Summary

Porcina como un módulo de capacitación para la reconstrucción Microvascular de cabeza y cuello

Published: September 29, 2018
doi:

Summary

Aquí presentamos un protocolo para el uso de la aleta de perforador de la arteria epigástrica superior de cerdo como un módulo de aprendizaje para la reconstrucción microvascular de cabeza y cuello.

Abstract

Modelos vivos que se asemejan a las condiciones quirúrgicas de los seres humanos son necesarios para la formación libre-aleta cosecha y anastomosis. Modelos animales para propósitos de capacitación han estado disponibles por años en muchos campos quirúrgicos. Utilizamos la hembra (porque son fáciles de manejar para el procedimiento) Yorkshire cerdos para la reconstrucción de cabeza y cuello por la recolección de los colgajos de perforantes de la arteria epigástrica inferior profunda o la aleta del perforador de la arteria epigástrica superior. El sitio de anastomosis (defecto de la piel del cuello o defecto de la pared traqueal) fue preparado a través de la disección de la arteria carótida común y la vena yugular interna, en que 3,5 × aumento Lupa fue utilizada para la anastomosis como utilizamos en casos humanos en la vida real. Este procedimiento muestra un nuevo método de entrenamiento usando un modelo de aprendizaje confiable y proporciona una detallada anatomía en un escenario vivo. Nos centramos en el tiempo de isquemia, cosecha, anastomosis de vasos y el diseño de la aleta para caber el sitio del defecto. Este modelo mejora el manejo de tejido y con el uso de instrumentos apropiados puede repetirse muchas veces para que el cirujano es plena confianza antes de iniciar la cirugía en seres humanos.

Introduction

Reconstrucción después de la cirugía para las enfermedades malignas de cabeza y cuello es un procedimiento difícil, asociado con una morbilidad significativa. Reconstrucción microvascular de la libre-aleta se ha establecido así como el acercamiento estándar a la reconstrucción de más de 20 años1,2,3. Transferencia de la aleta libre juega un papel importante en la mejora de la gestión de cabeza y cuello en pacientes con cáncer y lesiones poste-traumáticas tal modo empujando los límites de la supresión quirúrgica de la enfermedad más allá de las técnicas anteriores, resultando en mayor paciente calidad de vida y supervivencia más precios1,2,3. El varios colgajos para la reconstrucción incluyen rotación, injerto y libre de las aletas.

Se ha ampliado el papel de los colgajos libres en la reconstrucción de cabeza y cuello. Es la aleta más difícil para trabajar, que requieren manejo especializado y delicado. Fallo del colgajo es un evento catastrófico, con una morbilidad significativa4,5. Por lo tanto, tiempo de entrenamiento considerable es necesaria para desarrollar la precisión necesaria para el éxito de los resultados quirúrgicos3,4,5,6,7,8, 9. La curva de aprendizaje asociada a dicha cirugía puede influir en el resultado para los pacientes y afectan tratamiento gestión3,4,5,6,7, 8,9. Para reducir el tiempo de entrenamiento y aprendizaje para los cirujanos nuevo, un modelo de formación es necesario que imita la biología humana y brinda campo quirúrgico similar condiciones8.

El objetivo de este estudio es mostrar la visibilidad de porcino como un módulo de buen entrenamiento para la reconstrucción microvascular de cabeza y cuello que se asemeja el caso humano con habilidades mejoradas de manera activa.

Este estudio investigó el uso de un modelo porcino para suplen de nuevos compañeros de entrenamiento en la cabeza y el cuello reconstrucción microvascular para la transferencia de la libre-aleta proporcionar un rentable y menos estresante para el entrenamiento de campo clínico con confiablemente similares características para los procedimientos de la libre-aleta. Cerdos se han utilizado para muchos estudios y como modelos para varias reconstrucciones quirúrgicas, por ejemplo, reconstrucción de la mama; 5 sin embargo, los cerdos nunca han sido utilizados para reconstrucción de cabeza y cuello excepto en nuestro estudio para la reconstrucción traqueal debido a estenosis traqueal10.

La idea nació después de Frederic Bodin7, que describen la aleta similar para la reconstrucción de la mama. La ventaja principal para el estudio sobre el otro módulo de formación microvascular es el módulo livening activo con un resultado real inmediato del procedimiento.

Protocol

Este estudio fue dirigido y aprobado por el Departamento de laboratorio Animal recursos, Yonsei Instituto de investigaciones biomédicas, Universidad de Yonsei University College of Medicine, acreditado por la Asociación para la evaluación y acreditación de laboratorio Animal Care Internacional. Este estudio siguió las directrices para el cuidado y uso de animales de laboratorio del Instituto de laboratorio Animal recursos Comisión en Consejo Nacional de investigaciones de Ciencias de la vida. Todos los cerdos se ac…

Representative Results

Realizamos el procedimiento en seis cerdos: reconstrucción del defecto de piel cervical en dos cerdos, dos cerdos y libre de la aleta para probar dispositivos de anastomosis vascular en dos cerdos reconstrucción traqueal. Los cerdos fueron supervisados por 3 meses y no había ningún signo clínico de déficit neurológico. El tiempo medio de isquemia fue de 50 minutos (rango, 35-80 min); el tiempo disminuido como el procedimi…

Discussion

Defectos y morbilidad significativa pueden ocurrir en cabeza y cuello a pacientes malignidad durante el tratamiento quirúrgico. Transferencia de tejido libre microvascular se ha convertido en esencial para la reconstrucción en la mayoría de los casos. La viabilidad de la aleta es una cuestión fundamental, que requiere estabilidad, precisa manipulación del pedículo, sensación táctil, habilidad visuoespacial y excelente flujo operativo del cirujano8. Para desarrollar estas habilidades, se ne…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue financiado y apoyado por el programa de investigación de ciencia básica a través de la nacional investigación Fundación de Corea (NRF) financiado por el Ministerio de ciencia, TIC y planeación de futuro (2015R1C1A1A01051907). Este trabajo también fue apoyado por el programa de investigación de ciencia básica a través de la nacional investigación Fundación de Corea (NRF) financiado por el Ministerio de ciencia, TIC y planeación de futuro (NRF-2016M3A9E9941746).

Materials

Pigs XP Bio, Seoul, South Korea
Surgical Hair Removal shaver 3M
22 gage catheter B.BRAUN
syring with needle size 18 Jung Rim Medical
Intramuscular alfaxan Careside 10ml/VAL
Intramuscularxylazine Bayer
Intramuscular azaperone Sigma-aldrich 34223
Intramuscular atropine Daewon 0.5mg/A
Intramuscular cefazolin Yuhan 1g
intravenous Ketorolac Hana Pharm 30mg
Swine ansthesia mask DRE 1392
endotracheal cuff tube 6.5 mm SMITH medical 100/150/065
ansthesia Machine Dräger PRIMUS IE
2% lidocaine topical solution Taejoon
vet ointment Pfizer terramycinMisc
eye cover patch Innomed S-universal010S
betadine solution 1%. Korea Pharma
gauze 4*4 First Medical 22*30CM 320S
blade No. 23 Paragon 23
lahey retractor V.Mueller SU3960
kelly tissue scissors SOLCO 05-1990
blade No. 11 Paragon 11
surgical marking pen Aspen Surgical Regular #2750
allis V.Mueller SU4055
tie suture Covidein non-needle
3.5× surgical loupe zeiss eyemag smart
double clamp without frame V.Mueller CH7155
microscissors AESCULAP FD038R
Ringer's lactate Daehan 500ml/1bag
amoxicillin–clavulanate Ilsung 0.6g/V
Meloxicam Samil 7.5mg
propofol Dong Kook 120mg/V
intravenous KCl solution Daehan 20ml/50P
mosquito curved SOLCO 013-0111
mosquito straight SOLCO 05-1050
ethilone 10-0 suture ethicone 10/0W1756
Vicryl 3-0. ethicone 3/0W9890
buprenorphine Hanlim 0.3mg

References

  1. Chen, C. L., Zenga, J., Roland, L. T., Pipkorn, P. Complications of double free flap and free flap combined with locoregional flap in head and neck reconstruction: A systematic review. Head & Neck journal of the Science and Specialties of the Head and Neck. 40 (3), 632-646 (2018).
  2. Smith, R. K., Wykes, J., Martin, D. T., Niles, N. Perforator variability in the anterolateral thigh free flap: a systematic review. Surgical and Radiologic Anatomy. 39 (7), 779-789 (2017).
  3. Bauer, F., Koerdt, S., Hölzle, F., Mitchell, D. A., Wolff, K. D. Eight free flaps in 24 hours: a training concept for postgraduate teaching of how to raise microvascular free flaps. British Journal of Oral and Maxillofacial. 54 (1), 35-39 (2016).
  4. Schoeff, S., Hernandez, B., Robinson, D. J., Jameson, M. J., Shonka, D. C. Microvascular Anastomosis Simulation Using a Chicken Thigh Model: Interval Versus Massed Training. The Laryngoscope. 127 (11), 2490-2494 (2017).
  5. Bodin, F., Diana, M., Koutsomanis, A., Robert, E., Marescaux, J., Bruant-Rodier, C. Porcine model for free-flap breast reconstruction training. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 68 (10), 1402-1409 (2015).
  6. Rodriguez, J. R., Yañez, R., Cifuentes, I., Varas, J., Dagnino, B. Microsurgery Workout: A Novel Simulation Training Curriculum Based on Nonliving Models. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 138 (4), 739e-747e (2016).
  7. Carey, J. N., et al. Simulation of plastic surgery and microvascular procedures using perfused fresh human cadavers. Plastic and Reconstructive Surgery journal. 67 (2), e42-e48 (2014).
  8. Chan, W., Niranjan, N., Ramakrishnan, V. Structured assessment of microsurgery skills in the clinical setting. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 63 (8), 1329-1334 (2010).
  9. Matsumura, N. A newly designed training tool for microvascular anastomosis techniques: Microvascular Practice Card. Surgical Neurology Journal. 71 (5), 616-620 (2010).
  10. Kim, W. S., et al. Tracheal reconstruction with a free vascularized myofascial flap: preclinical investigation in a porcine model to human clinical application. Scientific Reports. 7 (1), 10022 (2017).
check_url/kr/58104?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Alessa, M. A., Kwak, S. H., Lee, Y. W., Kang, M., Sung, H., Ahn, S. H., Choi, E. C., Kim, W. S. Porcine As a Training Module for Head and Neck Microvascular Reconstruction. J. Vis. Exp. (139), e58104, doi:10.3791/58104 (2018).

View Video