pathology. , 213-245 (1996).
  9. Keller, S., Kessler, P., Schweizer, C. Distribution of insect pathogenic soil fungi in Switzerland with special reference to Beauveria brongniartii and Metharhizium anisopliae. BioControl. 48 (3), 307-319 (2003).
  10. White, T. J., Bruns, T., Lee, S., Taylor, J., Innis, M. A. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. PCR-Protocols: A guide to methods and applications. , 315-322 (1990).
  11. Ignoffo, C. M., Futtler, B., Marston, N. L., Hostetter, D. L., Dickerson, W. A. Seasonal incidence of the entomopathogenic fungus Spicaria rileyi associated with noctuid pests of soybeans. J Invertebr Pathol. 25 (1), 135-137 (1975).
  12. Abbott, W. S. A method for computing the effectiveness of an insecticide. J Econ Entomol. 18 (2), 265-267 (1925).
  13. Nahar, P. . Development of biocontrol agents for the control of pests in agriculture using chitin metabolism as target. , 137 (2004).
  14. Kulkarni, S. A., et al. Comparison of Metarhizium isolates for biocontrol of Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae) in chickpea. Biocontrol Sci Tech. 18 (8), 809-828 (2008).
  15. Jeffs, L. B., Khachatourians, G. G. Estimation of spore hydrophobicity for members of the genera Beauveria, Metarhizium, and Tolypocladium by salt-mediated aggregation and sedimentation. Can J Microbiol. 43 (1), 23-28 (1997).
  16. Henderson, C. F., Tilton, E. W. Tests with acaricides against the brow wheat mite. J Econ Entomol. 48 (2), 157-161 (1955).
  17. Hassani, M. . Development and proving of biocontrol methods based on Bacillus thuringiensis and entamopathogenic fungi against the cotton pests Spodoptera littoralis, Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae) and Aphis gossypii (Homoptera: Aphididae). , (2000).
  18. Enkerli, J., Ghormade, V., Oulevey, C., Widmer, F. PCR-RFLP analysis of chitinase genes enable efficient genotyping of Metarhizium anisopliae var. anisopliae. J Invert Pathol. 102 (2), 185-188 (2009).
  19. Bidochka, M. J., Melzer, M. J. Genetic polymorphism in three subtilisin-like protease isoforms (Pr1A, Pr1B and Pr1C) from Metarhizium strains. Can. J. Microbiol. 46 (12), 1138-1144 (2000).
  20. McCoy, C. W., Samson, R. A., Boucias, D. G., Ignoffo, C. M., Mandava, N. B. Entomogenous fungi. Handbook of natural pesticides, Microbial insecticides, Part A. Entomogenous protozoa and fungi. , 151-236 (1988).
  21. Nahar, P. B., et al. Effect of repeated in vitro sub-culturing on the virulence of Metarhizium anisopliae against Helicoverpa armigera (Lepidoptera Noctuidae). Biocontrol Sci Tech. 18 (4), 337-355 (2008).
  22. Kapoor, M., Deshpande, M. V. Development of mycoinsecticide for the control of insect pests: Issues and challenges in transfer of technology from laboratory to field. Kavaka. 40, 45-56 (2013).
  23. Deshpande, M. V. Mycopesticide Production by Fermentation: Potential and Challenges. Crit Rev Microbiol. 25 (3), 229-243 (1999).

Play Video

Cite This Article
Tupe, S. G., Pathan, E. K., Deshpande, M. V. Development of Metarhizium anisopliae as a Mycoinsecticide: From Isolation to Field Performance. J. Vis. Exp. (125), e55272, doi:10.3791/55272 (2017).

View Video