Summary

Мышиная модель хронического панкреатита с помощью инфузии TNBS желчных протоков

Published: February 28, 2021
doi:

Summary

Хронический панкреатит (ХП) – это заболевание, характеризующееся воспалением и фиброзом поджелудочной железы, часто связанное с трудноизлечимыми болями в животе. Эта статья посвящена совершенствованию метода генерации мышиной модели CP с помощью инфузии желчных протоков с 2,4,6-тринитробензолсульфоновой кислотой (TNBS).

Abstract

Хронический панкреатит (ХП) является сложным заболеванием, включающим воспаление и фиброз поджелудочной железы, атрофию желез, боль в животе и другие симптомы. Для изучения ДЦП было разработано несколько моделей грызунов, из которых инфузионная модель желчного протока 2,4,6-тринитробензоловой сульфоновой кислоты (TNBS) воспроизводит особенности невропатичной боли, наблюдаемой при ДЦП. Тем не менее, инфузия препарата желчных протоков у мышей технически сложна. Данный протокол демонстрирует процедуру инфузии TNBS желчных протоков для генерации модели мыши CP. TNBS вливали в поджелудочную железу через ампулу Фатера в двенадцатиперстной кишки. Этот протокол оптимизировал объем препарата, хирургические методы и обращение с лекарствами во время процедуры. Мыши, получаемые TNBS, показали особенности CP, отраженные в снижении массы тела и веса поджелудочной железы, изменениях в поведении, связанном с болью, и аномальной морфологии поджелудочной железы. С этими улучшениями смертность, связанная с инъекцией TNBS, была минимальной. Эта процедура не только имеет решающее значение для создания моделей заболеваний поджелудочной железы, но также полезна для местной доставки лекарств поджелудочной железе.

Introduction

Хронический панкреатит (ХП) является хроническим воспалительным заболеванием, характеризующимся атрофией поджелудочной железы, фиброзом, болью в животе и возможной потерей как экзокринных, так и эндокринных функций1. Современные медицинские и хирургические методы лечения не являются лечебными, но предпринимаются для облегчения симптомов, которые являются следствием заболевания: рефрактерная боль в животе, эндокринная и экзокриновая дисфункция. Поэтому срочно необходимы более эффективные методылечения 2. Животные модели обеспечивают важный инструмент для развития лучшего понимания заболевания и исследования потенциальных терапевтических средств3. Было разработано несколько моделей мышей для CP, из которых обычно используются модели церулеина и / или алкоголя. Было показано, что церулеин, олигопептидно-стимулирующий секрецию поджелудочной железы, воспроизводимо индуцирует модель CP с атрофией поджелудочной железы, фиброзом, среди прочих4. Другая распространенная модель использует серийные инъекции L-аргинина, который вызывает экзокриновую недостаточность, аналогичную той, которая наблюдается у пациентов с человеческим5. ДЦП также может быть индуцирована полным или частичным лигированием протоков поджелудочной железы, а также гипертонией протоков поджелудочной железы6,7. Несмотря на разнообразие животных моделей, доступных для ДЦП, ни одна из этих моделей эффективно не воспроизводит боль в животе, испытываемую пациентами сДЦП 8.

Предыдущие исследования показали, что местная инъекция поджелудочной железы 2,4,6-тринитробензолсульфоновой кислоты (ТНБС) воспроизводит постоянную боль, испытываемую пациентами сДЦП 9,10,11. Мыши, получавших TNBS, продемонстрировали абдоминальную гиперчувствительность и повышенное поведение, связанное с болью, а также «генерализованную гиперчувствительность» к болевым раздражителям, явление, которое наблюдалось у пациентов с ДЦП10. В дополнение к точному имитированию боли CP, модель TNBS также воспроизводит другие патологические особенности состояния человека, такие как фиброз, инфильтрация мононуклеарных клеток и замена ацинарных клеток жировойтканью 10,12. Тем не менее, инфузия TNBS через желчный проток является технически сложной процедурой у мышей, которая может привести к смерти. Насколько нам известно, не существует визуального протокола, чтобы показать, как выполняется инфузия желчных протоков. В этой статье мы продемонстрируем процедуру инфузии желчи TNBS для генерации модели мыши CP. Эта процедура поможет создать ценные животные модели для изучения ДЦП и других заболеваний поджелудочной железы и может быть использована для влития других материалов (например, вируса, клеток) в поджелудочную железу13.

Protocol

Все процедуры были проведены с одобрения институциональных комитетов по уходу за животными и их использованию в Медицинском университете Южной Каролины и Медицинском центре Ральфа Х. Джонсона. В этом исследовании использовались самцы мышей C57BL/6J в возрасте от 8 до 10 недель. Мышей разме?…

Representative Results

Процедуры инфузии желчных протоков были оптимизированы для снижения смертности мышей, связанной с этой процедурой10. TNBS впервые давали в общем объеме 35 мкл или 50 мкл. Инъекция ТНБС в объеме 50 мкл может достичь всей поджелудочной железы и вызвать более однородный фенотип заб…

Discussion

Инфузия желчных протоков TNBS для индуцирования хронического панкреатита технически сложна у мышей, так как до 22,5% мышей могут умереть в течение 3-4 дней после инфузии препарата10. Здесь этот отчет уточнил процедуру, основанную на предыдущих исследованиях, и снизил раннюю смер…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Это исследование было поддержано Департаментом по делам ветеранов (VA-ORD BLR & D Merit I01BX004536) и грантами Национального института здравоохранения No 1R01DK105183, DK120394 и DK118529 для HW. Мы благодарим д-ра Хунджу Ву за обмен техническим опытом.

Materials

10% Neutral buffered formalin v/v Fisher Scientific 23426796
Alcohol prep pads, sterile Fisher Scientific 22-363-750
Animal Anesthesia system VetEquip, Inc. 901806
Buprenorphine hydrochloride, injection Par Sterile Products, LLC NDC 42023-179-05
Centrifuge tubes, 15 mL Fisher Scientific 0553859A
Ethanol, absolute (200 proof), molecular biology grade Fisher Scientific BP2818500
Extra fine Micro Dissecting scissors 4” straight sharp Roboz Surgical Instrument Co. RS-5882
Graefe forceps 4” extra delicate tip Roboz Surgical Instrument Co. RS-5136
Heated pad Amazon B07HMKMBKM
Hegar-Baumgartner Needle Holder 5.25” Roboz Surgical Instrument Co. RS-7850
Insulin syringe with 31-gauge needle BD 324909
Iodine prep pads Fisher Scientific 19-027048
Isoflurane Piramal Critical Care NDC 66794-017-25
Micro clip applying forceps 5.5” Roboz Surgical Instrument Co. RS-5410
Micro clip, straight strong curved 1x6mm Roboz Surgical Instrument Co. RS-5433
Micro clip, straight, 0.75mm clip width Roboz Surgical Instrument Co. RS-5420
Picrylsulfonic acid solution, TNBS, 1M in H2O Millipore Sigma 92822-1ML
Polypropylene Suture 4-0 Med-Vet International MV-8683
Polypropylene Suture 5-0 Med-Vet International MV-8661
Sodium chloride, 0.9% intravenous solution VWR 2B1322Q
Surgical drape, sterile Med-Vet International DR1826
Tissue Cassette Fisher Scientific 22-272416
Von Frey filaments Bioseb EB2-VFF

References

  1. Klauss, S., et al. Genetically induced vs. classical animal models of chronic pancreatitis: a critical comparison. The Federation of American Societies for Experimental Biology Journal. 32, 5778-5792 (2018).
  2. Liao, Y. H., et al. Histone deacetylase 2 is involved in µ-opioid receptor suppression in the spinal dorsal horn in a rat model of chronic pancreatitis pain. Molecular Medicine Reports. 17 (2), 2803-2810 (2018).
  3. Gui, F., et al. Trypsin activity governs increased susceptibility to pancreatitis in mice expressing human PRSS1R122H. The Journal of Clinical Investigation. 130 (1), 189-202 (2020).
  4. Sun, Z., et al. Adipose Stem Cell Therapy Mitigates Chronic Pancreatitis via Differentiation into Acinar-like Cells in Mice. Molecular Therapy. 25 (11), 2490-2501 (2017).
  5. Aghdassi, A. A., et al. Animal models for investigating chronic pancreatitis. Fibrogenesis and Tissue Repair. 4 (1), 26 (2011).
  6. Scoggins, C. R., et al. p53-dependent acinar cell apoptosis triggers epithelial proliferation in duct-ligated murine pancreas. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 279 (4), 827-836 (2000).
  7. Bradley, E. L. Pancreatic duct pressure in chronic pancreatitis. The American Journal of Surgery. 144 (3), 313-316 (1982).
  8. Zhao, J. B., Liao, D. H., Nissen, T. D. Animal models of pancreatitis: can it be translated to human pain study. World Journal of Gastroenterology. 19 (42), 7222-7230 (2013).
  9. Winston, J. H., He, Z. J., Shenoy, M., Xiao, S. Y., Pasricha, P. J. Molecular and behavioral changes in nociception in a novel rat model of chronic pancreatitis for the study of pain. Pain. 117 (1-2), 214-222 (2005).
  10. Cattaruzza, F., et al. Transient receptor potential ankyrin 1 mediates chronic pancreatitis pain in mice. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 304 (11), 1002-1012 (2013).
  11. Bai, Y., et al. Anterior insular cortex mediates hyperalgesia induced by chronic pancreatitis in rats. Molecular Brain. 12 (1), 76 (2019).
  12. Puig-Diví, V., et al. Induction of chronic pancreatic disease by trinitrobenzene sulfonic acid infusion into rat pancreatic ducts. Pancreas. 13 (4), 417-424 (1996).
  13. Zhang, Y., et al. PAX4 Gene Transfer Induces alpha-to-beta Cell Phenotypic Conversion and Confers Therapeutic Benefits for Diabetes Treatment. Molecular Therapy. 24 (2), 251-260 (2016).
  14. Ceppa, E. P., et al. Serine proteases mediate inflammatory pain in acute pancreatitis. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 300 (6), 1033-1042 (2011).
  15. Puig-Divi, V., et al. Induction of chronic pancreatic disease by trinitrobenzene sulfonic acid infusion into rat pancreatic ducts. Pancreas. 13 (4), 417-424 (1996).
  16. Xu, G. Y., Winston, J. H., Shenoy, M., Yin, H., Pasricha, P. J. Enhanced excitability and suppression of A-type K+ current of pancreas-specific afferent neurons in a rat model of chronic pancreatitis. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 291 (3), 424-431 (2006).
  17. Drewes, A. M., et al. Pain in chronic pancreatitis: the role of neuropathic pain mechanisms. Gut. 57 (11), 1616-1627 (2008).
check_url/kr/62080?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Gou, W., Swaby, L., Wolfe, A. M., Lancaster, W. P., Morgan, K. A., Wang, H. A Mouse Model for Chronic Pancreatitis via Bile Duct TNBS Infusion. J. Vis. Exp. (168), e62080, doi:10.3791/62080 (2021).

View Video