Abstract
Este manuscrito descreve um protocolo para a detecção de defeito de transcrição de terminação in vivo. O protocolo de TRO específica de cadeia simples usando BrUTP descrito aqui é uma poderosa abordagem experimental para analisar o defeito de terminação da transcrição sob condições fisiológicas. Tal como o ensaio de TRO tradicional, baseia-se na presença de uma polimerase de transcricionalmente activos para além da extremidade 3 'do gene como um indicador de um defeito de transcrição de terminação 1. Ela supera dois principais problemas encontrados com o ensaio TRO tradicional. Em primeiro lugar, ele pode detectar se a polimerase de leitura através do sinal de terminação é a que iniciou a transcrição a partir da região do promotor proximal, ou se é simplesmente que representa uma polimerase pervasively transcrição que iniciou não especificamente a partir de um lugar no corpo ou a 3 ' terminal do gene. Em segundo lugar, pode distinguir se o sinal de polimerase transcricionalmente activo para além doa região do terminador é verdadeiramente a polimerase de ARNm transcrever readthrough sentido ou um sinal de ARN anti-sentido não codificante iniciou-terminador. Em resumo, o protocolo envolve a permeabilização das células de levedura em crescimento exponencial, permitindo que os transcritos que iniciados in vivo para alongar na presença do nucleótido BrUTP, purificando o RNA BrUTP marcado pela abordagem de afinidade, transcrição reversa do ARN nascente purificada e amplificando o cDNA usando iniciadores específicos de cadeia que flanqueiam a as regiões de terminação do gene promotor e 2.
Introduction
O ciclo de transcrição eucariótica consiste em três etapas principais; iniciação, alongamento e terminação. A terminação de transcrição por ARN-polimerase II consiste de dois distintos, passos 3 interdependentes. O primeiro passo envolve a clivagem, poliadenilação e de libertação de ARNm a partir do molde, e é imediatamente seguida por uma segunda etapa, marcada por desengate da polimerase a partir do modelo. Terminação adequada é crucial para a reciclagem da polimerase durante o início / reinício da transcrição, para evitar a interferência com a transcrição dos genes a jusante, e para manter a transcrição aberrante em cheque, limitando a transcrição de penetrante não codificante de ARN 4, 5. Apesar dos avanços recentes, a terminação é, de longe, o passo menos entendida do ciclo de transcrição de ARN polimerase II. Um ensaio fiável terminação é essencial para o estudo do mecanismo de underlying terminação da transcrição por ARN-polimerase II in vivo.
Um número de abordagens experimentais são utilizados para detectar o defeito um gene de terminação de transcrição de forma activa sob condições fisiológicas. Estes incluem Northern blot, Chip fator de terminação (imunoprecipitação da cromatina) e no ensaio de TRO tradicional. Cada uma destas técnicas tem algumas vantagens e desvantagens. O ensaio TRO tradicional costumava ser a abordagem mais confiável e sensível para a detecção de um defeito de terminação da transcrição in vivo 1. Este ensaio localiza as moléculas de polimerase transcricionalmente activos em diferentes regiões de um gene dentro da célula. Sob condições normais, o ensaio mostra moléculas de polimerase de transcrição engajadas rigorosamente distribuídas entre a região do promotor e terminador do gene (Figura 1A). Após o término com defeito, no entanto, a polimerase é incapaz de ler o sinal de terminaçãoe é detectado na região a jusante da extremidade 3 'do gene (Figura 1B).
Um defeito de terminação da transcrição é manifestada na presença de uma polimerase de sentido-transcrição que iniciada a partir da região do promotor proximal, e sendo incapaz de ler o sinal de terminação, continua a transcrição da região a jusante da extremidade 3 'de um gene, como mostrado na figura 2A. Com a constatação de que o genoma eucariota exibe a transcrição generalizada esmagadora no sentido, bem como indicações anti-senso e em torno de um gene 6, 7, 8, 9, 10, logo ficou claro que o ensaio TRO tradicional não pode detectar se o sinal de polimerase a jusante de um gene representa uma transcrição iniciada pelo promotor (Figura 2A) ou um ARN aberrante que iniciou Somewhere no meio do gene ou a jusante do elemento terminador (Figura 2B), ou a polimerase de transcrição no sentido anti-sentido a partir da extremidade 3 'do gene (Figura 2C). O ensaio específico de cadeia TRO usando BrUTP descrito aqui pode distinguir se o sinal de polimerase readthrough observada representa ARNm com sentido alargado iniciada pelo promotor ou um transcrito anti-sentido que iniciou a jusante do gene sob exame. Temos utilizado com sucesso esta abordagem para demonstrar o papel da Kin28 quinase na terminação da transcrição em brotamento levedura 2. Empregando a abordagem aqui vamos mostrar que Rna14 é necessária para a terminação da transcrição de ASC1 em brotamento levedura.
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Protocol
NOTA: Este método foi utilizado no artigo de investigação relatada em Medler, S e Ansari, A. 2.
1. Cultivar e colheita das células
- Iniciar um mL de cultura de células em meio YPD (10 g de extracto / L de levedura, 20 g / L de peptona, 2% de dextrose) 5 a partir de uma placa de Saccharomyces cerevisiae recentemente riscada.
- Deixar crescer as células durante a noite num agitador orbital a 30 ° C e 250 rpm.
- Dilui-se a cultura crescida durante a noite a 100 vezes para um volume final de 100 ml em meio YPD num frasco de 250 mL confundido.
NOTA: Um total de 100 mL de cultura é necessária por reacção TRO; Se forem necessárias várias reacções, deve ser usado um maior volume de cultura. - Crescer as células até uma densidade óptica de 0,8-1,0 a 600 nm (A 600 ~ 0,8-1,0).
- Colher as células por centrifugação a 820 xg durante 5 min a 4 ° C num tubo cónico de 50 mL estéril.
- Ressuspender as células em 10 mL de gelo frio de bu TMNffer (Tris-HCl 10 mM pH 7,5, MgCl2 5 mM, NaCl 100 mM) e incuba-se em gelo durante 5 min.
- Centrifuga-se a 820 xg durante 5 min a 4 ° C para sedimentar as células. Remova cuidadosamente o sobrenadante por aspiração.
2. permeabilização e preparação de células para Run-on Assay
- Ressuspender as células em 1 ml de solução de sarcosil a 0,6% por pipetagem para cima e para baixo suavemente usando um truncada P 1,000 ponta. Transferir a suspensão de células para um tubo de microcentrífuga de 1,5 mL gelada.
- Agitar suavemente as células a 4 ° C durante 25 min num agitador de plataforma.
NOTA: tubos de microcentrífuga deve ser embalado num tubo cónico de 50 mL com gelo para manter a temperatura a frio, evitando a possibilidade de quaisquer novos eventos de iniciação que ocorrem no promotor nesta fase. - Centrifugar as células a 1200 x g durante 6 min a 4 ° C utilizando uma mesa de centrifugação refrigerada.
- Com cuidado, aspirar o sobrenadante para remover qualquer excesso de líquido da permeabilized sedimento celular.
3. Transcrição Run-on Reaction
- Adicionar 150 uL de transcrição run-em tampão (Tris-HCl 50 mM pH 7,5, KCl 100 mM, MgCl2 10 mM, 2 mM de DTT (ditiotreitol), 0,75 mM de cada um de ATP, CTP, GTP, e BrUTP, 200 U de RNase inibidor) para a pelete de células permeabilizadas.
- Misture suavemente pipetando para cima e para baixo usando um truncada P 200 ponta.
NOTA: Se o processamento de várias amostras, manter tudo em gelo até que todas as amostras estão prontos e em seguida, avance para a próxima etapa. - Incubar durante 5 min a 30 ° C num banho de água.
NOTA: Ajustar o tempo de incubação entre 1 a 5 minutos para assegurar a incorporação óptimo de BrUTP no ARN nascente. - Parar a reacção por adição de 500 ul de reagente de isolamento de ARN de pronto-para-uso frio. Incubar durante 5 min à temperatura ambiente.
4. Extracção de ARN
- Adicionar 200 mL de pérolas de vidro lavadas com ácido para a célula suspensiem (passo 3.4) e agitar vigorosamente durante 20 min a 4 ° C num misturador de vórtice.
- Perfurar o fundo do tubo de microcentrífuga utilizando uma agulha 22 G quente e colocá-lo na parte superior de um tubo cónico de 15 mL estéril.
- Centrifuga-se a 300 xg durante 1 min a 4 ° C para recolher o lisado celular. Transferir o lisado celular para um tubo de microcentrífuga de 1,5 mL.
- Adicionar 500 uL de reagente de isolamento de ARN a frio e 200 ul de clorofórmio ao lisado celular. Misturar os conteúdos num misturador de vortex e centrifugar a 16168 xg durante 20 min a 4 ° C.
- Transferir a fase aquosa superior para um novo tubo de microcentrifugação.
- Adicionar um volume igual de fenol a frio / clorofórmio / álcool isoamílico (125: 24: 1) pH 4-5. Agita-se vigorosamente em um misturador de vórtice e centrifugar a 16168 xg durante 15 min a 4 ° C.
- Transferir a fase contendo ARN aquosa superior para um novo tubo de microcentrifugação. Repita o passo 4.6 mais duas vezes.
- Para a fase aquosa contendo o ARN final, adicionar 5 M de NaCl stocK para obter uma concentração final de 0,3 M. Adicionar 3 vezes o volume de etanol frio para precipitar o ARN.
- Incubar durante 1 hora ou durante a noite a -20 ° C.
NOTA: Execute os passos 4.9 - 4.11, enquanto as contas anti-BrdU estão sendo incubadas para bloquear (veja o passo 5.3).
- Incubar durante 1 hora ou durante a noite a -20 ° C.
- Centrifuga-se a 16168 xg durante 20 min a 4 ° C. Remover o sobrenadante e ressuspender o sedimento de ARN em 100 mL de DEPC (dietilpirocarbonato) água.
- Usar um isolamento Mini Kit RNA para separar o ARN dos nucleótidos não incorporados BrUTP. Elui-se o ARN a partir da coluna com 100 mL de água isenta de RNase.
- Incubar o ARN em um banho de água a 65 ° C durante 5 min e, em seguida, transferidos para o gelo durante pelo menos 2 min.
5. Afinidade de purificação de ARN marcado com BrUTP
- A 25 mL de anti-BrdU resolvido grânulos, adicionar 500 mL de 0,25x SSPE (Sodium Saline Fosfato EDTA) tampão de ligação (20x SSPE: 3 M NaCl, 0,2 M NaH 2 PO 4
- Repita o passo 5.1 três vezes.
- Adicionar 500 ul de tampão de bloqueio (1 x tampão de ligação, 0,1% de polivinilpirrolidona, 1 mg ultra-pura de albumina de soro bovino (BSA)) às pérolas e agitar suavemente durante 1 - 2 h a 4 ° C num agitador de plataforma.
- Lavam-se as esferas duas vezes mais com 500 uL de tampão de ligação, tal como descrito na etapa 5.1.
- Adicionar 400 ul de tampão de ligação para os grânulos.
- Transferir 100 uL de ARN (a partir do passo 4.11) directamente para os grânulos. Incubar, com agitação suave durante 1 - 2 h a 4 ° C num agitador de plataforma.
- Lava-se a grânulos sequencialmente com 500 uL de tampão de ligação, a 500 mL de tampão de sal baixo (SSPE 0,2x, EDTA 1 mM, 0,05% de Tween), 500 mL de tampão de sal elevado (0,25x SSPE, 1 mM de EDTA, 0,05% de Tween, 100 mM de NaCl), e duas vezes com 500 ul de tampão TE 1X (TET, 0,05% de Tween), que giram na200 xg durante 30 s a 4 ° C entre cada lavagem.
- Elui-se o ARN BrUTP rotuladas de grânulos sequencialmente, duas vezes com 150 ul e uma vez com 200 ul de tampão de eluição (20 mM de DTT, 150 mM de NaCl, Tris-HCl 50 mM pH 7,5, EDTA 1 mM, SDS a 0,1%), por incubação durante 4 min a 42 ° C num banho de água, seguida por uma breve centrifugação para separar os grânulos a partir do sobrenadante.
6. A precipitação do ARN BrUTP Labeled
- Adicionar 500 uL de frio de fenol / clorofórmio / álcool isoamílico (125: 24: 1) pH 4-5 para a afinidade purificado BrUTP ARN marcado. Misturar num misturador de vortex e centrifugar a 16168 xg durante 15 min a 4 ° C.
- Transferir a fase aquosa superior para um novo tubo de microcentrifugação.
- Adicionar estoque 5 M de NaCl para obter uma concentração final de 0,3 M e 3 vezes o volume de etanol frio para precipitar o ARN.
- Incubar a -20 ° C durante a noite.
- Recolhe-se o ARN precipitado por centrifugação a 16168 xg durante 30 min a 4 ° C. </ Li>
- Remover o sobrenadante e permitir que o sedimento seco ao ar durante 10 min.
- Ressuspender o sedimento de ARN em 26 jil de água com DEPC.
- Determinar a concentração final de ARN através da medição da absorvância a 260 nm utilizando um espectrofotómetro. Além disso, determinar a proporção 260/280. Um rácio ~ 2 é indicativa de uma amostra de ARN puro.
- Armazenar as amostras de RNA em alíquotas a -80 ° C até ser necessário para a síntese de cDNA.
7. transcrição reversa do RNA BrUTP marcado
- Ajustar a concentração de RNA para 100 ng / mL utilizando água DEPC. Use 0,5 ug de ARN por cada reacção de síntese de cDNA.
NOTA: A concentração de molde de ARN pode variar de 0,5 a 1,0 ug a alcançar a síntese de cDNA óptimo. - Realizar a transcrição reversa do ARN utilizando vários iniciadores reversos concebidos a jusante do local (local de terminação) de poli (A), como mostrado na Figura 3A.
- Para cada reacção de transcrição reversa, adicionam-se 5 ul de ARN TemplatE (0,5 g), 1 uL de mistura de dNTP (10 mM cada), 2 uL do iniciador reverso C, D, E, F ou G (50 ^ M cada) (ver Figura 3A) e água isenta de nuclease. O volume reaccional final em cada tubo é de 13 pL.
NOTA: O número de reacções de transcrição inversa dependerá do número de iniciadores reversos usados para a síntese de cDNA. Por exemplo, para ASC1 foram utilizados cinco iniciadores reversos e por isso cinco reacções de transcrição inversa foram criadas. Rotular os tubos como C, D, E, F e G na base do iniciador inverso utilizado para a síntese de cDNA. - Incubar os tubos contendo uma cadeia molde de ARN, de mistura de dNTP e iniciadores num termociclador a 65 ° C durante 5 min para remover qualquer conformação estrutural secundária, e depois arrefece-se a 4 ° C durante pelo menos 2 min.
- Adicionar 1 ml de transcriptase reversa (200 U / mL), tampão 4 uL e 2 ul de DTT 0,1 M a cada tubo contendo o molde de ARN e iniciador (passo 7.4). Misture com cuidado pipetando para cima e para baixo.
- Realizar a transcrição reversa através da incubação da mistura de reacção num termociclador a 42 ° C durante 60 min.
- Inactivar a transcriptase reversa a 65 ° C durante 20 min.
- Armazenar o cDNA a -20 ° C ou prosseguir para o próximo passo.
8. A amplificação de ADNc
- Realizar a reacção de PCR para a amplificação de cada preparação de ADNc (marcada C, D, E, F e G para ASC1) do passo 7.8 do seguinte modo: Molde 3.0 ADNc uL do passo 7.8, 1.0 ul iniciador directo B (10 uM), 1,0 uL iniciador C reversa ou tampão de PCR 10x polimerase D ou e ou F ou G (10? M), 2,5 mL, 0,5 uL de mistura de dNTP (10 mM cada), 1,0 mL de MgCl 2 (2,5 mM), 15,5 mL de PCR água grau de pureza, e 0,5 uL enzima polimerase termoestável.
NOTA: diferentes diluições de molde de ADNc que vão desde 1: 5 a 1: 100 devem ser testados para optimizar o rendimento do produto de PCR. Um iniciador directo único promotor proximal será utilizada para amplificar o ADNcobtidos utilizando diferentes iniciadores inversos. Por exemplo, um único iniciador B para a frente localizado perto do promotor foi usado em combinação com cinco iniciadores reversos de C para G para ASC1. BC, BD, BE, BF BG e foram usadas em tubos etiquetados como C, D, E, F e G, respectivamente, como mostrado na Figura 3A. - Executar o PCR, utilizando os seguintes parâmetros de ciclos térmicos: um ciclo de 95 ° C durante 2 min (de arranque a quente para a activação da polimerase), 30 - 40 ciclos de 95 ° C durante 30 s (desnaturação), 54 ° C durante 15 s (recozimento) , 68 ° C durante 1 min (extensão), e um ciclo de 68 ° C durante 5 min (extensão final).
NOTA: A temperatura de recozimento pode variar dependendo dos iniciadores específicos a ser utilizado e a extensão de tempo irá variar, dependendo do tamanho esperado do produto. - Separa-se o produto de PCR por electroforese em 0,8%, 1,5%, ou de 2% de agarose géis dependendo do tamanho esperado do produto.
- Quantificar o produto de PCR como descrito em El Kaderi et ai. , 2012 11.
NOTA: Como alternativa, usar estratégia em tempo real de RT-qPCR para quantificar a quantidade de transcritos nascentes.
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Representative Results
Para demonstrar a aplicabilidade do procedimento TRO-específica BrUTP-fio na detecção de um defeito de terminação da transcrição, foi utilizado um mutante de terminação-defeituoso, sensível à temperatura de RNA14 chamado rna14-1. O papel de Rna14 na terminação de transcrição por ARN-polimerase II foi demonstrada utilizando o ensaio de TRO tradicional que detectado RNA na região do terminador-proximal de genes seleccionados 1. O sinal de detecção de ARN para além da região do terminador no mutante rna14-1 à temperatura não permissiva foi interpretado como o defeito de terminação. O sinal observado, no entanto, podia ser atribuída à polimerase transcrever de forma generalizada que iniciou a transcrição de algum lugar próximo da extremidade 3 'do gene, como mostrado na Figura 2B. Para demonstrar conclusivamente o papel de Rna14 na rescisão, foi realizada TRO específica BrUTP-costa-na rna14-1mutante e as isogênico tipo selvagem estirpe a 37 ° C. Esperava-se que na estirpe de tipo selvagem, o sinal de TRO será constrangido entre as regiões promotoras e terminadoras, como mostrado na Figura 1A. No mutante rna14-1, no entanto, a polimerase vai ler o sinal de terminação e o sinal de TRO será detectado para além da extremidade 3 'do gene, como mostrado na Figura 1B e 2A.
Resumidamente, cresceram que o mutante rna14-1 e suas isogénicas células do tipo selvagem a 25 ° C até à fase mid-log e, em seguida, deslocado células a 37 ° C durante três horas. A transcrição run-on ensaio foi realizado para incorporar BrUTP em ARN nascente sintetizado por uma polimerase de ARN de transcrição activa tal como descrito acima. O BrUTP ARN marcado foi purificado e reversamente transcrito utilizando os iniciadores C, D, E, F e G mostrados na Figura 3A. O ADNc foi amplificado por PCR correspondente USIpares de primers ng BC, BD, BE, BF, e BG e fraccionados em gel de agarose (Figura 3B). Quantificação dos géis está ilustrado na Figura 3C. A presença de produtos de PCR amplificados a partir dos pares de iniciadores BE, BF, BG e no mutante rna14-1 reflecte uma terminação ler através de fenótipo (Figura 3B, pista 11 - 13; e a Figura 3C, as regiões de E, F e G). Nas células de tipo selvagem, no entanto, o sinal de TRO foi limitada até o elemento terminador (Figura 3B, pistas 2 e 3; e a Figura 3C, as regiões C e D). Não havia nenhum sinal de TRO detectável para além da região do terminador (Figura 3B, pista 4-6; e a Figura 3C, as regiões de E, F e G). Assim, foi possível detectar as transcrições nascentes iniciada pelo promotor que ler através do sinal de terminação no mutante, mas não nas células de tipo selvagem, confirmando assim que Rna14 é um factor de terminação.
Figura 1: Transcrição Run-on (TRO) Assay detecta a presença de transcricionalmente ativo RNA Polimerase em diferentes regiões de um gene. (A) Quando a interrupção é normal, não há nenhum sinal de polimerase para além da região do terminador. (B) Após a terminação com defeito, a polimerase é incapaz de ler o sinal de terminação e pode ser detectado para além da extremidade 3 'do gene. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 2: Ensaio de TRO-específica Strand. O ensaio específico de cadeia TRO pode detectar se a presença de uma polimerase de transcricionalmente activos para além da extremidade 3 'de tele gene é um verdadeiro defeito encerramento devido a uma polimerase iniciada pelo promotor de leitura através do sinal de terminação (A), ou é simplesmente uma transcrição da polimerase difusamente a transcrição em direcção sentido (B), ou é o anti-sentido ncRNA transcrever polimerase iniciar a partir da extremidade 3 '(C). Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 3: Rna14 é um fator de cessação como Polymerase Lê através do sinal de término no mutante rna14-1. (A) Representação esquemática do gene ASC1 mostrando a posição para a frente do iniciador B e cinco iniciadores reversos, C, D, E, F e G utilizado para a síntese de cDNA de RNA purificado BrUTP-rotulados. (B) cDNA feita a partir de primers reversos C, D, E, F e G foi amplificado por PCR usando os pares de primers BC, BD, BE, BF e BG, respectivamente. (C) A análise quantitativa dos dados de TRO mostrados em (B) acima, em células do tipo selvagem e rna14-1 a 37 ° C. 5S RNA foi usada como o controlo de normalização. As barras de erro representam uma unidade completa de desvio padrão com base em um mínimo de três ensaios. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
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Discussion
O protocolo TRO específica de cadeia usada aqui foi adaptado do protocolo utilizado para análise GRO-seq (Global Run On-Sequencing) em células de mamíferos 12. Nós com sucesso modificado o protocolo para estudar a transcrição nascente na brotação levedura. Para analisar especificamente o defeito terminação da transcrição, nós ajustamos o protocolo ainda mais por se livrar da etapa de hidrólise RNA. Isto permitiu-nos detectar especificamente o comprimento transcrições completas nascentes que iniciaram a partir do local de início da transcrição perto da região do promotor.
Existem várias etapas críticas do protocolo que devem ser executadas com o máximo cuidado para obter um resultado significativo. Em primeiro lugar, o protocolo deve ser realizada com células de levedura em crescimento exponencial. As células na fase log (a 600 ~ 0,8-1,0) dão os melhores resultados que a maioria das células nesta fase são em crescimento activo e exibem transcrição robusta. Em segundo lugar, o isolamento de RNA rEP deve ser realizado tão rapidamente quanto possível, a uma temperatura entre 2-4 ° C. Terceiro, antes da purificação por afinidade de Br-UMP ARN marcado, não incorporada BrUTP deve ser removido a partir da preparação de ARN. Foi utilizado um kit RNA para se livrar de BrUTP da preparação de RNA purificado. Em quarto lugar, o uso de uma transcriptase reversa robusta é crítico para a realização bem sucedida do protocolo.
O protocolo de TRO específica de cadeia simples usado aqui tem vantagens sobre a técnica de Northern blot para detectar o defeito de terminação, uma vez que é mais sensível, rápido e apresenta maior resolução. Este protocolo é também melhor do que o protocolo de TRO tradicional, uma vez que pode distinguir os transcritos de sentido a partir dos transcritos anti-sentido e se o resultado observado é devido à transcrição ou de transcrição aberrante promotor iniciada a partir de um promotor de região a jusante. O protocolo TRO específica vertente tem algumas limitações. É mais trabalhoso e demorado do que o ST constanteComeram técnicas de detecção de ARNm. Ela exige grande número de células. Portanto, a análise da transcrição de genes baixos de transcrição pode ser um problema.
Temos utilizado com sucesso esta técnica para estudar o defeito término do ciclo de transcrição RNA polimerase II em brotamento levedura 2. A abordagem pode ser estendido para estudar a terminação da transcrição por ARN polimerase I e de ARN-polimerase III na levedura bem. Com modificações apropriadas, a abordagem também pode ser aplicado para estudar o defeito de terminação da transcrição, em eucariotas superiores. Em geral, a técnica é relativamente barata e altamente reprodutível e requer equipamento padrão usado num laboratório de biologia molecular.
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Phenol-chloroform-isoamyl alcohol mixture | Sigma-Aldrich | 77619 | pH 4-5 |
| TRIzol reagent | Life technologies | 15596-026 | |
| RNase Inhibitor, human placenta | New England Biolabs | M0307S | |
| Anti-BrdU beads | Santa Cruz Biotechnology | sc-32323AC | |
| Protoscript II | New England Biolabs | M03368L | or an equivalent enzyme |
| Advantage 2 polymerase Mix | Clontech | 639201 | or an equivalent enzyme |
| 5-Bromouridine 5' triphosphate sodium salt | Santa Cruz Biotechnology | sc-214314A | |
| RNeasy Mini kit | Qiagen | 74104 | |
| ATP | New England Biolabs | N0451AA | |
| CTP | N0454AA | ||
| GTP | N0452AA | ||
| Ultra-pure bovine serum albumin (BSA) | MC Labs | UBSA-100 | |
| Asc1 B | AGATTCGTCGGTCACAAGTCC | ||
| Asc1 C | GAACTTTATACATATTCTTAGTT AGCAGTC |
||
| Asc1 D | TGTACATATGTATTTTCGCAGCA | ||
| Asc1 E | GCCAAGGAGACTGAATTTAATG | ||
| Asc1 F | CTATGGAATGGGGGTTTTAAG | ||
| Asc1 G | GGTTATGGCAGACATGCCAC | ||
| 5s cDNA | AGATTGCAGCACCTGAGT | ||
| 5’ 5s reverse | GGTTGCGGCCATATCTAC | ||
| 3’ 5s reverse | TGAGTTTCGCGTATGGTC |
References
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