Summary

Etter i Real Time Impact of Pneumokokk virulens faktorer i en akutt Mouse Lungebetennelse Modell Bruke Bioluminescent Bakterier

Published: February 23, 2014
doi:

Summary

Streptococcus pneumoniae er den ledende patogen forårsaker alvorlig smittsom lungebetennelse og ansvarlig for over 2 millioner dødsfall på verdensbasis. Virkningen av bakterielle faktorer involvert i fitness eller virulens kan overvåkes i sanntid i en akutt mus lungebetennelse eller bakteriemi modell med selvlysende bakterier.

Abstract

Lungebetennelse er en av de største helsevesenet problemer i utviklingsland og industrialiserte land, og er forbundet med betydelig sykelighet og dødelighet. Til tross for fremskritt i kunnskap om denne sykdommen, tilgjengeligheten av intensivavdelinger (ICU), og bruk av potente antimikrobielle midler og effektive vaksiner, dødeligheten forbli høy en. Streptococcus pneumoniae er den ledende patogen av smittsom lungebetennelse (CAP) og en av de mest vanlige årsaker til bakteriemi hos mennesker. Dette patogen er utstyrt med en armamentarium av overflateeksponert adhesiner og virulens faktorer som bidrar til lungebetennelse og invasiv pneumokokksykdom (IPD). Vurderingen av in vivo rollen bakterielle fitness eller virulens faktorer er av største viktighet å rakne S. pneumoniae patogenitet mekanismer. Murine modeller av lungebetennelse, bakteriemi og meningitt blir brukt for å fastslå effekten av pneumokokk faktorer ved forskjellige stadier av infeksjonen. Her beskriver vi en protokoll for å overvåke i sanntid pneumokokk formidling i mus etter intranasal eller intraperitoneal infeksjoner med selvlysende bakterier. Resultatene viser at formering og spredning av pneumokokker i nedre luftveier og blod, som kan bli visualisert og evalueres ved hjelp av et avbildningssystem og den tilhørende analyse-programvare.

Introduction

Luftveisinfeksjoner forårsaket av virus eller bakterier er fortsatt en av de vanligste smittsom eller kliniske problemer på verdensbasis forårsaker om lag en tredjedel av alle dødsfall på verdensbasis. De viktigste bakteriearter er Haemophilus influenzae og Streptococcus pneumoniae to. Imidlertid er disse bakteriearter er normalt vanlige bestanddeler av den naturlige luftveis flora. Dermed bakteriell vogn er også av viss risiko for invasiv sykdom og avhengig av immunstatus eller predisposisjoner av enkeltpersoner. Den asymptomatisk kolonisering utløses til invasive infeksjoner. Streptococcus pneumoniae er den ledende patogen av smittsom lungebetennelse (CAP) og en av de vanligste årsakene til bakteriemi hos mennesker. Hos friske individer S. pneumoniae (pneumokokker) er ofte asymptomatiske og ufarlig koloniherrer i de øvre luftveiene, hvor de blir konfrontert med nonpathogenic bakterierav de fastboende flora, men også med patogener som Haemophilus spp.. eller Staphylococcus aureus og den første linjen av menneskets immunforsvar. Vogn priser er høyest hos unge barn (37%) og enda høyere i løpet av overfylte barnehager (58%) 3-5. Den yngste befolkning og eldre, mottar pneumococcus via aerosol overføring fra operatører og svelgsekreter 6, hører til de høye risikogrupper og vaksinasjon ved hjelp av en av konjugert pneumokokk vaksine (PCV10 eller PCV13 hos barn og 23-valent polysakkarid PPSV23 hos voksne) anbefales i og mange europeiske land 4 USA (US). Den PPSV23 dekker serotyper ansvarlige for ~ 90% av bakteriemi pneumokokksykdommer i USA og Europa, og hindrer dermed effektivt invasiv pneumokokksykdom (IPD) hos voksne, mens de PCVs dekke de mest utbredte serotyper hos barn. Følgelig IPD grunn vaksinetyper (VT) er reduCED men nonvaccine serotyper viser en høy virulens potensial og antibiotikaresistens har dukket 4,7-12. Nasopharynx som reservoaret er utgangspunkt for pneumokokker å spre seg til bihulene eller mellomøret initiere skadelige lokale infeksjoner. Mer viktig, pneumokokker spres direkte via luftveiene til bronkier og lunge resulterer i livstruende CAP 4,13. Lungeinfeksjoner er ofte ledsaget med vev og barriere ødeleggelse, og dermed gjør den patogen å spre seg inn i blodet og forårsaker IPD. Forekomst av CAP og IPD er høyest hos immunsupprimerte personer eller på ytterpunktene av alder 4,13. De ansvarlig for konvertering fra en commensal til et patogen med høy virulens er fortsatt under debatt. Imidlertid, i tillegg til endringer i verts mottakelighet og evolusjonære tilpasning sammen med økt virulens, og økningen i antibiotiske motstandsverdier har blitt foreslått å ha en avgjørende virkning på PNEumococcal infeksjoner 14-16.

Den patogen er utstyrt med et mangfold av adhesiner som medierer intim kontakt å mucosal epitelceller. Etter surmounting luftveiene slim, er pneumokokk tilslutning til vertsceller tilrettelagt via direkte interaksjoner av overflateeksponert adhesiner med cellulære reseptorer og ved å utnytte ekstracellulære matrix komponenter eller serumproteiner som bridging molekyler 4,17,18. Som allsidig patogener pneumokokker er også utstyrt med faktorer involvert i unndragelse av vertens immunforsvarsmekanismer. Dessuten har de evnen til å tilpasse seg forskjellige verts miljøer slik som i lunge, blod og spinalvæske (CSF), henholdsvis 5,17,19,20.

Virkningen av bakterielle faktorer på patogenese og inflammatorisk vertsresponser er undersøkt i eksperimentelle dyremodeller av lungebetennelse, bakteriemi, eller hjernehinnebetennelse 21-25. Til tross for å være et menneskelig patogen, disse modellene er vill-etablert for å dechiffrere pneumokokk vev tropisme, virulensmekanismer, eller protectivity av pneumokokk vaksine kandidater. Den genetiske bakgrunnen til innavlede musestammer bestemmer mottakelighet for pneumokokker. BALB / c-mus intranasalt infisert med pneumococci ble funnet å være motstandsdyktige, mens CBA / Ca-og SJL mus var mer mottagelige mot pneumokokkinfeksjon 22. Dette medfører at, i likhet med mennesker, den genetiske bakgrunn og vertsforsvarsmekanismer bestemme resultatet av infeksjon. Derfor er ytterligere innsats er nødvendig for å løse motstand loci i genomet hos mus mindre utsatt for pneumokokkinfeksjoner. Funnene har ført til endringer i in vivo virulens protokoller. I stedet for den innavlede BALB / c mus ofte brukt i det siste, er de svært mottakelige CD-1/MF1 utavmusestammer i dag ofte brukt for å studere effekten av tap-av-funksjon pneumokokk virulens eller egnethet faktorer 26-28. Videre tilgjengelighetenbioluminescerende pneumokokker og optiske avbildningsteknikker gjør at sanntids Bioluminescens Bioimaging av infeksjoner. I pneumokokker den optimaliserte luxABCDE genet kassett (plasmid Paul-En Tn 4001 luxABCDE Km r) har blitt satt inn i en enkelt integrering stedet av kromosom ved transposon mutagenese. Bioluminescent pneumokokker har blitt ansatt for å vurdere demping av pneumokokk-mutanter mangelfull i virulens eller fitness faktorer og deres trans fra en anatomisk område til et annet 26,28-31.

Her gir vi en protokoll for Bioimaging av pneumokokkinfeksjon i en murine lungebetennelse eller blodforgiftning modell. Forsterkning og formidling av selvlysende pneumokokker i intranasalt eller intraperitonealt infiserte mus kan enkelt overvåkes over tid ved hjelp av en optisk imaging system og samme dyr ved ulike tidspunkt.

Protocol

De dyr smitteforsøk er beskrevet her må utføres i henhold til de lokale og internasjonale (f.eks European Health Law of the Federation of Laboratory Animal Science Associations (FELASA)) retningslinjer og forskrifter for bruk av virveldyr. Forsøkene må godkjennes av den lokale etiske styret and Institutional Animal Care Committee. Alle eksperimenter med S. pneumoniae i laboratoriet eller dyre infeksjoner er gjennomført i en klasse II biosikkerhet kabinettet. En. Forbere…

Representative Results

Oppkjøpet og opptak av metionin er av sentral betydning for pneumokokker å opprettholde fitness i verts nisje 32,33. Den metionin ABC transporter lipoprotein er kodet i D39 ved spd _ 0151 genet (TIGR4: sp_0149) og oppkalt MetQ 32. Pneumokokker videre produsere metionin biosyntese enzymer (D39: Spd_0510 – Spd_0511; TIGR4 Sp_0585 – Sp_0586, Mete og METF). Mangelen på metionin i et kjemisk definert medium påvirker veksten av pneumokokker og lignende, mangelen av metionin…

Discussion

Alle eksperimenter utført på dyr må være godkjent av lokale myndigheter og etikk provisjoner. I in vivo-smitteforsøk bakteriemengden i de forskjellige verts nisjer av infiserte dyr har til å bli bestemt ved forskjellige tidspunkter etter infeksjon. Under disse eksperimentelle betingelser dyrene måtte ofres forut for isolering av bakterier fra blod, nasofarynks, bronchoalvelar kylling, eller organer som lunger, milt og i hjernen. For å beregne antall bakterier per vert nisje og vurdere effekten av …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forskning i laboratoriet ble støttet med tilskudd fra Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG HA 3125/3-2, DFG HA 3125/4-2) og Federal Utdannings-og forskningsdepartementet (BMBF) Medisinsk Infeksjon Genomics (FKZ 0315828A) til SH.

Materials

Todd Hewitt broth Carl Roth, Karlsruhe, Germany X936.1
Yeast extract Carl Roth, Karlsruhe, Germany 2363.2
Blood agar plates Oxoid, Wesel, Germany PB5039A
Kanamycin Carl Roth, Karlsruhe, Germany T832.2
Erythromycin Sigma-Aldrich,Taufkirchen, Germany E6376
fetal bovine serum (FBS) PAA Laboratories, Coelbe, Germany A11-151
CD-1 mice, female Charles River, Sulzfeld, Germany CD1SIFE06W08W female CD-1 mice, six to eight weeks old
Ketamin 500mg, Curamed injection solution Schwabe-Curamed, Karlsruhe, Germany
Rompun 2%, injection solution Bayer Animal Health, Monheim, Germany
BD Plastipak 1 ml syringes Becton Dickinson, Heidelberg, Germany 300015 sterile Luer-Lok™ syringes with needle
Gel Loader Tips peqlab 81-13790 MµltiFlex™ Tips
Hyaluronidase Sigma-Aldrich H3884-100mg Hyaluronidase Type IV-S from Bovine test
Oxygen Air Liquide, Düsseldorf, Germany M1001L50R2A001
Isofluoran Baxter, Unterschleißheim, Germany
pGEM-T Easy Promega, Mannheim, Germany
Oligonucleotides Eurofins MWG, Ebersberg, Germany
Qiaprep Spin Midiprep Kit Qiagen, Hilden, Germany 27104
PCR DNA purification kit Qiagen, Hilden, Germany 28106
Equipment
Living Image 4.1 software Caliper Life Sciences/PerkinElmer, Rodgau, Germany
XGI-8 Gas Anesthesia System Caliper Life Sciences/PerkinElmer, Rodgau, Germany
IVIS Spectrum Imaging System Caliper Life Sciences/PerkinElmer, Rodgau, Germany
Biophotometer Eppendorf AG, Hamburg, Germany

Referências

  1. Niederman, M. S., et al. Guidelines for the management of adults with community-acquired pneumonia. Diagnosis, assessment of severity, antimicrobial therapy, and prevention. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 163, 1730-1754 (2001).
  2. WHO, The global burden of disease: 2004 update. World Health Organization. , (2008).
  3. Bogaert, D., et al. Colonisation by Streptococcus pneumoniae and Staphylococcus aureus in healthy children. Lancet. 363, 1871-1872 (2004).
  4. Gamez, G., Hammerschmidt, S. Combat pneumococcal infections: adhesins as candidates for protein-based vaccine development. Curr. Drug Targets. 13, 323-337 (2012).
  5. Mook-Kanamori, B. B., Geldhoff, M., vander Poll, T., Dvan de Beek, D. Pathogenesis and pathophysiology of pneumococcal meningitis. Clin. Microbiol. Rev. 24, 557-591 (2011).
  6. Musher, D. M. How contagious are common respiratory tract infections. N. Engl. J. Med. 348, 1256-1266 (2003).
  7. Brueggemann, A. B., Pai, R., Crook, D. W., Beall, B. Vaccine escape recombinants emerge after pneumococcal vaccination in the United States. PLoS Pathog. 3, (2007).
  8. Munoz-Almagro, C., et al. Emergence of invasive pneumococcal disease caused by nonvaccine serotypes in the era of 7-valent conjugate vaccine. Clin. Infect. Dis. 46, 174-182 (2008).
  9. Whitney, C. G. Impact of conjugate pneumococcal vaccines. Pediatr. Infect. Dis. J. 24, 729-730 (2005).
  10. Whitney, C. G., et al. Decline in invasive pneumococcal disease after the introduction of protein-polysaccharide conjugate vaccine. N. Engl. J. Med. 348, 1737-1746 (2003).
  11. Lynch, J. P., Zhanel, G. G. Streptococcus pneumoniae: epidemiology and risk factors, evolution of antimicrobial resistance, and impact of vaccines. Curr. Opin. Pulm. Med. 16, 217-225 (2010).
  12. Singleton, R. J., et al. Invasive pneumococcal disease caused by nonvaccine serotypes among Alaska native children with high levels of 7-valent pneumococcal conjugate vaccine coverage. JAMA. 297, 1784-1792 (2007).
  13. Dockrell, D. H., Whyte, M. K., Mitchell, T. J. Pneumococcal pneumonia: mechanisms of infection and resolution. Chest. 142, 482-491 (2012).
  14. Lieberman, T. D., et al. Parallel bacterial evolution within multiple patients identifies candidate pathogenicity genes. Nat. Genet. 43, 1275-1280 (2011).
  15. Yang, J., Tauschek, M., Robins-Browne, R. M. Control of bacterial virulence by AraC-like regulators that respond to chemical signals. Trends Microbiol. 19, 128-135 (2011).
  16. Young, B. C., et al. Evolutionary dynamics of Staphylococcus aureus during progression from carriage to disease. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 109, 4550-4555 (2012).
  17. Kadioglu, A., Weiser, J. N., Paton, J. C., Andrew, P. W. The role of Streptococcus pneumoniae virulence factors in host respiratory colonization and disease. Nat. Rev. Microbiol. 6, 288-301 (2008).
  18. Voss, S., Gamez, G., Hammerschmidt, S. Impact of pneumococcal microbial surface components recognizing adhesive matrix molecules on colonization. Mol. Oral Microbiol. 27, 246-256 (2012).
  19. Koppe, U., Suttorp, N., Opitz, B. Recognition of Streptococcus pneumoniae by the innate immune system. Cell. Microbiol. 14, 460-466 (2012).
  20. Paterson, G. K., Mitchell, T. J. Innate immunity and the pneumococcus. Microbiology. 152, 285-293 (2006).
  21. Gerber, J., et al. A mouse model of Streptococcus pneumoniae meningitis mimicking several features of human disease. Acta Neuropathol. 101, 499-508 (2001).
  22. Gingles, N. A., et al. Role of genetic resistance in invasive pneumococcal infection: identification and study of susceptibility and resistance in inbred mouse strains. Infect. Immun. 69, 426-434 (2001).
  23. Holmes, A. R., et al. The pavA gene of Streptococcus pneumoniae encodes a fibronectin-binding protein that is essential for virulence. Mol. Microbiol. 41, 1395-1408 (2001).
  24. Koedel, U., Klein, M., Pfister, H. W. New understandings on the pathophysiology of bacterial meningitis. Curr. Opin. Infect. Dis. 23, 217-223 (2010).
  25. Medina, E. Murine model of pneumococcal pneumonia. Methods Mol. Biol. 602, 405-410 (2010).
  26. Hartel, T., et al. Impact of glutamine transporters on pneumococcal fitness under infection-related conditions. Infect. Immun. 79, 44-58 (2011).
  27. Hermans, P. W., et al. The streptococcal lipoprotein rotamase A (SlrA) is a functional peptidyl-prolyl isomerase involved in pneumococcal colonization. J. Biol. Chem. 281, 968-976 (2006).
  28. Jensch, I., et al. PavB is a surface-exposed adhesin of Streptococcus pneumoniae contributing to nasopharyngeal colonization and airways infections. Mol. Microbiol. 77, 22-43 (2010).
  29. Kadioglu, A., et al. Pneumococcal protein PavA is important for nasopharyngeal carriage and development of sepsis. Mol. Oral Microbiol. 25, 50-60 (2010).
  30. Orihuela, C. J., Gao, G., Francis, K. P., Yu, J., Tuomanen, E. I. Tissue-specific contributions of pneumococcal virulence factors to pathogenesis. J. Infect. Dis. 190, 1661-1669 (2004).
  31. Francis, K. P., et al. Visualizing pneumococcal infections in the lungs of live mice using bioluminescent Streptococcus pneumoniae transformed with a novel gram-positive lux transposon. Infect. Immun. 69, 3350-3358 (2001).
  32. Basavanna, S., et al. The effects of methionine acquisition and synthesis on Streptococcus pneumoniae growth and virulence. PLoS One. 8, (2013).
  33. Hartel, T., et al. Characterization of central carbon metabolism of Streptococcus pneumoniae by isotopologue profiling. J. Biol. Chem. 287, 4260-4274 (2012).
  34. Hammerschmidt, S., et al. The host immune regulator factor H interacts via two contact sites with the PspC protein of Streptococcus pneumoniae and mediates adhesion to host epithelial cells. J. Immunol. 178, 5848-5858 (2007).
  35. Voss, S., et al. The choline-binding protein PspC of Streptococcus pneumoniae interacts with the C-terminal heparin-binding domain of vitronectin. J. Biol. Chem. , (2013).
  36. Cartwright, K. Pneumococcal disease in western Europe: burden of disease, antibiotic resistance and management. Eur. J. Pediatr. 161, 188-195 (2002).
  37. vander Linden, M., Al-Lahham, A., Nicklas, W., Reinert, R. R. Molecular characterization of pneumococcal isolates from pets and laboratory animals. PLoS One. 4, (2009).
  38. Brehm, , et al. Sequence of the adenine methylase gene of the Streptococcus faecalis plasmid pAM beta 1. Nucleic Acids Res. 15, 3177 (1987).
check_url/pt/51174?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Saleh, M., Abdullah, M. R., Schulz, C., Kohler, T., Pribyl, T., Jensch, I., Hammerschmidt, S. Following in Real Time the Impact of Pneumococcal Virulence Factors in an Acute Mouse Pneumonia Model Using Bioluminescent Bacteria. J. Vis. Exp. (84), e51174, doi:10.3791/51174 (2014).

View Video