Summary

خطوات الإعداد لقياس مفاعليه في الماوس الشرايين الشبكية السابقين فيفو

Published: May 08, 2018
doi:

Summary

العديد من أمراض العين تهدد الرؤية ترتبط باختلال ميكروفيسيلس الشبكية. ولذلك، من المهم قياس الاستجابات arteriole الشبكية للتحقيق في الآليات الفيزيولوجية المرضية الكامنة. توضح هذه المقالة بروتوكول مفصل للماوس arteriole الشبكية العزلة والتحضير لتقييم آثار المواد فعال في الأوعية على قطر الأوعية الدموية.

Abstract

عدم كفاية الأوعية الدموية والتعديلات في نضح الشبكية العادي من بين العوامل الرئيسية لأمراض تهدد البصر العين أمراض مختلفة، مثل اعتلال الشبكية السكري واعتلال الشبكية من ارتفاع ضغط الدم، وربما الزرق. ولذلك، الاستعدادات microvascular الشبكية أدوات المحوري للدراسات الفسيولوجية والدوائية لتحديد الآليات الفيزيولوجية المرضية الكامنة، وتصميم علاجات للأمراض. وعلى الرغم من الاستخدام الواسع لنماذج الماوس في أبحاث العيون، دراسات حول مفاعليه الأوعية الدموية الشبكية شحيحة في هذه الأنواع. واحد أسباب رئيسية لهذا التفاوت هو إجراءات العزل صعبة نظراً لصغر حجم هذه الأوعية الدموية الشبكية، و ~ ≤ 30 ميكرومتر في القطر لومينال. للالتفاف على مشكلة العزلة مباشرة من هذه ميكروفيسيلس الشبكية للدراسات الفنية، قمنا بإنشاء أسلوب العزل وإعداد تمكن السابقين فيفو دراسات للماوس فاسواكتيفيتي الشبكية تحت ظروف القرب الفسيولوجية . على الرغم من أن الاستعدادات التجريبية الحالية سوف تشر تحديداً إلى الشرايين الشبكية الماوس، يمكن سهولة استخدام هذه المنهجية ميكروفيسيلس من الفئران.

Introduction

اضطرابات في نضح الشبكية قد تورطت في الآلية المرضية لأمراض العين المختلفة، مثل اعتلال الشبكية السكري وارتفاع ضغط الدم اعتلال الشبكية والزرق1،،من23. وهكذا، دراسات تهدف إلى قياس مفاعليه الأوعية الدموية في شبكية العين هامة لفهم الفسيولوجيا المرضية لهذه الأمراض وتطوير علاج جديد للنهج.

نظراً لإمكانية التلاعب بالجينات في الجينوم مورين، أصبح الماوس نموذج حيوانية مستخدمة على نطاق واسع للدراسات المتعلقة بنظام القلب والأوعية الدموية4. ومع ذلك، بسبب صغر حجم الأوعية الدموية الشبكية (≤ 30 ميكرومتر)، قياس مفاعليه الأوعية الدموية في الشبكية الماوس يمثل تحديا. على سبيل المثال، تقنيات ستيريوميكروسكوبيك للقياس في فيفو محدودة في هذه الدقة البصرية وللسماح فقط للضبط الكشف عن التغييرات في القطر أو الدم تدفق في الدم الصغيرة أقل من القطر 30 ميكرون أو أقل عندما مجهزة أجهزة إضافية متطورة مثل مجهر [كنفوكل] استخدام الأصباغ الفلورية أو5،“فحص منظار الضوء البصريات التكيفية”6. وعلاوة على ذلك، تفسير القياسات في فيفو يهدف إلى تحديد المحلية إشارات يمكن مرتبك الآليات في الأوعية الدموية الشبكية بالتخدير، التغيرات في ضغط الدم النظامية وتأثير الأوعية الدموية خلف المقلة.

ولذلك، قمنا بتطوير طريقة لقياس استجابات الأوعية الدموية الشبكية الماوس مع عالية الدقة البصرية السابقين فيفو. تسمح هذه التقنية المقدمة في هذه الوثيقة التصور للشرايين الشبكية عن طريق إحالة الخفيفة الميكروسكوب. يوفر هذا الأسلوب، التي يمكن أن تستخدم أيضا في الفئران، الوصول إلى مزايا الجينات تستهدف التكنولوجيا في أبحاث الأوعية الدموية العين.

Protocol

وقد أقر الإجراءات التجريبية لهذه الدراسة بالحيوانات رعاية اللجنة من راينلاند بالاتينات، ألمانيا. رعاية الحيوان تتفق مع المبادئ التوجيهية المؤسسية والرابطة للبحث في بيان الرؤية و “طب العيون” (آرفو) للاستخدام الحيوانات في العيون والرؤية للبحث. الحيوانات يعاملون وفقا لتوجيه الاتحاد الأورو…

Representative Results

U-46619 تنتج استجابات تعتمد على تركيز مضيق للأوعية في الشرايين الشبكية من الفئران البرية من نوع C57Bl/6J الخلفية. في تركيز من 10-6 متر، كان الانخفاض في القطر لومينال إيتش فايف زيرو % من القطر يستريح. ويبين الشكل 9 ألف منحنى تركيز ممثل-استجابة لأحد arteriole الشبكي?…

Discussion

قياس استجابات الأوعية الدموية في الشبكية الماوس هو التحدي نظراً لصغر حجم الأوعية الدموية الشبكية. مع هذه التقنية المقدمة، هي تصور الشرايين الشبكية بالفحص المجهري الخفيفة المنقولة. هذا ممكن، أنها شفافة الشبكية معزولة. وميزة هذا الأسلوب هو عالية الدقة البصرية. القرار المكانية المحسوب مقص?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل منح من أوند إرنست بيرتا جريمكي Stiftung والألمانية Deutsche أوفثالمولوجيشي (الكلب).

Materials

Steel Scissors Carl Roth GmbH 3576.1 1x 140 mm
Eye Scissors Geuder G-19390 1x straight, 10.5 cm
Precision tweezers, straight with fine tips Carl Roth GmbH LH68.1 2x type 4
Precision tweezers, straight with extra fine tips Carl Roth GmbH LH53.1 2x type 5
Vannas capsulotomy scissors Geuder 19760 1x straight, 77 mm
Student Vannas Spring Scissors Fine Science Tools 91501-09 1x curved,
Barraquer Needle Holder Geuder G-17500 1x curved, 120 mm
Needle Becton, Dickinson and Company 305128 1x 30 G
Glass Capillaries (for producing micropipettes) Drummond Scientific Company 9-000-1211 1x (1.2 x 0.8 mm; outer/inner diameter)
Nylon Suture Alcon 198001 1x 10-0
Nunclon cell culture dish Thermo Fisher Scientific 153066 1x 35 mm diameter
Nunclon cell culture dish Thermo Fisher Scientific 172931 1x 100 mm diameter
Discofix C Braun 16500C 10 cm
Histoacryl adhesive B. Braun Surgical, S.A. 1050052
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
Pericyclic pump  (CYCLO II) Carl Roth GmbH EP76.1 1x
Vertical Pipette Puller Model 700C David Kopf Instruments 1x
Microscope (Vanox-T AH-2) Olympus 1x
Water immersion objective LUMPlanFL, 1.0 NA Olympus 1x
Digital camera (TK-C1381) JVC 1x
Perfusion chamber self-made 1x
Name Company Catalog Number Comments
Drugs and Solutions
Ethanol Carl Roth GmbH K928.4
Calcium chloride dihydrate (CaCl2) Carl Roth GmbH 5239.1
Kalium chloride (KCl) Carl Roth GmbH 6781.1
Kalium dihydrogen phosphate (KH2PO4) Carl Roth GmbH 3904.2
Magnesium sulphate (MgSO4) Carl Roth GmbH 261.2
Sodium chloride (NaCl) Carl Roth GmbH 9265.2
Sodium hydrogen carbonate (NaHCO3) Carl Roth GmbH 0965.3
α-(D)-(+)- Glucose monohydrate Carl Roth GmbH 6780.1
9,11-dideoxy-9α,11α-methanoepoxy prostaglandin F2α (U-46619) Cayman Chemical 16450
Acetylcholine chloride Sigma-Aldrich A6625-25G

Referências

  1. Toda, N., Nakanishi-Toda, M. Nitric oxide: ocular blood flow, glaucoma, and diabetic retinopathy. Prog Retin Eye Res. 26 (3), 205-238 (2007).
  2. Schuster, A. K., Fischer, J. E., Vossmerbaeumer, C., Vossmerbaeumer, U. Optical coherence tomography-based retinal vessel analysis for the evaluation of hypertensive vasculopathy. Acta Ophthalmol. 93 (2), e148-e153 (2015).
  3. Cherecheanu, A. P., Garhofer, G., Schmidl, D., Werkmeister, R., Schmetterer, L. Ocular perfusion pressure and ocular blood flow in glaucoma. Curr Opin Pharmacol. 13 (1), 36-42 (2013).
  4. Faraci, F. M., Sigmund, C. D. Vascular biology in genetically altered mice : smaller vessels, bigger insight. Circ Res. 85 (12), 1214-1225 (1999).
  5. Kornfield, T. E., Newman, E. A. Measurement of Retinal Blood Flow Using Fluorescently Labeled Red Blood Cells. eNeuro. 2 (2), (2015).
  6. Guevara-Torres, A., Joseph, A., Schallek, J. B. Label free measurement of retinal blood cell flux, velocity, hematocrit and capillary width in the living mouse eye. Biomed Opt Express. 7 (10), 4229-4249 (2016).
  7. Schallek, J., Geng, Y., Nguyen, H., Williams, D. R. Morphology and topography of retinal pericytes in the living mouse retina using in vivo adaptive optics imaging and ex vivo characterization. Invest Ophthalmol Vis Sci. 54 (13), 8237-8250 (2013).
  8. Gericke, A., et al. Identification of the muscarinic acetylcholine receptor subtype mediating cholinergic vasodilation in murine retinal arterioles. Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (10), 7479-7484 (2011).
  9. Gericke, A., et al. Functional role of alpha1-adrenoceptor subtypes in murine ophthalmic arteries. Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (7), 4795-4799 (2011).
  10. Bohmer, T., et al. The alpha(1)B -adrenoceptor subtype mediates adrenergic vasoconstriction in mouse retinal arterioles with damaged endothelium. Br J Pharmacol. 171 (16), 3858-3867 (2014).
check_url/pt/56199?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Gericke, A., Goloborodko, E., Pfeiffer, N., Manicam, C. Preparation Steps for Measurement of Reactivity in Mouse Retinal Arterioles Ex Vivo. J. Vis. Exp. (135), e56199, doi:10.3791/56199 (2018).

View Video