Summary

نموذج الماوس لالتهاب البنكرياس المزمن عن طريق ضخ القناة الصفراوية TNBS

Published: February 28, 2021
doi:

Summary

التهاب البنكرياس المزمن (CP) هو مرض يتميز بالتهاب وتليف البنكرياس ، وغالبا ما يرتبط بألم البطن المستعصي. تركز هذه المقالة على صقل هذه التقنية لتوليد نموذج الماوس من CP عن طريق ضخ القناة الصفراوية مع 2,4,6 -حمض الكبريتونيك trinitrobenzene (TNBS).

Abstract

التهاب البنكرياس المزمن (CP) هو مرض معقد ينطوي على التهاب البنكرياس والتليف، وضمور غدي، وآلام في البطن وأعراض أخرى. وقد تم تطوير العديد من نماذج القوارض لدراسة CP، منها القناة الصفراوية 2،4،6 -ترينيتروبنزين حمض الكبريتيك (TNBS) نموذج التسريب يكرر ملامح الألم العصبي ينظر في CP. ومع ذلك ، فإن ضخ المخدرات القناة الصفراوية في الفئران يشكل تحديا من الناحية الفنية. يوضح هذا البروتوكول إجراء ضخ TNBS القناة الصفراوية لتوليد نموذج الماوس CP. تم غرس TNBS في البنكرياس من خلال أمبولة فاتر في الاثني عشر. هذا البروتوكول الأمثل حجم الدواء والتقنيات الجراحية، والتعامل مع المخدرات أثناء الإجراء. أظهرت الفئران المعالجة TNBS ملامح CP كما ينعكس من خلال انخفاض وزن الجسم والبنكرياس، والتغيرات في السلوكيات المرتبطة بالألم، ومورفولوجيا البنكرياس غير طبيعية. مع هذه التحسينات، كانت الوفيات المرتبطة بحقن TNBS ضئيلة. هذا الإجراء ليس فقط حاسمة في توليد نماذج أمراض البنكرياس ولكن أيضا مفيدة في تسليم المخدرات البنكرياس المحلية.

Introduction

التهاب البنكرياس المزمن (CP) هو مرض التهابي مزمن يتميز بضمور البنكرياس والتليف وآلام البطن وفقدان وظائف الغدد الصماء والغدد الصماء في نهاية المطاف1. العلاجات الطبية والجراحية الحالية ليست علاجية ولكن يتم إجراؤها لتخفيف الأعراض التي هي نتيجة للمرض: آلام البطن الانكسارية، الغدد الصماء والخلل في الغدد الصماء. لذلك ، هناك حاجة ماسة إلى علاجات أكثر فعالية2. نماذج الحيوان توفر أداة أساسية لتطوير فهم أفضل للمرض والتحقيق في العلاجات المحتملة3. وقد وضعت نماذج الماوس متعددة لCP، والتي تستخدم عادة cerulein و / أو نماذج الكحول. Cerulein, أوليغوبتيد تحفيز إفراز البنكرياس, وقد ثبت أن استنساخ حث نموذج CP يضم ضمور البنكرياس, تليف, من بين أمور أخرى4. نموذج شائع آخر يستخدم الحقن التسلسلية من ارجينين, التي تنتج قصور الغدد الصماء مماثلة لتلك التي لوحظت في المرضى الإنسان5. CP يمكن أيضا أن يكون الناجم عن ربط قناة البنكرياس كاملة أو جزئية, وكذلك ارتفاع ضغط الدم قناة البنكرياس6,7. على الرغم من تنوع النماذج الحيوانية المتاحة ل CP، لا أحد من هذه النماذج يستنسخ بشكل فعال آلام البطن التي يعاني منها المرضى CP8.

وأظهرت الدراسات السابقة أن حقن البنكرياس المحلية من 2,4,6 -ترينيتروبنزين حمض الكبريتونيك (TNBS) يكرر الألم المستمر التي يعاني منها المرضى CP9,10,11. أظهرت الفئران المعالجة TNBS فرط الحساسية في البطن وزيادة السلوكيات المتعلقة بالألم وكذلك “فرط الحساسية المعمم” للمحفزات المؤلمة ، وهي ظاهرة لوحظت في مرضى CP10. بالإضافة إلى محاكاة الألم CP بدقة ، فإن نموذج TNBS يكرر أيضا السمات المرضية الأخرى للحالة البشرية مثل التليف ، تسلل الخلايا أحادية النووية ، واستبدال الخلايا الأسينارية بالأنسجة الدهنية10،12. ومع ذلك ، فإن ضخ TNBS عبر القناة الصفراوية هو إجراء صعب تقنيا في الفئران التي قد تسبب الوفاة. على حد علمنا، لا يوجد بروتوكول بصري لإظهار كيفية إجراء ضخ القناة الصفراوية. في هذه المقالة، ونحن نظهر الإجراء من ضخ الصفراء duction من TNBS لتوليد نموذج الماوس CP. هذا الإجراء سوف يساعد على توليد نماذج حيوانية قيمة لدراسة CP وأمراض البنكرياس الأخرى ويمكن استخدامها لبث مواد أخرى (مثل الفيروس والخلايا) في البنكرياس13.

Protocol

وقد أجريت جميع الإجراءات بموافقة اللجان المؤسسية لرعاية الحيوانات واستخدامها في الجامعة الطبية في كارولينا الجنوبية ومركز رالف جونسون الطبي. تم استخدام الفئران الذكور C57BL/6J بين 8-10 أسابيع من العمر في هذه الدراسة. تم إيواء الفئران تحت دورة داكنة قياسية 12 ضوء / 12 مع libitumaccess الإعلانية إلى الطع…

Representative Results

تم تحسين إجراءات ضخ القناة الصفراوية للحد من وفيات الفئران المرتبطة بهذا الإجراء10. تم إعطاء TNBS لأول مرة في حجم إجمالي قدره 35 ميكرولتر أو 50 ميكرولتر. حقن TNBS في حجم 50 ميكرولتر يمكن أن تصل إلى البنكرياس كله والحث على النمط الظاهري مرض أكثر تجانسا (الشكل 1B). بالإضاف?…

Discussion

ضخ القناة الصفراوية من TNBS للحث على التهاب البنكرياس المزمن يشكل تحديا من الناحية الفنية في الفئران، كما يمكن أن يموت ما يصل إلى 22.5٪ من الفئران في غضون 3-4 أيام من ضخ المخدرات10. هنا، قام هذا التقرير بتنقيح الإجراء استنادا إلى دراسات سابقة وخفض معدل وفيات الفئران المبكرة إلى 10٪ <. …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

تم دعم هذه الدراسة من قبل وزارة شؤون المحاربين القدامى (VA-ORD BLR&amp.D Merit I01BX004536)، والمعهد الوطني للصحة منح # 1R01DK105183، DK120394، وDK118529 إلى HW. نشكر الدكتور هونغجو وو على مشاركة الخبرة التقنية.

Materials

10% Neutral buffered formalin v/v Fisher Scientific 23426796
Alcohol prep pads, sterile Fisher Scientific 22-363-750
Animal Anesthesia system VetEquip, Inc. 901806
Buprenorphine hydrochloride, injection Par Sterile Products, LLC NDC 42023-179-05
Centrifuge tubes, 15 mL Fisher Scientific 0553859A
Ethanol, absolute (200 proof), molecular biology grade Fisher Scientific BP2818500
Extra fine Micro Dissecting scissors 4” straight sharp Roboz Surgical Instrument Co. RS-5882
Graefe forceps 4” extra delicate tip Roboz Surgical Instrument Co. RS-5136
Heated pad Amazon B07HMKMBKM
Hegar-Baumgartner Needle Holder 5.25” Roboz Surgical Instrument Co. RS-7850
Insulin syringe with 31-gauge needle BD 324909
Iodine prep pads Fisher Scientific 19-027048
Isoflurane Piramal Critical Care NDC 66794-017-25
Micro clip applying forceps 5.5” Roboz Surgical Instrument Co. RS-5410
Micro clip, straight strong curved 1x6mm Roboz Surgical Instrument Co. RS-5433
Micro clip, straight, 0.75mm clip width Roboz Surgical Instrument Co. RS-5420
Picrylsulfonic acid solution, TNBS, 1M in H2O Millipore Sigma 92822-1ML
Polypropylene Suture 4-0 Med-Vet International MV-8683
Polypropylene Suture 5-0 Med-Vet International MV-8661
Sodium chloride, 0.9% intravenous solution VWR 2B1322Q
Surgical drape, sterile Med-Vet International DR1826
Tissue Cassette Fisher Scientific 22-272416
Von Frey filaments Bioseb EB2-VFF

References

  1. Klauss, S., et al. Genetically induced vs. classical animal models of chronic pancreatitis: a critical comparison. The Federation of American Societies for Experimental Biology Journal. 32, 5778-5792 (2018).
  2. Liao, Y. H., et al. Histone deacetylase 2 is involved in µ-opioid receptor suppression in the spinal dorsal horn in a rat model of chronic pancreatitis pain. Molecular Medicine Reports. 17 (2), 2803-2810 (2018).
  3. Gui, F., et al. Trypsin activity governs increased susceptibility to pancreatitis in mice expressing human PRSS1R122H. The Journal of Clinical Investigation. 130 (1), 189-202 (2020).
  4. Sun, Z., et al. Adipose Stem Cell Therapy Mitigates Chronic Pancreatitis via Differentiation into Acinar-like Cells in Mice. Molecular Therapy. 25 (11), 2490-2501 (2017).
  5. Aghdassi, A. A., et al. Animal models for investigating chronic pancreatitis. Fibrogenesis and Tissue Repair. 4 (1), 26 (2011).
  6. Scoggins, C. R., et al. p53-dependent acinar cell apoptosis triggers epithelial proliferation in duct-ligated murine pancreas. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 279 (4), 827-836 (2000).
  7. Bradley, E. L. Pancreatic duct pressure in chronic pancreatitis. The American Journal of Surgery. 144 (3), 313-316 (1982).
  8. Zhao, J. B., Liao, D. H., Nissen, T. D. Animal models of pancreatitis: can it be translated to human pain study. World Journal of Gastroenterology. 19 (42), 7222-7230 (2013).
  9. Winston, J. H., He, Z. J., Shenoy, M., Xiao, S. Y., Pasricha, P. J. Molecular and behavioral changes in nociception in a novel rat model of chronic pancreatitis for the study of pain. Pain. 117 (1-2), 214-222 (2005).
  10. Cattaruzza, F., et al. Transient receptor potential ankyrin 1 mediates chronic pancreatitis pain in mice. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 304 (11), 1002-1012 (2013).
  11. Bai, Y., et al. Anterior insular cortex mediates hyperalgesia induced by chronic pancreatitis in rats. Molecular Brain. 12 (1), 76 (2019).
  12. Puig-Diví, V., et al. Induction of chronic pancreatic disease by trinitrobenzene sulfonic acid infusion into rat pancreatic ducts. Pancreas. 13 (4), 417-424 (1996).
  13. Zhang, Y., et al. PAX4 Gene Transfer Induces alpha-to-beta Cell Phenotypic Conversion and Confers Therapeutic Benefits for Diabetes Treatment. Molecular Therapy. 24 (2), 251-260 (2016).
  14. Ceppa, E. P., et al. Serine proteases mediate inflammatory pain in acute pancreatitis. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 300 (6), 1033-1042 (2011).
  15. Puig-Divi, V., et al. Induction of chronic pancreatic disease by trinitrobenzene sulfonic acid infusion into rat pancreatic ducts. Pancreas. 13 (4), 417-424 (1996).
  16. Xu, G. Y., Winston, J. H., Shenoy, M., Yin, H., Pasricha, P. J. Enhanced excitability and suppression of A-type K+ current of pancreas-specific afferent neurons in a rat model of chronic pancreatitis. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 291 (3), 424-431 (2006).
  17. Drewes, A. M., et al. Pain in chronic pancreatitis: the role of neuropathic pain mechanisms. Gut. 57 (11), 1616-1627 (2008).
check_url/kr/62080?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Gou, W., Swaby, L., Wolfe, A. M., Lancaster, W. P., Morgan, K. A., Wang, H. A Mouse Model for Chronic Pancreatitis via Bile Duct TNBS Infusion. J. Vis. Exp. (168), e62080, doi:10.3791/62080 (2021).

View Video