Summary

Иммуногистохимия и множественные Маркировка с антителами из того же вида-хозяина по изучению взрослых гиппокампа нейрогенеза

Published: April 22, 2015
doi:

Summary

This video article illustrates a comprehensive protocol to detect and quantify all stages of adult hippocampal neurogenesis within the same tissue section. We elaborated a method to overcome the limitations of indirect multiple immunofluorescence that arise when suitable antibodies from different host species are unavailable.

Abstract

Нейрогенез является строго регулируется, многоступенчатый процесс, в котором новые нейроны генерируются из активированного нервной стволовой клетки с помощью более совершенных промежуточных подтипов предшественников. Каждый из этих подтипов выражает набор конкретных молекулярных маркеров, которые, вместе с конкретными морфологических критериев, могут быть использованы для их идентификации. Как правило, иммунофлуоресцентные методы применяются с участием подтипов специфических антител в сочетании с экзо- или эндогенных маркеров пролиферации. Здесь мы опишем иммунного методы для обнаружения и количественного определения всех этапах взрослого гиппокампа нейрогенеза. Они включают в себя применение тимидина аналогов, transcardial перфузии, обработки ткани, тепло-индуцированной поисковых эпитоп, ABC иммуногистохимических, рассеянный непрямой иммунофлюоресценции, конфокальной микроскопии и сотовый количественной оценке. Кроме того, мы представляем очередную несколько протоколов иммунофлюоресценции, которая обходит проблемы ˙Usually, вытекающие из необходимости использования первичных антител, поднятые в одних и тех же видов хозяев. Это позволяет точно идентифицировать все гиппокампа подтипов предшественников вместе с маркером пролиферации в пределах одного раздела. Эти методы являются мощным инструментом для изучения регуляции различных подтипов предшественников параллельно, их участие в патологий головного мозга и их роль в специфических функций головного мозга.

Introduction

Две области мозга конструктивно генерировать новые нейроны на протяжении всей жизни, субвентрикулярная зона боковых желудочков и субгранулярной зона (SGZ) в зубчатой ​​извилине гиппокампа (ГД). Новорожденные нейроны происходят из нервных клеток-предшественников и пройти через различные этапы морфологического и физиологического развития до достижения зрелости 1,2. С медленно деления радиальной глии, как стволовые клетки (тип 1) последовательных стадий переходные делящиеся клетки-предшественники промежуточных возникает. Более недифференцированные подтипов (тип 2a и 2b типа) имеют неправильную форму с короткими, касательных процессов. Они генерируют нейробласты (тип 3), которые постепенно выйти из клеточного цикла, чтобы стать незрелые нейроны (с дендриты распространялась и на молекулярном слое) и, наконец, интегрироваться в гиппокампе сети, зрелые зернистых клеток. Из-за их особых физиологических особенностей эти клетки обеспечивают схемы с улучшенными пластичность 3 suggesка уникальную роль в гиппокампе функции. На самом деле, исследования последнего десятилетия вызвал значительный доказательства того, что нейрогенез вносит свой ​​вклад в пространственной памяти, разделение образов и эмоционального поведения 4,5.

Нейрогенез может быть изучено с использованием различных подходов. Аналоги тимидина включить в ДНК во время S-фазы клеточного цикла и позволяют рождение знакомств, количественного и судьба анализ новорожденных клеток 6-8. Последовательное применение различных аналогов тимидина (например, CldU, EDU или ПИН) могут быть использованы для изучения обновление клеток или клеточных популяций, родившихся в различные моменты времени в ходе эксперимента 9. Альтернативный, эндогенный маркер клеточной пролиферации является Ki67. Это выражается в делящихся клетках на всех этапах клеточного цикла (G1, S, G2, M), за исключением фазы покоя (G0) и в начале G1 10,11. Для анализа фенотипа новорожденных клеточных популяций у взрослых dentatе извилины несколько сценических конкретных молекулярных маркеров может быть использован, например, GFAP, нестина, DCX и NeuN 1,6. GFAP является маркером зрелых астроцитов, но также выражается в радиальной глии-подобные клетки во взрослом переднего мозга. Нестин представляет собой промежуточный нити, характерные для радиальных глиальных клеток, как и в начале промежуточных клеток-предшественников. DCX является ассоциированный с микротрубочками белок экспрессируется в промежуточных предшественников, нейробластов и незрелых нейронов. На основании (со) выражения этих трех маркеров и морфологических особенностей меченых клеток четыре различных подтипов клеток-предшественников можно выделить: тип 1 (GFAP +, нестин +, DCX -), тип 2а (GFAP -, нестин + , DCX -), тип 2б (GFAP -, нестин +, DCX +) и 3 (GFAP -, нестин -, DCX +) 1. Co-маркировка DCX вместе с NeuN, которая выражается в постмитотических нейронов, позволяет дифференцировать immaturе (DCX +, NeuN +) и зрелых (DCX -, NeuN +) гранул нейроны.

Указанные выше маркеры часто используются для иммунофлуоресцентным сотрудничества маркировки и последующего конфокальной микроскопии, чтобы проанализировать количество и личности новорожденных клеток. Это обычно требует антител из различных видов хозяев, чтобы предотвратить нежелательное антител перекрестной реактивности. Тем не менее, большинство первичных антител, пригодных для исследования нейрогенеза поднимаются либо у кроликов или мышей (например, мыши α-BrdU, мыши α-NeuN, кролика α-Ki67, кролика α-GFAP). Это приводит к серьезным ограничениям в количестве и комбинации антигенов, которые могут быть оценены в одной секции. Это, в свою очередь, не только увеличивает усилие окрашивания, а несколько окрашивание должны быть выполнены, но также может поставить под угрозу достоверность результатов. Кроме того, некоторые антигены, восприимчивы к фиксации формалином индуцированных эпитопа маскировки (например, Ki67, Нестин). Здесь мы опишем изменения от классических протоколов единичного и множественного иммунноокрашивания (например, поиск эпитоп, несколько последовательный иммуноокрашивание, использование нестин-GFP трансгенных мышей 12), что преодолеть многие из этих проблем. В частности, протокол последовательного многократного иммунофлюоресценции позволяет окрашивание против до четырех различных антигенов, даже если часть антител, полученных из того же хоста. Это дает возможность одновременно регистрировать типа 1, типа 2а, 2b типа и клеток типа 3-предшественников, а также их пролиферативную активность в течение одной секции.

Protocol

ПРИМЕЧАНИЕ: Все процедуры, связанные с живых животных были проведены в соответствии с директивой ЕС 86/609 / EEC руководящие принципы по уходу и использованию лабораторных животных и утвержденной местным комитетом по этике (Thüringer Landesamt für Lebensmittelsicherheit унд Verbraucherschutz). 1. внутриб?…

Representative Results

Мы применили методы, описанные выше, чтобы количественно определяет и характеризует новорожденных клеток в послеродовом и взрослых гиппокампа. Поэтому мы использовали дикого типа и нейрогенез с дефицитом циклин D2 выбить (Ccnd2 Ko) мышей содержали в условиях, известных влияют на скор?…

Discussion

Количественная и идентификация субпопуляций новорожденных клеток является центральным вопросом во взрослой исследований нейрогенез. Сочетание распространения маркеров и антител против белков, высказанных в ходе определенных этапах взрослого нейрогенеза позволяет иммуногистохим?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank S. Tausch for excellent technical assistance. The work was supported by BMBF (Bernstein Focus 01GQ0923) and DFG (FOR1738).

Materials

Name Company Catalog Number Comments & Dilutions
Thymidine analog administration
5-Bromo-2′-deoxyuridine, BrdU Sigma-Aldrich B9285 toxic (mutagenic, teratogenic)
5-Chloro-2′-deoxyuridine, CldU Sigma-Aldrich C6891
5-Chloro-2′-deoxyuridine, CldU MP Biomedicals 2105478
5-Iodo-2′-deoxyuridine, IdU MP Biomedicals 2100357
Tissue preparation
Isoflurane-Actavis Piramal Healthcare 700211
Paraformaldehyde powder (PFA) Riedel-De Häen 16005 toxic, flammable
Perfusion pump PD5206 Heidolph Instruments 523-52060-00
Masterflex Tygon lab tubing, Ø 0.8 mm  Thermo Fischer Scientific 06409-13
Feeding needle, straight, 21G, 1.75mm olive tip, 40mm Agnthos 1036
Freezing microtome Microm HM 400 Thermo Fischer Scientific
24 Well Cell Culture Multiwell Plates Greiner Bio-One 662160
Immunohistochemistry
Tefal Vitacuisine Steamer Tefal VS 4001
Netwell 24mm Polyester Mesh Membrane Inserts Pre-Loaded in 6-Well Culture Plates Corning 3479
Netwell 15mm Polyester Mesh Membrane Inserts Pre-Loaded in 12-Well Culture Plates Corning 3477
Netwell Plastic 6-Well Carrier Kit for 24mm Polyester Mesh Membrane Inserts Corning 3521
Netwell Plastic 12-Well Carrier Kit for 15mm Polyester Mesh Membrane Inserts Corning 3520
Vectastain Elite ABC Kit Vector Laboratories PK-6100
DAB (3,3′-Diaminobenzidine tetrahydrochloride hydrate) Sigma-Aldrich D-5637 carcinogenic, light sensitive
Fluoromount-G SouthernBiotech 0100-01
Primary antibodies
rabbit IgG1 α-Ki67 Novocastra/ Leica Biosystems NCL-L-Ki67MM1 DAB 1:400/IF 1:100; requires epitope retrieval
rabbit α-GFAP, AS-3-GF Synaptic Systems 173 002 1:500
goat IgG (H+L) α-GFP Acris Antibodies R1091P 1:300
mouse IgG1 α-nestin Abcam ab6142 1:200; requires epitope retrieval
guinea pig IgG (H+L) α-Doublecortin Merck Millipore AB2253 1:500
rat IgG2a α-BrdU (ascites) AbD Serotec/ Bio-Rad OBT0030CX for detection of BrdU; DAB 1:500/IF 1:400
rat IgG2a α-BrdU (purified) AbD Serotec/ Bio-Rad OBT0030   for detection of CldU; DAB 1:500/IF 1:250-400
mouse IgG1ĸ α-BrdU BD Biosciences 347580 for detection of IdU; DAB 1:500/IF 1:350
mouse IgG1 α-NeuN Merck Millipore MAB377 1:500
Secondary antibodies
donkey α-guinea pig IgG (H+L)-Biotin Dianova 711-065-152 1:500
donkey α-rat IgG (H+L)-Biotin Dianova 712-065-150 1:500
donkey α-mouse IgG (H+L)-Biotin Dianova 715-065-151 1:500
goat α-rat IgG (H+L)-Alexa Fluor 488 Molecular Probes A11006 1:250
donkey α-goat IgG (H+L)-Alexa Fluor 488 Molecular Probes A11055 1:250
donkey α-mouse IgG (H+L)-FITC, Fab-Fragment Dianova 715-097-003 1:100
donkey α-mouse IgG (H+L)-Alexa Fluor 647 Dianova 715-605-151 1:250
donkey α-guinea pig IgG (H+L)-Alexa Fluor 647 Dianova 706-605-148 1:250
donkey α-rat IgG (H+L)-Rhodamine Red-X Dianova 712-295-150 1:250
donkey α-rabbit IgG (H+L)-Rhodamine Red-X Dianova 711-295-152 1:250
donkey α-guinea pig IgG (H+L)-Rhodamine Red-X Dianova 706-296-148 1:250
Streptavidin-Rhodamine Red-X  Dianova 016-290-084 1:500
goat α-rabbit IgG (H+L)-AMCA Dianova 111-155-144 1:250, works only with rabbit α-GFAP
Hoechst 33342 Molecular Probes H3570 1:1000
DAPI Molecular Probes D1306 1:1000
Blocking
Fab-fragment donkey α-mouse IgG (H+L) Dianova 715-007-003 1:20
Fab-fragment donkey α-rabbit IgG (H+L) Dianova 711-007-003 1:20
Normal donkey serum Merck Millipore S30
Normal rabbit serum Dianova 011-000-010
Normal goat serum Dianova 005-000-001
Bovine Serum Albumine Sigma-Aldrich A7906
Histology
Cresyl violett Sigma-Aldrich C5042
Neo-Clear Merck Millipore 109843 non-toxic xylene substitute
Neo-Mount Merck Millipore 109016 permanent mounting medium
Microscopy
Axioskop 2 Carl Zeiss Microscopy
LSM 710 Carl Zeiss Microscopy

Referências

  1. Kempermann, G., Jessberger, S., Steiner, B., Kronenberg, G. Milestones of neuronal development in the adult hippocampus. Trends Neurosci. 27 (8), 447-452 (2004).
  2. Ge, S., Sailor, K. A., Ming, G. L., Song, H. Synaptic integration and plasticity of new neurons in the adult hippocampus. J Physiol. 586 (16), 3759-3765 (2008).
  3. Ge, S., Yang, C. H., Hsu, K. S., Ming, G. L., Song, H. A critical period for enhanced synaptic plasticity in newly generated neurons of the adult brain. Neuron. 54 (4), 559-566 (2007).
  4. Castilla-Ortega, E., Pedraza, C., Estivill-Torrus, G., Santin, L. J. When is adult hippocampal neurogenesis necessary for learning? evidence from animal research. Rev Neurosci. 22 (3), 267-283 (2011).
  5. Deng, W., Aimone, J. B., Gage, F. H. New neurons and new memories: how does adult hippocampal neurogenesis affect learning and memory. Nat Rev Neurosci. 11 (5), 339-350 (2010).
  6. Encinas, J. M., Enikolopov, G. Identifying and quantitating neural stem and progenitor cells in the adult brain. Methods Cell Biol. 85, 243-272 (2008).
  7. Burns, K. A., Kuan, C. Y. Low doses of bromo- and iododeoxyuridine produce near-saturation labeling of adult proliferative populations in the dentate gyrus. Eur J Neurosci. 21 (3), 803-807 (2005).
  8. Cameron, H. A., McKay, R. D. Adult neurogenesis produces a large pool of new granule cells in the dentate gyrus. J Comp Neurol. 435 (4), 406-417 (2001).
  9. Vega, C. J., Peterson, D. A. Stem cell proliferative history in tissue revealed by temporal halogenated thymidine analog discrimination. Nat Methods. 2 (3), 167-169 (2005).
  10. Scholzen, T., Gerdes, J. The Ki-67 protein: from the known and the unknown. J Cell Physiol. 182 (3), 311-322 (2000).
  11. Brown, D. C., Gatter, K. C. Ki67 protein: the immaculate deception. Histopathology. 40 (1), 2-11 (2002).
  12. Yamaguchi, M., Saito, H., Suzuki, M., Mori, K. Visualization of neurogenesis in the central nervous system using nestin promoter-GFP transgenic mice. Neuroreport. 11 (9), 1991-1996 (2000).
  13. Kempermann, G., Kuhn, H. G., Gage, F. H. More hippocampal neurons in adult mice living in an enriched environment. Nature. 386 (6624), 493-495 (1997).
  14. Sicinski, P., et al. Cyclin D2 is an FSH-responsive gene involved in gonadal cell proliferation and oncogenesis. Nature. 384 (6608), 470-474 (1996).
  15. Ansorg, A., Witte, O. W., Urbach, A. Age-dependent kinetics of dentate gyrus neurogenesis in the absence of cyclin D2. BMC Neurosci. 13, 46 (2012).
  16. Taupin, P. BrdU immunohistochemistry for studying adult neurogenesis: paradigms, pitfalls, limitations, and validation. Brain Res Rev. 53 (1), 198-214 (2007).
  17. Lewis Carl, S. A., Gillete-Ferguson, I., Ferguson, D. G. An indirect immunofluorescence procedure for staining the same cryosection with two mouse monoclonal primary antibodies. J Histochem Cytochem. 41 (8), 1273-1278 (1993).
  18. Burry, R. W. Controls for immunocytochemistry: an update. J Histochem Cytochem. 59 (1), 6-12 (2011).
  19. Tuttle, A. H., et al. Immunofluorescent detection of two thymidine analogues (CldU and IdU) in primary tissue. J Vis Exp. (46), 6-12 (2010).
  20. Miller, R. T., Swanson, P. E., Wick, M. R. Fixation and epitope retrieval in diagnostic immunohistochemistry: a concise review with practical considerations. Appl Immunohistochem. Mol Morphol. 8 (3), 228-235 (2000).
check_url/pt/52551?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Ansorg, A., Bornkessel, K., Witte, O. W., Urbach, A. Immunohistochemistry and Multiple Labeling with Antibodies from the Same Host Species to Study Adult Hippocampal Neurogenesis. J. Vis. Exp. (98), e52551, doi:10.3791/52551 (2015).

View Video