Summary

Etablering og genetisk manipulering av murin hepatocytt organoider

Published: February 12, 2022
doi:

Summary

Et langsiktig ex vitro 3D organoid kultursystem ble etablert fra musen hepatocytter. Disse organoidene kan passeres og genetisk manipuleres ved lentivirusinfeksjon av shRNA / ektopisk konstruksjon, siRNA-transfeksjon og CRISPR-Cas9-ingeniørarbeid.

Abstract

Leveren er det største organet i pattedyr. Det spiller en viktig rolle i glukoselagring, proteinsekresjon, metabolisme og avgiftning. Som eksekutor for de fleste leverfunksjonene har primære hepatocytter begrenset spredningskapasitet. Dette krever etablering av ex vivo hepatocyte ekspansjonsmodeller for leverfysiologisk og patologisk forskning. Her isolerte vi murine hepatocytter med to trinn collagenase perfusjon og etablerte en 3D organoid kultur som “mini-leveren” for å rekapitulere cellecelleinteraksjoner og fysiske funksjoner. Organoidene består av heterogene cellepopulasjoner, inkludert forfedre og modne hepatocytter. Vi introduserer prosessen i detalj for å isolere og kultur murine hepatocytter eller føtal hepatocytt for å danne organoider innen 2-3 uker og vise hvordan du passerer dem ved mekanisk pipettering opp og ned. I tillegg vil vi også introdusere hvordan du fordøyer organoidene i enkeltceller for lentivirusinfeksjon av shRNA / ektopisk konstruksjon, siRNA-transfeksjon og CRISPR-Cas9-ingeniørarbeid. Organoidene kan brukes til legemiddelskjermer, sykdomsmodellering og grunnleggende leverforskning ved modellering av leverbiologi og patobiologi.

Introduction

Organoider er selvorganiserte, tredimensjonale (3D) in vitro-klynger som inkluderer selvfornyende stamceller og flerlinjede differensierte celler1,2. Organoidene i mange organer har blitt etablert enten fra pluripotente eller voksne stamceller av veldefinerte nisjefaktorer, inkludert tarmen, hjernen, tykktarmen, nyrene, leveren, bukspyttkjertelen, skjoldbruskkjertelen, magen, huden og lungen3,4,5,6,7 . Organoidene rekapitulerer fysiske cellefunksjoner ved å etterligne enten utvikling (stammer fra embryonale eller induserte pluripotente stamceller, PSCer) eller homeostase/regenereringsprogresjon (stammer fra voksne stamceller, ASC), som åpner nye veier i sykdomsforskning og terapi8,9.

Som det største organet i pattedyr er leveren hovedsakelig ansvarlig for lagring, metabolisme og avgiftning. To typer epitelceller, hepatocytter og cholangiocytter, konstruerer den grunnleggende enheten av en leverlobul. Hepatocytter er ansvarlige for 70-80% leverfunksjon10. Selv om leveren har bemerkelsesverdig regenereringskapasitet, skjer raskt tap av hepatocyttfunksjoner under tradisjonell monolayerkultur ved dysregulert cellepolarisering og dedifferentiasjon, noe som øker behovet for forskere og klinikere for å bygge “gap-brobygging” levermodeller i en tallerken. Inntil nylig hadde imidlertid ex vivo-utvidelsesmodellene fra primære hepatocytter ikke blitt godt etablert11,12,13,14,15. Leverorganoider kan etableres fra embryonale/induserte pluripotente stamceller, fibroblastkonvertering til hepatocyttlignende celler og vevsavledede celler. Utviklingen av leverorganoider øker anvendelsen av en in vitro-modell for legemiddelskjermer og levertoksisitetsanalyser16,17.

Her beskriver vi en detaljert protokoll for etablering av leverorganoider fra murin primære hepatocytter. Ved å bruke denne protokollen setter vi opp et in vitro kultursystem av hepatocytt organoider med to perfusjoner av kollagenalus. Disse organoidene kan passeres for langsiktig ekspansjon i flere måneder. Deres fysiologiske funksjon er svært konsistent med hepatocytter. Videre gir vi også en detaljert beskrivelse av hvordan man utfører genetisk manipulasjon, for eksempel lentivirusinfeksjon, siRNA-transduksjon og CRISPR-Cas9-ingeniørarbeid ved hjelp av organoider. Forplantningen av hepatocyttorganoider kaster lys over muligheten for å bruke organoider for å forstå leverbiologi og utvikle personlige og translasjonelle medisintilnærminger.

Protocol

Alle museeksperimenter ble godkjent av Dyrepleie- og brukskomiteen ved School of Basic Medical Sciences ved Shandong University og ble utført i henhold til lisensen i henhold til hjemmekontor retningslinjer og forskrifter (Nei. ECSBMSSDU2019-2-079). MERK: Denne protokollen brukes hovedsakelig til å dyrke 3D-organoider fra isolerte primære hepatocytter. 1. Etablering av Murine Hepatocyte Organoid Culture MERK: Ekstracellulær matrise som …

Representative Results

Hepatocytt organoider fra kvinnelige Alb-Cre; Rosa26-GFP-mus (8 uker) ble observert fem dager etter sådd (figur 1A). Organoidene sprer seg med Ki67 positiv farging (figur 1B). Forstyrrende uttrykk for representative gener i hepatocyttorganoider enten ved siRNA-transfeksjon eller lentivirusinfeksjon ble undersøkt av qRT-PCR og vestlig blot. Resultatene er vist i figur 2A og 2B. Figur 2C</strong…

Discussion

Evnen til å dyrke modne hepatocytter over lange perioder er grunnleggende for å studere leverens grunnleggende vitenskap, narkotikatoksikologi og hepatotrope vertsmikrobiologiske infeksjoner som malaria og hepatittvirus. Med en veldefinert nisje setter protokollen her opp et kultursystem for hepatocytter. Denne protokollen driver modne hepatocytter til å ekspandere i 3D-kultur med en heterogenitet som rekapitulerer cellecelleinteraksjon, de fleste hepatocyttfunksjon og genetiske modifikasjoner, slik at utformingen av …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker professor Hans Clevers for vennlig å gi cellelinjene for å produsere rekombinant R-spondin1. Dette arbeidet ble støttet av bevilgningene fra National Key R&D Program of China (2019YFA0111400), National Natural Science Foundation of China (31970779) til H.H., og Funds for Youth Interdisciplinary and Innovation Research Group of Shandong University (2020QNQT003) til H.H.

Materials

Perfusion Buffer
EGTA Sangon Bitech A600077-0100 3.50 g/L
Glucose Sangon Bitech A100188-0500 9.00 g/L
KCl Sangon Bitech A100395-0500 4.00 g/L
Na2HPO4·12H2O Sangon Bitech A501727-0500 1.51 g/L
NaCl Sangon Bitech A501218-0001 80.0 g/L
NaH2PO4·2H2O Sangon Bitech A610404-0500 0.78 g/L
NaHCO3 Sangon Bitech A500873-0500 3.50 g/L
Phenol Red Sangon Bitech A100882-0025 0.06 g/L
Digestion Buffer
CaCl2 Sangon Bitech A501330-0005 0.50 M
Collagenase IV Sigma C1639 0.10 mg/mL
HEPES Sangon Bitech C621110-0010 23.80 g/L
KCl Sangon Bitech A100395-0500 4.00 g/L
Na2HPO4·12H2O Sangon Bitech A501727-0500 1.51 g/L
NaCl Sangon Bitech A501218-0001 80.0 g/L
NaH2PO4·2H2O Sangon Bitech A610404-0500 0.78 g/L
NaHCO3 Sangon Bitech A500873-0500 3.50 g/L
Tip-wash Buffer
Fetal Bovine Serum Gibco 10091148 stored at 4 °C
DPBS Gibco C14190500BT0 stored at 4 °C
Wash Medium
Advanced DMEM/F12 Invitrogen 12634-010 stored at 4 °C
GlutaMAX Gibco 35050-061 100 X
HEPES Gibco 15630-080 100 X
Penicillin/streptomycin Sangon Bitech  A600135-0025 100 X
Culture Medium
A83-01 Tocris 2939 Stock concentration 500 µM, final
concentration 2 µM
Advanced DMEM/F12 Invitrogen 12634-010 stored at 4 °C
B-27 supplement 50x, minus vitamin A Gibco 1704-044 50 X
Chir 99021 Tocris 4423 Stock concentration 30 mM, final
concentration 3 µM
DMEM/F12 Gibco 11330032 stored at 4 °C
Gastrin I Tocris 3006 Stock concentration 100 mM, final
concentration 10 nM
GlutaMAX Gibco 35050-061 100 X
HEPES Gibco 15630-080 100 X
Matrigel martix BD 356231 stored at -20 °C
N-acetylcysteine Sigma Aldrich A9165 Stock concentration 500 mM, final
concentration 1 mM
Nictinamide Sigma Aldrich N0636 Stock concentration 1 M, final concentration 3 mM
Penicillin/streptomycin Sangon Bitech  A600135-0025 100 X
Recombinant human EGF Peprotech AF-100-15 Stock concentration 100 µg/ml,final concentration 50 ng/ml
Recombinant human FGF10 Peprotech 100-26 Stock concentration 100 µg/ml, final concentration 100 ng/ml
Recombinant human HGF Peprotech 100-39 Stock concentration 100 µg/ml, final concentration 25 ng/ml
Recombinant Human TGF-α Peprotech 100-16A Stock concentration 100 µg/ml, final concentration 100 ng/ml
Recombinant Human TNF-α Origene TP750007-1000 Stock concentration 100 µg/ml, final concentration 100 ng/ml
Rho kinase inhibitor Y-27632 Abmole Bioscience Y-27632 dihydrochloride Stock concentration 10 mM, final concentration 10 µM
Rspondin-1conditioned medium Stable cell line generated in the Hu Lab. Final concentration 15%.
Others
0.22 µm filter Millipore SCGPT01RE
16 # silicone tube LangerPump
24 well, suspension Greiner bio-one GN662102-100EA
37 °C Water Bath
70 µm filter BD 352350
Accutase stemcell AT-104 stored at 4 °C
Anti-CTNNB1 BD 610154 Mouse
Anti-GAPDH CST 5174S Rabbit
Anti-HDAC7 Abcam ab50212 Mouse
Anti-KI67 Abcam ab15580 Rabbit
Biological safety cabinet ESCO CCL-170B-8
Cell Recovery Solution Corning 354253 stored at 4 °C
Centrifuge 5430 eppendorf 542700097
CO2 incubator ESCO AC2-4S1
DMSO Sangon Bitech  A100231 stored at RT
EVOS FL Color Imaging Systems Invitrogen AME4300
Hdac3 siRNA Guangzhou RiboBio Co., Ltd. siG2003180909192555 stored at -20 °C
Hdac7 lentivirus ShanghaiGenePharmaCo.,Ltd LV2020-2364 stored at -80 °C
Hitrans G A Shanghai Genechem Co.,Ltd. REVG004 Increased virus infection efficiency
Image Pro Plus software Media Cybernetics, Bethesda, MD, USA version 6.0
Lipofectamin RNAiMAX Transfection Reagent Invitrogen 13778150 Increased virus infection efficiency
Live cell dye Luna F23001 stored at 4 °C
Low-speed desktop centrifuge cence TD5A-WS/TD5AWS
Nucleofactor-α 2b Device Lonza
Opti-MEM Gibco 31985070 stored at 4 °C
Pasteur pipette Sangon Bitech F621006-0001
Peristaltic pump LangerPump BT100-2J
PVDF membrane Millipore IPVH00010 Activate with methanol
PX458 Addgene 48138 stored at -80 °C
Refrigerated centrifuge Thermo Scientific Heraeus Labofuge 400
RSL3 MCE HY-100218A Stock concentration 10 mM, final concentration 4 µM
Trypsin/EDTA Gibico 25200072 stored at 4 °C
Wee1 siRNA Guangzhou RiboBio Co., Ltd. siG2003180909205971 stored at -20 °C

References

  1. Lancaster, M. A., Knoblich, J. A. Organogenesis in a dish: modeling development and disease using organoid technologies. Science. 345 (6194), 124-125 (2014).
  2. Sasai, Y. Next-generation regenerative medicine: organogenesis from stem cells in 3D culture. Cell Stem Cell. 12 (5), 520-530 (2013).
  3. Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 459 (7244), 262-265 (2009).
  4. Paola, A., et al. Individual brain organoids reproducibly form cell diversity of the human cerebral cortex. Nature. 570, 523-527 (2019).
  5. Atsuhiro, T., Ryuichi, N. Higher-Order Kidney Organogenesis from Pluripotent Stem Cells. Cell Stem Cell. 21 (6), 730-746 (2017).
  6. Huch, M., et al. In vitro expansion of single Lgr5+ liver stem cells induced by Wnt-driven regeneration. Nature. 494 (7436), 247-250 (2013).
  7. Wang, D. S., et al. Long-Term Expansion of Pancreatic Islet Organoids from Resident Procr + Progenitors. Cell. 180 (6), 1198-1211 (2020).
  8. Jarno, D., Hans, C. Organoids in cancer research. Nature Reviews Cancer. 18, 407-418 (2018).
  9. Hans, C. Modeling Development and Disease with Organoids. Cell. 165 (7), 1586-1597 (2016).
  10. Forbes, S. J., Newsome, P. N. Liver regeneration-mechanisms and models to clinical application. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 13 (8), 473-485 (2016).
  11. Zhang, K., et al. In Vitro Expansion of Primary Human Hepatocytes with Efficient Liver Repopulation Capacity. Cell Stem Cell. 23 (6), 806-819 (2018).
  12. Katsuda, T., et al. Conversion of Terminally Committed Hepatocytes to Culturable Bipotent Progenitor Cells with Regenerative Capacity. Cell Stem Cell. 20 (1), 41-55 (2017).
  13. Hu, H., et al. Long-Term Expansion of Functional Mouse and Human Hepatocytes as 3D Organoids. Cell. 175 (6), 1591-1606 (2018).
  14. Peng, W., et al. Inflammatory Cytokine TNFalpha Promotes the Long-Term Expansion of Primary Hepatocytes in 3D Culture. Cell. 175 (6), 1607-1619 (2018).
  15. Xiang, C., et al. Long-term functional maintenance of primary human hepatocytes in vitro. Science. 364 (6438), 399-402 (2019).
  16. Huch, M., et al. Long-term culture of genome-stable bipotent stem cells from adult human liver. Cell. 160 (1-2), 299-312 (2015).
  17. Broutier, L., et al. Culture and establishment of self-renewing human and mouse adult liver and pancreas 3D organoids and their genetic manipulation. Nature Protocol. 11 (9), 1724-1743 (2016).
check_url/kr/62438?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lian, J., Meng, X., Zhang, X., Hu, H. Establishment and Genetic Manipulation of Murine Hepatocyte Organoids. J. Vis. Exp. (180), e62438, doi:10.3791/62438 (2022).

View Video