Summary

Membran-SPINE: en biokemisk redskab til at identificere protein-protein interaktioner membranproteiner<em> In Vivo</em

Published: November 07, 2013
doi:

Summary

En biokemisk fremgangsmåde er beskrevet til at identificere in vivo protein-protein interaktioner (PPI) af membranproteiner. Fremgangsmåden kombinerer protein tværbinding affinitetsoprensning og massespektrometri, og kan tilpasses til næsten enhver celletype eller organisme. Med denne fremgangsmåde bliver det muligt selv identifikation af forbigående PPI.

Abstract

Membranproteiner er essentielle for cellelevedygtighed, og er derfor vigtige terapeutiske mål 1-3. Da de fungerer i komplekser 4, er det nødvendigt 5 metoder til at identificere og karakterisere deres samspil. Til dette formål har vi udviklet Membrane Strep-protein-interaktion eksperiment, kaldet Membrane-SPINE 6. Denne teknik kombinerer vivo tværbinding ved hjælp af den reversible tværbinder formaldehyd med affinitetsoprensning af et Strep-mærket membran bait protein. Under proceduren tværbundne prey-proteiner co-oprenset med membranen bait-proteinet og efterfølgende separeret ved kogning. Derfor kan to store opgaver skal udføres, når man analyserer protein-protein interaktioner (PPI) af membranproteiner hjælp Membran-SPINE: første, bekræftelse af en foreslået interaktion partner ved immunoblotting, og for det andet, identifikation af nye interaktions partnere ved massespektrometrianalyse . Selv low affinitet forbigående PPI er påviselige ved denne teknik. Endelig Membrane-SPINE kan tilpasses til næsten enhver celletype, hvilket gør den anvendelig som et kraftfuldt screeningsværktøj til at identificere producentprisindeks for membranproteiner.

Introduction

For at forstå funktionen af ​​et protein, er det vigtigt at kende dens interaktionspartnere. Flere klassiske teknikker er til rådighed til identifikation af interaktions partnere opløselige proteiner. Men disse teknikker er ikke let overføres til membranproteiner på grund af deres hydrofobe natur 4. For at overvinde denne begrænsning, har vi udviklet Membrane Strep-protein interaktion eksperiment (Membrane-SPINE) 6.. Den er baseret på SPINE metode, som kun var egnet til opløselige proteiner 7.

Membran-Spine fordelene ved to fordele ved den tværbindingsmiddel formaldehyd: For det første kan formaldehyd let trænge membraner, og derfor frembringer et præcist øjebliksbillede af interactome i en levende celle 8. For det andet, kan formaldehyd tværbindinger vendes ved kogning 9. Her er disse to fordele bruges til at identificere ikke kun permanente, men også forbigående producentprisindeks membran proteins 6.

Kort fortalt er en Strep-mærke fusioneret til den C-terminale ende af integral membran agn protein. Celler, der udtrykker membran agn protein inkuberes med formaldehyd, som tværbindinger bytte proteiner til membranen agn protein (figur 1). Modifikationer af prey-proteiner er ikke nødvendig. Dernæst membranfraktionen er forberedt. Derfor er membranproteiner opløseliggøres ved detergentbehandling og agn proteiner co-oprenset med sine prey-proteiner ved hjælp af affinitetsoprensning. Efterfølgende tværbinding vendes ved kogning og agn og dens co-eluerede prey-proteiner adskilles ved SDS-PAGE. Endelig kan prey-proteiner identificeres ved immunoblotanalyse eller massespektrometri.

Protocol

Bemærk: Detaljerede oplysninger om buffere er angivet i protokollen findes i tabel 1. 1.. Fiksering af protein-protein interaktioner med formaldehyd Cross-sammenkædning i levende celler Til at begynde at forberede vækst medier, stamopløsninger og buffer P1 Forbered 500 ml medium: Mediet bør give vilkår, som understøtter samspillet mellem membranen bait protein og prey-proteiner. Desuden bør et eksperiment udføres under betingelser, hvor der forve…

Representative Results

Membran SPINE analyse tillader co-oprensning af membranproteiner og transient interagerende protein partnere. Den co-oprensning opnås ved hjælp af cross-linking agent formaldehyd. To parametre er afgørende for at forhindre uspecifikke tværbindinger: formaldehydkoncentrationen og krydsbinding gang. Den tilstrækkelige, men ikke overdreven brug af formaldehyd kan let kontrolleres ved immunoblotting. Formaldehyd tværbundne protein-komplekser kan separeres ved kogning, men ikke ved SDS behandling. Derfor kan de visuali…

Discussion

Membran SPINE analyse er en biokemisk tilgang, der gør det muligt at bekræfte og identificere til dette punkt ukendte interaktion partnere membranproteiner. Membran SPINE kombinerer in vivo krydsbinding af formaldehyd med oprensning af en Strep-mærket membran bait protein. Kombinationen med immunoblotting letter bekræftelse af forudsagte interaktionspartnere (figur 2). Derudover kombination med MS-analyse tillader identifikation af ukendte interaktion partnere (figur 3). Fo…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskning blev støttet af tilskud fra Deutsche Forschungsgemeinschaft GraKo1121, Hu1011/2-1 og SFB940 til SH

Materials

37% Formaldehyde Roth 4979.1 Should not be older than one year
DNaseI Sigma DN25
BCA protein assay kit Pierce 23225
Micromagnetic rod Roth 0955.2 5 mm in length, 2 mm in diameter
Triton X-100 Roth 6683.1 standard detergent for solubilization
n-Dodecyl-β-maltoside Glycon D97002-C the best detergent to solubilze CpxA
1 ml Strep-Tactin superflow gravity flow column IBA 2-1207-050
Strep-tag protein purification buffer set IBA 2-1002-001 Contains buffer W and buffer E
Amicon Ultra-4 centrifugal filter Millipore UFC803024
SuperSignal West Pico Chemiluminescent substrate Pierce 34080
SilverQuest Silverstaining kit Invitrogen LC6070
FireSilver Staining Kit Proteome Factory P-S-2001
Ultracentrifuge

Referências

  1. Krogh, A., Larsson, B., von Heijne, G., Sonnhammer, E. L. L. Predicting transmembrane protein topology with a hidden markov model: application to complete genomes. J. Mol. Biol. 305, 567-580 (2001).
  2. Bakheet, T. M., Doig, A. J. Properties and identification of human protein drug targets. Bioinformatics. 25, 451-457 (2009).
  3. Yildirim, M. A., Goh, K. I., Cusick, M. E., Barabasi, A. L., Vidal, M. Drug-target network. Nat. Biotechnol. 25, (2007).
  4. Daley, D. O. The assembly of membrane proteins into complexes. Curr. Opin. Struct. Biol. 18, 420-424 (2008).
  5. Jung, K., Fried, L., Behr, S., Heermann, R. Histidine kinases and response regulators in networks. Curr. Opin. Microbiol. 15, 118-124 (2012).
  6. Müller, V. S., Jungblut, P. R., Meyer, T. F., Hunke, S. Membrane-SPINE: An improved method to identify protein-protein interaction partners of membrane proteins in vivo. Proteomics. 11, 2124-2128 (2011).
  7. Herzberg, C., et al. SPINE: A method for the rapid detection and analysis of protein-protein interactions in vivo. Proteomics. 7, 4032-4035 (2007).
  8. Sutherland, B. W., Toews, J., Kast, J. Utility of formaldehyde cross-linking and mass spectrometry in the study of protein-protein interactions. J. Mass Spectrom. 43, 699-715 (2008).
  9. Hernandez, P., Müller, M., Appel, R. D. Automated protein identification by tandem mass spectrometry: Issues and strategies. Mass Spectrom. Rev. 25, 235-254 (2006).
  10. Laemmli, U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 227, 680-685 (1970).
  11. Hunke, S., Keller, R., Müller, V. S. Signal integration by the Cpx-envelope stress system. FEMS Microbiol. Lett. 326, 12-22 (2012).
  12. Weber, R. F., Silverman, P. M. The Cpx proteins of Escherichia coli K12 : Structure of the CpxA polypeptide as an inner membrane component. J. Mol. Biol. 203, 467-478 (1988).
check_url/pt/50810?article_type=t&slug=membrane-spine-biochemical-tool-to-identify-protein-protein

Play Video

Citar este artigo
Müller, V. S., Tschauner, K., Hunke, S. Membrane-SPINE: A Biochemical Tool to Identify Protein-protein Interactions of Membrane Proteins In Vivo. J. Vis. Exp. (81), e50810, doi:10.3791/50810 (2013).

View Video