Summary

En standardisert metode for måling av indre lungeoverflateområde via muspneumonektomi og proteseimplantasjon

Published: July 26, 2017
doi:

Summary

Interne lungeoverflatearealer (ISA) er et kritisk kriterium for å vurdere lungemorfologi og fysiologi i lungesykdommer og skadefremkalt alveolær regenerering. Vi beskriver her en standardisert metode som kan minimere måleforstyrrelsen for ISA i både lunge pneumonectomy og protesimplantasjon musemodeller.

Abstract

Pulmonary morphology, physiology, and respiratory functions change in both physiological and pathological conditions. Internal lung surface area (ISA), representing the gas-exchange capacity of the lung, is a critical criterion to assess respiratory function. However, observer bias can significantly influence measured values for lung morphological parameters. The protocol that we describe here minimizes variations during measurements of two morphological parameters used for ISA calculation: internal lung volume (ILV) and mean linear intercept (MLI). Using ISA as a morphometric and functional parameter to determine the outcome of alveolar regeneration in both pneumonectomy (PNX) and prosthesis implantation mouse models, we found that the increased ISA following PNX treatment was significantly blocked by implantation of a prosthesis into the thoracic cavity1. The ability to accurately quantify ISA is not only expected to improve the reliability and reproducibility of lung function studies in injured-induced alveolar regeneration models, but also to promote mechanistic discoveries of multiple pulmonary diseases.

Introduction

Lungens grunnleggende funksjon er utveksling av oksygen og karbondioksid mellom blodkar og atmosfære. Lungesykdommer som bronkopulmonal dysplasi (BPD), kronisk obstruktiv lungesykdom (KOL) og akutt respiratorisk infeksjon, resulterer i redusert ISA 2 . Forskere som studerer lungesykdommer, har utviklet flere kvantitative metoder for å evaluere morfologiske endringer i lungene, inkludert MLI, ILV, antall gassutvekslingsenheter, ISA og lungevevinnets samsvar 2 , 3 . Banebrytende studier av Weibel et al. 4 og Duguid et al. 5 sammen etablert at ISA kan brukes som et direkte mål for lungegassutvekslingskapasitet i menneskelige lunger og kan brukes som et kriterium for å bestemme emfysem alvorlighetsgrad. En rekke studier publisert i de siste fem årene har brukt lungemorfologiske parametere ( f.eks. </eM> ISA og MLI) for å vurdere morfologiske og funksjonelle endringer i muskelungen under utvikling 6 og under gjenoppretting fra skade PNX 1 , 7 . ISA beregnes ved bruk av ligning 1 8 , 9 :

ligningen

, Hvor ILV er det interne lungevolumet og MLI er en mellomparameter som representerer den lunge perifere luftrommet størrelse 10 .

PNX, den kirurgiske fjerning av en eller flere lungelabber, har blitt rapportert mye for å indusere alveolær regenerering hos mange arter, inkludert mennesker 11 , mus 1 , hunder 12 , rotter 13 og kaniner 14 , 15 . En studY av muslungene ved fjorten dager etter PNX viste at både utvidelsen av eksisterende alveoli og de novo dannelsen av alveoler bidrar til restaurering av ISA, ILV og antall alveoler i de gjenværende lungevevene 1 . Vi og andre har vist at innsetting av materialer som svamp, voks eller en tilpasset protese i det tomme thoracic hule som følger PNX ( dvs. proteseimplantasjon) forringer alveolær regenerering. Det er nå fastslått at mekanisk kraft fungerer som en av de viktigste faktorene for å starte alveolær regenerering 1 , 16 , 17 . Slike studier har fremhevet effekten av å bruke ISA-verdier fra PNX-behandlede og protese-implanterte lunger som et kriterium for kvantitativt å evaluere alveolær regenerering.

Observer bias er kjent for å vesentlig påvirke målt vaLunger for lungemorfologiske parametere ( f.eks . MIL og ILV). Standardiserte protokoller kan brukes til å eliminere denne bias ved å bestemme både ILV og MLI, som er de to parametrene som brukes i beregningen av ISA. Her gir vi svært detaljerte, standardiserte protokoller for måling av disse lungeparametrene. Det er viktig at evnen til nøyaktig kvantifisering av ISA lover å forbedre påliteligheten og reproduserbarheten av studier av lungefunksjon i skadefremkalte alveolære regenereringsmodeller og skal lette mekaniske funn i flere lungesykdommer.

Protocol

Alle prosedyrer som brukes i denne protokollen, ble utført i samsvar med anbefalingene i Retningslinjer for pleie og bruk av laboratoriedyr ved Nasjonalt institutt for biologiske vitenskap, Beijing. 8 uker gamle CD-1 mannlige mus ble plassert i en spesifikk patogenfri (SPF) -fasilitet inntil forsøkene ble utført. Surgerier ble utført ved bruk av fullbedøvede mus ( dvs. uten tåsporresponser). Etter operasjonen ble musene holdt i et varmt, fuktig rom med tilstrekkelig mat og ferskvann. Mus ble ofret ved bru…

Representative Results

Vi utførte her et eksperiment med en PNX-behandlet gruppe og en proteseimplantasjon (protese-implantert) gruppe. Disse grupperinger er de samme som grupperingene som ble brukt i en tidligere publisert studie fra vår forskningsgruppe 14 . PNX- og proteseimplantasjonsprosedyrene for mus er vist i figur 2 . 8 uker gamle CD-1 hannmus brukes til operasjonene og kvantifis…

Discussion

I denne protokollen gir vi detaljerte beskrivelser av måling av pulmonale parametere etter musen, venstre lungepNX og proteseimplantasjon. ISA anses nå å være en nøkkelstatistikk for vurdering av respiratorisk funksjon i mange lungesykdommer og ved skadefremkalt alveolær regenerering. Imidlertid, selv om lungforskningsfellesskapet er enig om bruken av ISA som en nyttig metrisk, har det hittil vært lite hensyn til standardiseringen av måling av ILV og MLI, de to parametrene som brukes til å beregne ISA. Åpenbar…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gjerne anerkjenne Nasjonalt institutt for biologiske vitenskap, Beijing for bistanden. Dette arbeidet ble støttet av Beijing Municipal Natural Science Foundation (nr. Z17110200040000).

Materials

Low cost cautery kit Fine Science Tools 18010-00
Noyes scissors Fine Science Tools 15012-12
Standard pattern forceps Fine Science Tools 11000-12
Castroviejo Micro Needle Holders Fine Science Tools 12060-01
Vessel clips Fine Science Tools 18374-44
I. V. Cannula-20 gauge Jinhuan Medical Product Co., LTD. 29P0601
Surgical suture Jinhuan Medical Product Co., LTD. F602
Mouse intubation platform Penn-Century, Inc Model MIP
Small Animal Laryngoscope Penn-Century, Inc Model LS-2-M
TOPO Small Animal Ventilator Kent Scientific RSP1006-05L
Thermal pad Stuart equipment SBH130D
Pentobarbital sodium salt Sigma P3761
Heparin sodium salt Sigma H3393
Hematoxylin Solution Sigma GHS132
Eosin Y solution, alcoholic Sigma HT110116
10 ml Pipette Thermo Scientific 170356
Paraformaldehyde Sigma P6148
O.C.T Compound Tissue-Tek 4583
cryosection machine Leica CM1950
Disposable Base Molds Fisher HealthCare 22-363-553
18 gauge needle Becton Dickinson 305199
Povidone iodine Fisher Scientific 19-027132
70% ethanol Fisher Scientific BP82011
Infusion sets for single use Weigao SFDA 2012 3661704
Phosphate buffered saline Gibco 10010023
Tapes 3M Scotch 8915
Cotton pad Vinda Dr.P
Silicone prosthesis Custom made
Brightfield microscope Olympus VS120
Ruler tool Adobe Photoshop

Referências

  1. Liu, Z., et al. MAPK-Mediated YAP Activation Controls Mechanical-Tension-Induced Pulmonary Alveolar Regeneration. Cell Rep. 16 (7), 1810-1819 (2016).
  2. Thurlbeck, W. M. Internal surface area and other measurements in emphysema. Thorax. 22 (6), 483-496 (1967).
  3. Knudsen, L., Weibel, E. R., Gundersen, H. J. G., Weinstein, F. V., Ochs, M. Assessment of air space size characteristics by intercept (chord) measurement: an accurate and efficient stereological approach. J Appl Physiol. 108 (2), 412-421 (2010).
  4. Weibel, E. R. . Morphometry of the Human Lung. , (1963).
  5. Duguid, J. B., Young, A., Cauna, D., Lambert, M. W. The internal surface area of the lung in emphysema. J Pathol Bacteriol. 88, 405-421 (1964).
  6. Branchfield, K., et al. Pulmonary neuroendocrine cells function as airway sensors to control lung immune response. Science. 351 (6274), 707-710 (2016).
  7. Ding, B. -. S., et al. Endothelial-derived angiocrine signals induce and sustain regenerative lung alveolarization. Cell. 147 (3), 539-553 (2011).
  8. Dunnill, M. S. Quantitative methods in the study of pulmonary pathology. Thorax. 17 (4), 320-328 (1962).
  9. Weibel, E. R., Gomez, M. Architecture of the human lung. Use of quantitative methods establishes fundamental relations between size and number of lung structures. Science. 137 (3530), 577-585 (1962).
  10. Thurlbeck, W. M. The internal surface area of nonemphysematous lungs. Am Rev Respir Dis. 95 (5), 765-773 (1967).
  11. Butler, J. P., et al. Evidence for adult lung growth in humans. N Engl J Med. 367 (16), 244-247 (2012).
  12. Hsia, C. C. W., Herazo, L. F., Fryder-Doffey, F., Weibel, E. R. Compensatory lung growth occurs in adult dogs after right pneumonectomy. J Clin Invest. 94 (1), 405-412 (1994).
  13. Thurlbeck, S. W. M. Pneumonectomy in Rats at Various Ages. Am Rev Respir Dis. 120 (5), 1125-1136 (1979).
  14. Cagle, P. T., Langston, C., Thurlbeck, W. M. The Effect of Age on Postpneumonectomy Growth in Rabbits. Pediatr Pulmonol. 5 (2), 92-95 (1988).
  15. Langston, C., et al. Alveolar multiplication in the contralateral lung after unilateral pneumonectomy in the rabbit. Am Rev Respir Dis. 115 (1), 7-13 (1977).
  16. Cohn, R. Factors Affecting The Postnatal Growth of The Lung. Anatomical Record. 75 (2), 195-205 (1939).
  17. Hsia, C. C., Wu, E. Y., Wagner, E., Weibel, E. R. Preventing mediastinal shift after pneumonectomy impairs regenerative alveolar tissue growth. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 281 (5), L1279-L1287 (2001).
  18. Das, S., MacDonald, K., Chang, H. -. Y. S., Mitzner, W. A simple method of mouse lung intubation. J Vis Exp. (73), e50318 (2013).
  19. Liu, S., Cimprich, J., Varisco, B. M. Mouse pneumonectomy model of compensatory lung growth. J Vis Exp. (94), (2014).
  20. Silva, M. F. R., Zin, W. A., Saldiva, P. H. N. Airspace configuration at different transpulmonary pressures in normal and paraquat-induced lung injury in rats. Am J Respir Crit Care Med. 158 (4), 1230-1234 (1998).
  21. Yilmaz, C., et al. Noninvasive quantification of heterogeneous lung growth following extensive lung resection by high-resolution computed tomography. J Appl Physiol. 107 (5), 1569-1578 (2009).
  22. Voswinckel, R., et al. Characterisation of post-pneumonectomy lung growth in adult mice. Eur Respir J. 24 (4), 524-532 (2004).
  23. Ravikumar, P., et al. Regional Lung Growth and Repair Regional lung growth following pneumonectomy assessed by computed tomography. J Appl Physiol. 97, 1567-1574 (2004).
  24. Gibney, B. C., et al. Detection of murine post-pneumonectomy lung regeneration by 18FDG PET imaging. EJNMMI Res. 2 (1), (2012).
  25. Muñoz-Barrutia, A., Ceresa, M., Artaechevarria, X., Montuenga, L. M., Ortiz-De-Solorzano, C. Quantification of lung damage in an elastase-induced mouse model of emphysema. Int J Biomed Imaging. 2012, (2012).
check_url/pt/56114?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Liu, Z., Fu, S., Tang, N. A Standardized Method for Measuring Internal Lung Surface Area via Mouse Pneumonectomy and Prosthesis Implantation. J. Vis. Exp. (125), e56114, doi:10.3791/56114 (2017).

View Video