Waiting
Processando Login

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Biology

Подготовка, очистка и характеристика комплексов лантанидов для использования в качестве контрастных агентов для магнитно-резонансная томография

Published: July 21, 2011 doi: 10.3791/2844
* These authors contributed equally

Summary

Мы демонстрируем металлирование, очистка и характеристика комплексов лантанидов. Комплексы, описанные здесь могут быть сопряженными с макромолекулами включить отслеживание этих молекул с помощью магнитно-резонансной томографии.

Abstract

Polyaminopolycarboxylate основе лигандов обычно используются для хелатных ионов лантанидов, и в результате комплексы могут использоваться в качестве контрастных агентов для магнитно-резонансной томографии (МРТ). Многие коммерчески доступные лигандов особенно полезны, поскольку они содержат функциональные группы, которые позволяют быстро, высокой чистоты и высокоурожайных конъюгации макромолекул и биомолекул с помощью амин-реактивного активированных эфиров и изотиоцианата групп или тиол-реактивного малеимидов. Хотя металлирование этих лигандов считается общеизвестным в области bioconjugation химии, тонкие различия в металлирование процедуры должны быть приняты во внимание при выборе металла исходных материалов. Кроме того, несколько вариантов для очистки и характеристики существует, и выбор наиболее эффективных процедур частично зависит от выбора исходных материалов. Эти тонкие различия часто пренебрегают в опубликованных протоколах. Здесь, наша цель заключается в демонстрации общих методов металлирование, очистка и характеристика комплексов лантанидов, которые могут быть использованы в качестве контрастных агентов для МРТ (рис. 1). Мы ожидаем, что эта публикация поможет биомедицинских ученые включить лантаноидов реакций комплексообразования в свой репертуар наиболее часто используемых реакций, облегчая выбор исходных материалов и методов очистки.

Protocol

1. Металлирование использованием LnCl 3 солей

  1. Растворите в воде лиганд для получения решения 30-265 мМ. Лиганд 2 - (4-isothiocyanatobenzyl)-диэтилентриамин pentaacetic кислота (р-SCN-Вп-DTPA) была использована в этом видео в концентрации 73 мМ.
  2. Отрегулируйте рН раствора лиганда в диапазоне от 5,5 до 7,0, добавляя 1 М NH 4 OH. В этом видео, 0,2 мл 1 М NH 4 OH решение было использовано.
  3. Растворите 1-2 эквивалентами LnCl 3 в воде для получения раствора с концентрацией 5-1000 мМ. В этом видео, EuCl 3 и GdCl 3 были использованы в концентрации 111 мМ. Избыток металла часто используется для дисков металлирование к завершению и, следовательно, упростить очистку.
  4. Добавить решение LnCl 3 до решения лиганд при перемешивании.
  5. После добавления LnCl 3, отрегулировать рН полученной реакционной смеси от 5,5 до 7,0 добавлением 0,2 М NH 4 OH. В общей сложности 0,5 мл 0,2 М NH 4 OH решение было использовано в этом видео. Если лиганд содержит кислоту, чувствительных к функциональным группам, отрегулировать рН несколько раз во время этого шага. ВНИМАНИЕ - Если решение становится слишком основных, любая база чувствительных функциональных групп, как изотиоцианата, будет непригодным для сопряжения.
  6. Монитор реакции с помощью измерения рН. Реакция считается завершенным, когда рН остается постоянным.

2. Повышение рН обследование (не входит в этом видео, но хорошо для лигандов без основания чувствительных функциональных групп)

  1. Добавить концентрированный NH 4 OH в реакционную смесь для доведения рН до ≥ 11. Этот шаг ускорит любой незакомплексованного металла нерастворимые гидроокиси.
  2. Фильтры супернатанта через фильтр 0,2 мкм. Если реакционная смесь забивает фильтр, центрифугированием и декантацией до фильтрации рекомендуется.
  3. Если диализ не будет выполнена, удалите растворитель при пониженном давлении (ротационный испарения или сублимационной сушки рекомендуется).
  4. Шаги 2.1-2.3 может быть повторена, если свободное лантаноидов остается.

3. Диализ обследование

  1. Вырезать диализа трубку к соответствующей длины (следовать рекомендациям производителя) провести объем пробы, оставляя дополнительной длины (примерно 10% от объема выборки). В этом видео, 100-500 дальтон молекулярная масса отсечки (MWCO) мембрана была использована, но больше MWCO трубы могут быть использованы в соответствующих случаях, если сопряжение осуществляется до металлирование. Кроме того, диализ кассеты могут использоваться как альтернатива диализа трубы при желании.
  2. При необходимости на основе руководящих принципов производителя, помочь сократить трубы диализа в воде в течение 15 мин при комнатной температуре.
  3. Заполните диализа водохранилища (1 л стакан была использована в данном видео) с водой (диализата). Диализата объем должен быть примерно в 100 раз, что в образце.
  4. Сложите один конец трубки в два раза и безопасной сложенные части трубки с зажимом закрытия диализа. Оберните конец закрытия с резиновой лентой, чтобы убедиться, что он остается закрытым во время диализа.
  5. Фильтры реакционной смеси через фильтр 0,2 мкм, и загружают фильтрата в открытый конец трубки будьте осторожны, чтобы не разорвать трубы. Не забудьте оставить достаточно места головы, чтобы закрыть трубу.
  6. Сложите оставшийся открытым концом трубы в два раза, безопасный с закрытием, и оберните закрытия с резинкой, как в пункте 3.4.
  7. Прикрепить стекла флакон, содержащий воздух зажим на одном конце трубы использованием диализа резинкой. Прикрепить флакон, содержащий песок других зажима. Эти флаконы обеспечения того, чтобы трубка остается погруженным в диализата.
  8. Место полный труб в диализе резервуар, который содержит диализата.
  9. Движение диализата использованием магнитных пластин перемешать на медленной скорости (без вортексе) при комнатной температуре.
  10. Изменение диализата 3x в течение дня (в этом видео, диализата было изменено на уровне 2,5, 6,5 и 11,5 ч), а затем позволить диализа продолжать в течение ночи (в общей сложности 20-28 часов диализа).
  11. Удалить диализа труб из диализата и осторожно откройте один закрытия для удаления образца. Вымойте диализа трубки 3x с водой и объединить стирок с образцом.
  12. Удалите воду при пониженном давлении. Сублимационная сушка используется в этом видео.

4. Оценка наличия свободного металла

  1. Растворите металл комплекса в ацетатный буфер (буфер приготовления: Растворить 1,4 мл уксусной кислоты в 400 мл воды, отрегулировать рН до 5,8 с 1 М NH 4 OH, и добавьте воды, чтобы произвести общий объем 500 мл) и добавить ксиленола оранжевый индикатор (16 мкМ в рН 5,8 буфера). В этом видео, 0,3 мг комплекса растворяли в 0,3 мл буфера и 3 мл раствора индикатора был добавлен.
  2. Определение наличия свободного металла через наблюдение изменение цвета индикатора от желтого до фиолетового.
  3. При желании, количество свободного металла может быть определена количественно путем создания калибровочной кривой 1. Кроме того, краситель арсеназо III может быть использован вместо ксиленолового оранжевый 2. Если свободного металла остается, образец следует дополнительно очищают, используя диализ, обессоливания столбца или высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) до характеристику.

5. Определение содержания воды-координационным числом (д)

  1. Подготовка решения Eu III-содержащих комплекс (~ 1 мм) в H 2 O и другое решение того же концентрации в D 2 O. Перед проведением анализа, D 2 O решение должно быть испаряется и растворяют в D 2 O в три раза, чтобы удалить остатки H 2 O.
  2. Добавить водный раствор на чистую кювету и поместить кювету в spectrofluorometer.
  3. Выполните возбуждения и излучения сканирует определить максимумы для каждого (~ 395 нм и ~ 595 нм, соответственно).
  4. Выполните фосфоресценции времени распада эксперимент с использованием следующих параметров: возбуждения и излучения волн определяется из шага 5.3, возбуждения и излучения щели ширины (5 нм), флэш-счет (100), начальную задержку (0,01 мс), максимальная задержка (13 мс) , а прирост задержки (0,1 мс). Эти условия подходят для большинства комплексов, а максимальная задержка и приращение значения могут быть увеличены или уменьшены для видов с очень длинными или очень короткое время распада.
  5. Повторите шаг 5,4 с D 2 O раствор, приготовленный в шаге 5.1.
  6. Из-распада люминесценции данных, полученных в 5,4 и 5,5, участок натуральный логарифм интенсивности в зависимости от времени. Наклон этих линий скорости распада (τ -1) (рис. 2). В этом видео, Microsoft Excel 2007 была использована для природных участков журнал из исходных данных. Используйте скорости распада в уравнении разработан Хоррокс и его коллеги (напр. 1) 3. Если лиганд содержит ОН или NH группы согласуются с металлом, то уравнение должен быть изменен перед использованием 3.

экв 1: Уравнение 1

6. Relaxivity измерений

  1. Выберите нужный режим применения на анализаторе релаксации: T 1 (время продольной релаксации) или Т-2 (время поперечной релаксации).
  2. Подготовка серии образцов, которые содержат различные концентрации Gd III-содержащего комплекса в водном растворителе. В этом видео, вода была использована в качестве растворителей и растворов 10,0, 5,00, 2,50, 1,25, 0,625 и 0 мМ были подготовлены. Другие водные растворители или буферы могут быть использованы, но важно использовать растворитель, как пустой. Конечный объем пробы, специфичные для инструмента, который используется.
  3. Место образца в прибор и оставьте на 5 минут, чтобы уравновесить до температуры инструмент (37 ° С в этом видео).
  4. Определить время релаксации (в единицах ы), регулируя параметры программного обеспечения для получения гладкой экспоненциальная кривая T 1 и T 2 (представитель кривые для T 1 и T 2 показаны на рисунке 3).
  5. Повторите шаги 6,3 и 6,4 для всех образцов, включая пустые.
  6. Вычислить обратную измеряется T 1 и T 2 значения в единицах с -1.
  7. Участок T 1 -1 или Т 2 -1 значений от концентрации Gd III (в единицах мМ). Из-за гигроскопичны характер Б-г III-содержащих комплексов, подтвердить концентрации Gd III с помощью атомно-абсорбционной спектрофотометрии или индуктивно-связанной плазмы масс-спектрометрии. Fit сюжет с прямой линии. Представитель график представлен на рисунке 4.
  8. Склона оборудована линия relaxivity (R 1 или R 2 для Т 1 и Т 2, соответственно) и имеет размерность мм -1 с -1.

7. Представитель Результаты

Представитель данные шаги в этом протоколе, были включены в Таблицы и рисунки раздела. В дополнение к воде координационным числом и relaxivity характеристики описаны в протоколе, важно для характеристики конечных продуктов с использованием стандартных методов химического вещества. Личность соединение может быть получено с помощью масс-спектрометрии и представитель масс-спектров показывает диагностических характеристиках изотопов к Б-гу III - III и Eu-содержащих комплексов, показаны на рисунке 5. Кроме того, для не-Б-г III

Рисунок 1
Рисунок 1 Общая схема металлирование и очистки. Схема изображающие общий порядок металлирование и причины для выбора разных маршрутов очистки.

Рисунок 2
Рисунок 2 Люминесценция интенсивности участка:. Представитель участок натуральный логарифм интенсивности в зависимости от времени из раздела 5. Наклона прямых полученные от подобных кривых, приобретенных для воды и D 2 O решения используются с 1 экв охарактеризовать воды координационное число Eu III-содержащих комплексов.

Рисунок 3
Рисунок 3 Релаксация время спада кривых:. Репрезентативных данных (слева) и T 1 (справа) T 2 приобретения. Отклонения от этих форм кривой будет производить недостоверных сведений.

Рисунок 4
Рисунок 4 Relaxivity определения:. Представитель участок 1 / T 1 по сравнению с концентрацией Gd III. Склона оборудована линия relaxivity и единиц мМ -1 с -1.

Рисунок 5
Рисунок 5 Масс-спектры. Представителю масс-спектров показывает диагностических характеристиках изотопа (слева), Б-г III-содержащих комплексов и (справа) Eu III-содержащих комплексов. Черные пики гауссовский представляют теоретическое распределение изотопов и красные линии являются фактическими данными.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Учитывая растущее количество публикаций, которые включают лантаноидов основе контрастных веществ 4-14, важно, что приняты меры по подготовке, очистке, и характеризующие продукции, чтобы обеспечить воспроизводимые и сопоставимые результаты. Эти комплексы часто считается сложной, чтобы очистить и охарактеризовать по отношению к органическим молекулам в силу своей природы парамагнитных и чувствительность любые функциональные группы, которые могут быть использованы для bioconjugation. Мы описали общие методы синтеза, очистки, и характеристика комплексов лантанидов. Тем не менее, при выборе одного из этих методов важно рассмотреть конкретные изучаемой системы.

В комплексообразования реакции, различные соли металлов, которые имеются в продаже могут быть использованы, и выбор соли зависит от цели исследования. Например, преимущество использования хлорида (или трифлат или нитрат) соли в том, что относительно мягких условиях требуются по температуре. Однако, эти методы требуют тщательного мониторинга рН и производят соли, как побочные продукты. Если изучаемой системы особенно чувствительны к изменениям рН, то тщательный мониторинг и контроль рН должны быть выполнены. Кроме того, если соль побочные продукты будут иметь пагубные последствия для изучаемой системы, они должны быть удалены или альтернативных синтез должен быть использован. С лантаноидов гидроксида (или азота) исходных материалов, более высоких температурах необходимо использовать из-за низкой растворимости этих видов, но единственным побочным продуктом металлирование является вода. Этот метод идеально подходит для реакций, которые было бы трудно опреснения, но она не будет работать для температурно-чувствительных систем. Стоит также отметить, что эти металлирование реакции чрезвычайно надежной по отношению к концентрации металла и лиганда. Концентрация диапазонов, перечисленных в части один пролет диапазоне концентраций, что мы могли бы найти в литературе.

В дополнение к вдумчивый выбор металла исходного материала, важно подчеркнуть, что оба металла и лигандов, скорее всего, тесно связаны воды и молекул растворителя, даже если они кажутся сухими. Эти дополнительные молекулы достаточно часто, чтобы существенно исказить стехиометрии реакции. Следовательно, было бы полезно иметь хорошо характеризуется исходных материалов (элементный анализ), так что точное количество этих материалов, используемых в реакции.

В этой статье мы подчеркиваем важность поддержания рН реакционной смеси. Это рН управления критически важным из-за нескольких аспектов реакции, которые могут потерпеть неудачу, если рН имеет право отклоняться от близких к нейтральным. Для металлирование реакция происходит, карбоновых кислот на лиганд должен быть депротонированной (рядом с нейтральным рН или выше), а лантаноидов ион должен оставаться растворимым (рядом с нейтральной или более низкие значения рН). Если рН слишком высока, нерастворимые комплексы гидроксида лантаноидов ион осадок и остановить реакцию. Или же, если рН слишком низкий, карбоновые кислоты останется протонированных и лиганд не согласуют с металлом. Кроме того, при экстремальных значениях рН, активных функциональных групп будет разлагаться и оказывать комплекс инертным по отношению к последующей реакции bioconjugation. Чтобы еще более усложнить положение, как металлирование реакция, рН реакционной смеси опускается, как карбоновые кислоты депротонированной. Хотя акт рН баланс металлирование может показаться сложным, он может легко управляться с осторожным добавлением базы.

Есть много стратегий для металлирование с тонкими различиями. В этой статье мы решили описать использования избыточного металла. Кроме того, допускается использование избыточного лиганда или эквивалентные количества лиганда и металла (на основе элементного анализа исходных материалов). Есть преимущества и недостатки каждого маршрута. Основное преимущество использования избыточного металла является то, что лиганд часто самые дорогие исходного материала, и этот метод может сэкономить деньги. Однако, когда металл используется в избытке, удаление избыточного металла имеет решающее значение, так как любой свободный металл может существенно влиять на важные свойства, включая relaxivity и токсичности. Если диализ против воды недостаточно, чтобы удалить лишний металл, диализа против буфера цитрата может быть выполнена с последующим диализом с водой, чтобы удалить цитрат буфера. Кроме того, обессоливания столбца или ВЭЖХ могут быть использованы до тех пор, как принимаются меры для обеспечения того, чтобы рН нейтралитет подвижной фазы используется. Когда лиганд используется в избытке, больше не существует острая необходимость, чтобы удалить лишний металл и избыток лиганда, скорее всего, не влияют relaxivity, однако свободного лиганда останется. Для последующих реакций bioconjugation, этот избыток лиганда может быть проблематичным, и в результате неоднородного конъюгатов, которые трудно разделить. Чтобы устранить эту проблему, металл макетlexes можно осадить из безводного диэтилового эфира или ВЭЖХ может быть использован для отдельных комплекс металла от избыточного лиганда. В идеале, лиганд, металл будет использоваться в соотношении 1:1 приводит к отсутствию металл-лиганд или основе побочных продуктов. Тем не менее, элементного анализа как для исходных материалов необходимо перед каждой реакции, и если есть небольшое отклонение от 1:01 лиганд-металл соотношение, то реакция будет попасть в любой лиганд-в-избыток или металл- в-избыточные категории, в результате чего необходимость очищения.

Мы показали, металлирование где полученный комплекс готов к bioconjugation 15-17. Альтернативой этой стратегии является сопряжение лиганда и биомолекулы первый следуют металлирование 18,19. С этой сопряженно-то-metalate стратегии, те же факторы необходимо учитывать при принятии решения о металлирование маршрут (чувствительность рН и температурной чувствительности биомолекулы, а также способность очистить продукт от солей).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Нет конфликта интересов объявлены.

Acknowledgments

Мы выражаем глубокую признательность запуска средства из Wayne State University (MJA), грант Американского фонда исследований старения (SMV) и Путь к независимости Карьера Переход Award (R00EB007129) из Национального института биомедицинской визуализации и биоинженерии из Национальных институтов здравоохранения (MJA).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
EuCl3∙6H2O Sigma-Aldrich 203254-5G
p-SCN-Bn-DTPA Macrocyclics B-305
ammonium hydroxide EMD Millipore AX1303-3
Spectra/Por Biotech Cellulose Ester (CE) Dialysis Membrane - 500 D MWCO Fisher Scientific 68-671-24
Millipore IC Millex-LG Filter Units Fisher Scientific SLLG C13 NL
xylenol orange tetrasodium salt Alfa Aesar 41379
acetic acid Fluka 49199
D2O Cambridge Isotope Laboratories DLM-4-25
water purifier ELGA Purelab Ultra
high performance liquid chromatography and mass spectrometry Shimadzu Corporation LCMS-2010EV
relaxation time analyzer Bruker Corporation mq60 minispec
UV-vis spectrophotometer Fisher Scientific 20-624-00092
freeze dryer Fisher Scientific 10-030-133
pH meter Hanna Instruments HI 221
spectrofluorometer Horiba Instruments Inc Fluoromax-4
Molecular Weight Calculator version 6.46 by Matthew Monr–, downloaded October 17, 2009 http://ncrr.pnl.gov/software/ Molecular Weight Calculator

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Barge, A., Cravotto, G., Gianolio, E., Fedeli, F. How to determine free Gd and free ligand in solution of Gd chelates. A technical note. Contrast Med. Mol. Imaging. 1, 184-188 (2006).
  2. Nagaraja, T. N., Croxen, R. L., Panda, S., Knight, R. A., Keenan, K. A., Brown, S. L., Fenstermacher, J. D., Ewing, J. R. Application of arsenazo III in the preparation and characterization of an albumin-linked, gadolinium-based macromolecular magnetic resonance contrast agent. J. Neurosci. Methods. 157, 238-245 (2006).
  3. Supkowski, R. M., Horrocks, W. D. On the determination of the number of water molecules, q, coordinated to europium(III) ions in solution from luminescence decay lifetimes. Inorg. Chim. Acta. 340, 44-48 (2002).
  4. Menjoge, A. R., Kannan, R. M., Tomalia, D. A. Dendrimer-based drug and imaging conjugates: design considerations for nanomedical applications. Drug Discovery Today. 15, 171-185 (2010).
  5. Que, E. L., Chang, C. J. Responsive magnetic resonance imaging contrast agents as chemical sensors for metals in biology and medicine. Chem. Soc. Rev. 39, 51-60 (2010).
  6. Uppal, R., Caravan, P. Targeted probes for cardiovascular MR imaging. Future Med. Chem. 2, 451-470 (2010).
  7. Major, J. L., Meade, T. J. Bioresponsive, cell-penetrating, and multimeric MR contrast agents. Acc. Chem. Res. 42, 893-903 (2009).
  8. Datta, A., Raymond, K. N. Gd-hydroxypyridinone (HOPO)-based high-relaxivity magnetic resonance imaging (MRI) contrast agents. Acc. Chem. Res. 42, 938-947 (2009).
  9. León-Rodríguez, L. M. D., Lubag, A. J. M., Malloy, C. R., Martinez, G. V., Gillies, R. J., Sherry, A. D. Responsive MRI agents for sensing metabolism in vivo. Acc. Chem. Res. 42, 948-957 (2009).
  10. Castelli, D. D., Gianolio, E., Crich, S. G., Terreno, E., Aime, S. Metal containing nanosized systems for MR-molecular imaging applications. Coord. Chem. Rev. 252, 2424-2443 (2008).
  11. Caravan, P., Ellison, J. J., McMurry, T. J., Lauffer, R. B. Gadolinium(III) chelates as MRI contrast agents: structure, dynamics, and applications. Chem. Rev. 99, 2293-2352 (1999).
  12. Lauffer, R. B. Paramagnetic metal complexes as water proton relaxation agents for NMR imaging: theory and design. Chem. Rev. 87, 901-927 (1987).
  13. Yoo, B., Pagel, An overview of responsive MRI contrast agents for molecular imaging. Front. Biosci. 13, 1733-1752 (2008).
  14. Pandya, S., Yu, J., Parker, D. Engineering emissive europium and terbium complexes for molecular imaging and sensing. Dalton Trans. 23, 2757-2766 (2006).
  15. Nwe, K., Xu, H., Regino, C. A. S., Bernardo, M., Ileva, L., Riffle, L., Wong, K. J., Brechbiel, M. W. A new approach in the preparation of dendrimer-based bifunctional diethylenetriaminepentaacetic acid MR contrast agent derivatives. Bioconjugate Chem. 20, 1412-1418 (2009).
  16. Nwe, K., Bernardo, M., Regino, C. A. S., Williams, M., Brechbiel, M. W. Comparison of MRI properties between derivatized DTPA and DOTA gadolinium-dendrimer conjugates. Bioorg. Med. Chem. 18, 5925-5931 (2010).
  17. Caravan, P., Das, B., Deng, Q., Dumas, S., Jacques, V., Koerner, S. K., Kolodziej, A., Looby, R. J., Sun, W. -C., Zhang, Z. A lysine walk to high relaxivity collagen-targeted MRI contrast agents. Chem. Commun. , 430-432 (2009).
  18. León-Rodríguez, L. M. D., Kovacs, Z. The synthesis and chelation chemistry of DOTA-peptide conjugates. Bioconjugate Chem. 19, 391-402 (2008).
  19. Boswell, C. A., Eck, P. K., Regino, C. A. S., Bernardo, M., Wong, K. J., Milenic, D. E., Choyke, P. L., Brechbiel, M. W. Synthesis, characterization, and biological evaluation of integrin αVβ3-targeted PAMAM dendrimers. Mol. Pharm. 5, 527-539 (2008).

Tags

Медицина выпуск 53 МРТ контрастное вещество лантаноидов гадолиния
Подготовка, очистка и характеристика комплексов лантанидов для использования в качестве контрастных агентов для магнитно-резонансная томография
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Averill, D. J., Garcia, J.,More

Averill, D. J., Garcia, J., Siriwardena-Mahanama, B. N., Vithanarachchi, S. M., Allen, M. J. Preparation, Purification, and Characterization of Lanthanide Complexes for Use as Contrast Agents for Magnetic Resonance Imaging. J. Vis. Exp. (53), e2844, doi:10.3791/2844 (2011).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter