Summary

باستخدام فيروس الغدة اسوشيتد كأداة لدراسة الحواجز الشبكية في مرض

Published: April 19, 2015
doi:

Summary

To investigate the blood-retinal barrier permeability and the inner limiting membrane integrity in animal models of retinal disease, we used several adeno-associated virus (AAV) variants as tools to label retinal neurons and glia. Virus mediated reporter gene expression is then used as an indicator of retinal barrier permeability.

Abstract

خلايا مولر هي الخلايا الدبقية الرئيسية للشبكية العين. من نهاية أقدام تشكل حدود شبكية العين في الأغشية الحد الخارجي والداخلي (ILM)، وبالتزامن مع الخلايا النجمية، pericytes والخلايا البطانية التي وضع حاجز الدم في شبكية العين (BRB). BRB يحد من نقل المواد بين الدم وشبكية العين في حين يتصرف ILM باعتباره الغشاء القاعدي الذي يحدد تشريحيا الحدود بين شبكية العين وتجويف الجسم الزجاجي. وصفها خلايا مولر غير ذات أهمية خاصة لدراسة الحالة المادية للحواجز شبكية العين، وهذه الخلايا هي جزء لا يتجزأ من BRB وILM. وكثيرا ما غيرت كل من BRB وILM في مرض شبكية العين، وهي المسؤولة عن أعراض المرض.

هناك عدة طرق راسخة لدراسة سلامة BRB، مثل فحص الأزرق ايفانز أو تصوير الأوعية فلوريسئين. لكن هذه الأساليب لا تقدم معلومات على مدى BRB نفاذية رس جزيئات أكبر، في نطاق نانومتر. وعلاوة على ذلك، فإنها لا تقدم معلومات عن حالة الحواجز الشبكية الأخرى مثل ILM. لدراسة BRB نفاذية جنبا إلى جنب مع شبكية العين ILM، استخدمنا طريقة مقرها AAV أن يقدم معلومات عن نفاذية BRB إلى الجزيئات الكبيرة في حين تشير إلى حالة ILM والمصفوفة خارج الخلية البروتينات في الحالات المرضية. الخيارين AAV مفيدة لهذه الدراسة: AAV5 وShH10. AAV5 لديه انتحاء الطبيعي لخلايا مستقبلة للضوء ولكن لا يمكن أن يحصل عبر لشبكية العين الخارجية عندما تدار في الجسم الزجاجي عندما ILM غير سليمة (أي في البرية من نوع شبكية العين). ShH10 لديه انتحاء قوي نحو الخلايا الدبقية، وسوف تسمية انتقائي الدبقية مولر في كل من شبكية العين السليمة والمريضة. ShH10 يوفر توصيل الجينات أكثر كفاءة في شبكية العين حيث تم اختراق ILM. تسلط هذه الأدوات الفيروسية إلى جانب المناعية و-DNA الدم تحليل الضوء على حالة الحواجز الشبكية في المرض.

Introduction

خلايا مولر هي العنصر الدبقية الرئيسي للشبكية العين. شكليا، فإنها تمتد شبكية العين شعاعيا وendfeet بهم، في اتصال مع الجسم الزجاجي، مواجهة ILM والمكونات السرية لهذه الأخيرة. وILM هو الغشاء القاعدي تتكون من حوالي عشرة مختلفة البروتينات المصفوفة خارج الخلية (laminin، أجرين AGRIN، perlecan، nidogen، والكولاجين والعديد من البروتيوغليكان كبريتات الهيبارين). خلال التنمية، وجودها لا غنى عنه لتكون الأنسجة الشبكية، والملاحة من المحاور البصرية، وبقاء خلايا العقدة 1-3. ومع ذلك، ILM هو غير اساسي في شبكية العين الكبار، ويمكن إزالتها جراحيا في بعض الأمراض دون التسبب في اضرار في شبكية العين 4. في العلاج الجيني، ويصبح هذا الغشاء حاجز مادي لالتنبيغ كفاءة شبكية العين باستخدام AAVs عن طريق الحقن intravitreal 5.

من خلال تشجر واسعة من العمليات، وخلايا مولر توفر سوبو الغذائية والتنظيميRT إلى كل من الخلايا العصبية للشبكية وخلايا الأوعية الدموية. وتشارك خلايا مولر أيضا في تنظيم التوازن في شبكية العين، في تشكيل وصيانة BRB 6. منعطفات ضيقة بين الخلايا البطانية الشعرية الشبكية، مولر الخلايا، الخلايا النجمية وpericytes تشكل BRB. BRB يمنع بعض المواد من دخول retina.In أمراض كثيرة مثل اعتلال الشبكية السكري، وانسداد الوريد الشبكي وأمراض الجهاز التنفسي، ونقص الأكسجين لشبكية العين يسبب تسرب من خلال BRB 7-9. ويرتبط هذا التمزق مع زيادة في نفاذية الأوعية الدموية مما يؤدي إلى وذمة وعائية المنشأ، انفصال الشبكية وتلف شبكية العين.

وترتبط خلايا مولر بإحكام مع الأوعية الدموية والغشاء القاعدي، ولعب دورا هاما في كل من BRB وILM النزاهة. ونتيجة لذلك، واصفة الخلايا الدبقية مولر غير ذات أهمية خاصة لدراسة الحالة المادية لهذه الحواجز الشبكية.

كلاسيكيحليف، ويقاس BRB النفاذية باستخدام الفحص الأزرق ايفانز تتكون من حقن النظامية ايفانز صبغة زرقاء، الذي يربط غير تساهميا لألبومين البلازما. ويقيس هذا الاختبار تسرب الزلال (البروتين من حجم متوسط، ~ 66 كيلو دالتون) من الأوعية الدموية في شبكية العين (انظر بروتوكولات القسم 5) 10. بدلا من ذلك، تسرب الأوعية الدموية يمكن تصور من قبل تصوير الأوعية مضان شبكية العين مما يدل على تسرب فلوريسئين (جزيء صغير، ~ 359 دا؛ انظر بروتوكولات القسم 6) 11. ومع ذلك، على حد سواء أساليب تسمح تقييم نفاذية BRB إلى جزيئات صغيرة والبروتينات لكنها لا توفر المعلومات حول سلامة ILM.

وبالتالي، لدراسة BRB النفاذية، واستخدمنا طريقة مقرها AAV أن يعطي معلومات عن نفاذية BRB لجزيئات أكبر (على سبيل المثال، والجسيمات AAV، 25 قطرها نانومتر). في الواقع، يمكن أن أسلوبنا كشف عن وجود AAV التحوير في الدم، الأمر الذي من شأنه أن يوحي بأن ~ الجسيمات 25 نانومتر قطر من شأنهتكون قادرة على التسلل إلى مجرى الدم. يوفر هذا الأسلوب أيضا معلومات عن هيكل ILM والبروتينات المصفوفة خارج الخلية في الحالات المرضية. الخيارين AAV مفيدة لهذه الدراسة: AAV5 وShH10. حقن Subretinally، AAV5 لديه انتحاء الطبيعي لخلايا مستقبلة للضوء في شبكية العين والظهارة الصبغية 12 ولكن لا يمكن أن يحصل عبر لشبكية العين الخارجية عندما تدار في الجسم الزجاجي في البرية من نوع شبكية العين مع ILM سليمة 5،13. ShH10 هو البديل AAV التي تم تصميمها خصيصا لاستهداف الخلايا الدبقية على الخلايا العصبية 14،15. ShH10 التسميات بشكل انتقائي خلايا مولر في كل من شبكية العين السليمة والمريضة مع زيادة الكفاءة في شبكية العين مع الحواجز المعرضة للخطر (16). هذه الأدوات الفيروسية إلى جانب immuhistochemistry وتحليل DNA الدم توفر معلومات عن حالة الحواجز الشبكية ومشاركتها في مرض (الشكل 1).

Protocol

ويهتم جميع الحيوانات المستخدمة في هذه الدراسة لوالتعامل معها وفقا لبيان ARVO لاستخدام الحيوانات في العيون والبحوث الرؤية. 1. إنتاج المؤتلف AAV (rAAV) بواسطة عابر ترنسفكأيشن من كلوة-293 خلايا 17،18 <p class="jove_content" style=";text-align:right;direction:rtl"…

Representative Results

ونحن نتوقع زيادة التنبيغ شبكية العين من مولر الخلايا الدبقية باستخدام ShH10 إذا يظهر نموذج حيواني الاضطرابات في هيكل ILM (الشكل 2A – B). على سبيل المثال، لقد أظهرنا أنه في غياب Dp71 والأهداف ShH10 وجه التحديد ولكن بشكل أكثر كفاءة الخلايا الدبقية مولر عن طريق ا?…

Discussion

وBRB ينظم تبادل الجزيئات بين الدم وشبكية العين. ويرتبط انهيارها يعانون من أمراض مختلفة مثل اعتلال الشبكية السكري أو الضمور البقعي المرتبط بالعمر (AMD). أظهرنا مؤخرا أنه في الدستروفين خروج المغلوب الماوس، والذي يعرض نفاذية BRB، تصبح الشبكية أكثر تساهلا لتوصيل الجينات بوس…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank the imaging platform of the Institut de la Vision. We acknowledge the French Muscular Dystrophy Association (AFM) for a PhD fellowship to O.V. and Allergan INC. This work performed in the frame of the LABEX LIFESENSES [reference ANR-10-LABX-65] was supported by French state funds managed by the ANR. We thank Peggy Barbe, and Mélissa Desrosiers for technical assistance with AAV preparations. We are grateful to Stéphane Fouquet for excellent technical assistance in confocal microscopy and his expert input with the interpretation of the results.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
C57BL6J mice strain JANVIER LABS mice
Ketamine 500 Virbac France anesthetic
Xylazine Rompun 2% Bayer Healthcare anesthetic
Neosynephrine 5% Faure Europhta dilatant
Mydriaticum 0,5% Thea dilatant
Sterdex Novartis anti-inflammatory
Cryomatrix embedding resin Thermo Scientific 6769006
Superfrost Plus Adhesion Slides Thermo Scientific 10143352 slides
anti-laminin  Sigma L9393 antibody
anti-rhodopsin clone 4D2  Millipore MABN15 antibody
anti-glutamine synthetase clone GS-6  Millipore MAB302 antibody
Anti-Glial Fibrillary Acidic Protein Dako 334 antibody
PNA Lectin  Invitrogen L32459 probe
Alexa fluor conjugated secondary antibodies  Invitrogen antibody
Fluorsave reagent Calbiochem 345789 mounting medium
QIAmp DNA Micro Kit  QIAGEN 56304
GoTaq DNA polymerase Promega M3001
Evans Blue dye  Sigma E2129  dye
5 µm filter  Millipore
Sodium Citrate  Sigma S1804
Citric acid  Sigma C1909-2.5KG
Formamide spectrophotometric  Sigma 295876-2L
Fluorescein Sigma F2456  dye
Micron III Phoenix Research Labs Microscopy system based on 3-CCD color camera, frame grabber, and off-the-shelf software enables researchers to image mouse retinas.
Insulin Syringes Terumo SS30M3109 
Syringe 10 µl Hamilton Dutscher 74487 Seringue 1701
Needle RN G33, 25 mm, PST 2  Fisher Scientific 11530332 Intravitreal Injection
UltraMicroPump UMP3 World Precision Instruments UMP3 Versatile injector uses microsyringes to deliver picoliter volumes
UltraMicroPump (UMP3) (one) with SYS-Micro4 Controller UMP3-1 Digital controller
Binocular magnifier SZ76 ADVILAB ADV-76B2 Zoom 0.66 x 5 x LEDs with stand epi and dia / Retinas dissection
Spring scissors straight – 8,5cm Bionic France S.a.r.l 15003-08 Retinas dissection
Micro-ciseaux de Vannas courbe 15004-08
Pince Dumont 5 11254-20
Veriti 96-Well Thermal Cycler Life technologies 4375786 Thermocycler
Ultrasonic cleaner  Laboratory Supplies G1125P1T
Nanosep 30k omega tubes  VWR
Speedvac Fisher Scientific SC 110 A
Spectrofluorometer  TECAN  infinite M1000

Referências

  1. Halfter, W. Disruption of the retinal basal lamina during early embryonic development leads to a retraction of vitreal end feet, an increased number of ganglion cells, and aberrant axonal outgrowth. J Comp Neurol. 397 (1), 89-104 (1998).
  2. Halfter, W., Dong, S., Balasubramani, M., Bier, M. E. Temporary disruption of the retinal basal lamina and its effect on retinal histogenesis. Dev Biol. 238 (1), 79-96 (2001).
  3. Halfter, W., Willem, M., Mayer, U. Basement membrane-dependent survival of retinal ganglion cells. Invest Ophthalmol Vis Sci. 46 (3), 1000-1009 (2005).
  4. Abdelkader, E., Lois, N. Internal limiting membrane peeling in vitreo-retinal surgery. Surv Ophthalmol. 53 (4), 368-396 (2008).
  5. Dalkara, D., et al. Inner limiting membrane barriers to AAV-mediated retinal transduction from the vitreous. Mol Ther. 17 (12), 2096-2102 (2009).
  6. Bringmann, A., et al. Muller cells in the healthy and diseased retina. Prog Retin Eye Res. 25 (4), 397-424 (2006).
  7. Eichler, W., Kuhrt, H., Hoffmann, S., Wiedemann, P., Reichenbach, A. VEGF release by retinal glia depends on both oxygen and glucose supply. Neuroreport. 11 (16), 3533-3537 (2000).
  8. Kaur, C., Foulds, W. S., Ling, E. A. Blood-retinal barrier in hypoxic ischaemic conditions: basic concepts, clinical features and management. Prog Retin Eye Res. 27 (6), 622-647 (2008).
  9. Kaur, C., Sivakumar, V., Foulds, W. S. Early response of neurons and glial cells to hypoxia in the retina. Invest Ophthalmol Vis Sci. 47 (3), 1126-1141 (2006).
  10. Xu, Q., Qaum, T., Adamis, A. P. Sensitive blood-retinal barrier breakdown quantitation using Evans blue. Invest Ophthalmol Vis Sci. 42 (3), 789-794 (2001).
  11. Amato, R., Wesolowski, E., Smith, L. E. Microscopic visualization of the retina by angiography with high-molecular-weight fluorescein-labeled dextrans in the mouse. Microvasc Res. 46 (2), 135-142 (1993).
  12. Yang, G. S., et al. Virus-mediated transduction of murine retina with adeno-associated virus: effects of viral capsid and genome size. J Virol. 76 (15), 7651-7660 (2002).
  13. Li, W., et al. Gene therapy following subretinal AAV5 vector delivery is not affected by a previous intravitreal AAV5 vector administration in the partner eye. Mol Vis. 15, 267-275 (2009).
  14. Koerber, J. T., et al. Molecular evolution of adeno-associated virus for enhanced glial gene delivery. Mol Ther. 17 (12), 2088-2095 (2009).
  15. Klimczak, R. R., Koerber, J. T., Dalkara, D., Flannery, J. G., Schaffer, D. V. A novel adeno-associated viral variant for efficient and selective intravitreal transduction of rat Muller cells. PLoS One. 4 (10), e7467 (2009).
  16. Vacca, O., et al. AAV-mediated gene delivery in Dp71-null mouse model with compromised barriers. Glia. , (2013).
  17. Choi, V. W., Asokan, A., Haberman, R. A., Samulski, R. J. Production of recombinant adeno-associated viral vectors. Curr Protoc Hum Genet. 12 (Unit 12 19), (2007).
  18. Choi, V. W., Asokan, A., Haberman, R. A., Samulski, R. J. Production of recombinant adeno-associated viral vectors for in vitro and in vivo use. Curr Protoc Mol Biol. 16 (Unit 16 25), (2007).
  19. McClure, C., Cole, K. L., Wulff, P., Klugmann, M., Murray, A. J. Production and titering of recombinant adeno-associated viral vectors. J Vis Exp. (57), e3348 (2011).
  20. Aurnhammer, C., et al. Universal real-time PCR for the detection and quantification of adeno-associated virus serotype 2-derived inverted terminal repeat sequences. Hum Gene Ther Methods. 23 (1), 18-28 (2012).
  21. Chiu, K., Chang, R. C., So, K. F. Intravitreous injection for establishing ocular diseases model. J Vis Exp. (8), 313 (2007).
  22. Kolstad, K. D., et al. Changes in adeno-associated virus-mediated gene delivery in retinal degeneration. Hum Gene Ther. 21 (5), 571-578 (2010).
  23. Sene, A., et al. Functional implication of Dp71 in osmoregulation and vascular permeability of the retina. PLoS One. 4 (10), e7329 (2009).
  24. Benard, R. A New Quantifiable Blood Retinal Barrier Breakdown Model In Mice. ARVO Annual Meeting. , (2011).
check_url/pt/52451?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Vacca, O., El Mathari, B., Darche, M., Sahel, J., Rendon, A., Dalkara, D. Using Adeno-associated Virus as a Tool to Study Retinal Barriers in Disease. J. Vis. Exp. (98), e52451, doi:10.3791/52451 (2015).

View Video