Summary

免疫蛍光による非小細胞肺癌患者からの循環腫瘍細胞の半自動PD-L1特性図と列挙

Published: August 14, 2019
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Summary

循環腫瘍細胞(CTC)の特徴付けは、翻訳研究で一般的な話題です。このプロトコルは、非小細胞肺癌(NSCLC)患者サンプルにおけるCTCのPD-L1特性測定および列挙に関する半自動免疫蛍光(IF)アッセイについて説明する。

Abstract

原発性腫瘍に由来する循環腫瘍細胞(CTC)は、血流またはリンパ系に流れ込む。これらの希少細胞(血液のmL当たり1−10細胞)は予後不良を保証し、いくつかの癌(例えば、乳房、前立腺および結腸直腸)の全体的な生存率の短さと相関する。現在、抗EpCAMコーティング磁気ビーズベースのCTC捕捉システムは、血流中のCTCを列挙するための米国食品医薬品局(FDA)によって承認されたゴールドスタンダードテストです。この試験は、特に上皮癌細胞を標的とする抗EpCAMマーカーでコーティングされた磁気ビーズの使用に基づいています。多くの研究は、EpCAMがCTC検出に最適なマーカーではないことを示しています。実際、CTCは癌細胞の不均一な亜集団であり、転移増殖および侵入に関連する上皮間葉転移(EMT)を受けることができる。これらのCTCは、細胞表面上皮マーカーEpCAMの発現を減少させ、ビメンチンなどの間葉系マーカーを増加させることができる。この技術的なハードルに対処するため、CTCの物理的特性に基づく他の分離方法が開発されている。マイクロ流体技術は、全血サンプルからのCTC濃縮に対するラベルフリーのアプローチを可能にします。スパイラルマイクロ流体技術は、スパイラルマイクロ流体チップ内で生成された曲面チャネル内の連続的な流れを持つ慣性およびディーンドラッグ力を使用します。細胞は、正常な血液細胞と腫瘍細胞の間の大きさと可塑性の違いに基づいて分離されます。このプロトコルは、プログラムされた死リガンド1(PD-L1)CTC発現を特徴付けるさまざまなステップを詳細に説明し、スパイラルマイクロ流体デバイスとカスタマイズ可能な免疫蛍光(IF)マーカーセットを組み合わせる。

Introduction

腫瘍抗原特異的細胞傷害性Tリンパ球(CTL)は、がん「免疫監視」と呼ばれるプロセスを通じて癌への応答に重要な役割を果たします。それらの抗腫瘍機能は、CTLA-4阻害剤およびPD-1/PD-L1阻害剤などの免疫チェックポイント遮断抗体によって増強される。非小細胞肺癌(NSCLC)では、抗PD-1/PD-L1療法は、PD-L1陰性腫瘍患者では0%~17%、PD-L1を発現する患者では36%~100%の応答率をもたらす。黒色腫およびNSCLCで観察されたPD-1/PD-L1遮断に対する強い応答は、全体的な応答率(RR)、耐久性のある臨床上の利点、および無増悪生存(PFS)の改善の証拠によって示される。現在、抗PD1治療は、PD-L1発現にかかわらずニボルマブを有する第2ラインNSCLC治療における治療の標準であり、PD-L1≥1%を発現する患者におけるペンブロリズマブを有する。第一線治療において、治療の標準は、PD-L1≥50%を発現するNSCLC患者において単独でペンブロリズマブであり、化学療法(組織学的サブタイプに応じてプラチンおよび二重薬物)1、2で潜在的に増強することができる。

しかしながら、このような患者管理へのアプローチは議論の余地がある3は、免疫組織化学(IHC)による腫瘍細胞におけるPD-L1発現は、おそらく最も理想的なコンパニオンバイオマーカーではない。腫瘍突然変異負担4(TMB)、マイクロサテライト不安定性(MSI)、および/または微生物叢などの他のものは、単独または組み合わせのいずれかでこの設定において興味深い可能性があります。NSCLCは、空間的に(腫瘍部位から別の腫瘍部位へ)または一時的に(診断から再発まで)異種腫瘍であることが知られている。NSCLCの患者は通常壊れやすく、反復的な侵襲的組織生検が問題になる可能性があります。実際、最初の進行時の再生検率は、系列に応じて46%から84%の範囲であり、成功した再生検(組織学的および完全な分子分析を伴う意味)は33%から75%の範囲である。これは、患者の25%-67%が最初の進行5、6、7、8の間に包括的な再生検分析を受けることができないことを意味する。

「液体生検」の出現は、循環由来の循環性DNA(cfDNA)を調べることにより、疾患進行時の分子変化の重要な再評価を可能にするため、この特定の設定でかなりの熱意を生み出しました。腫瘍細胞(CTC)。これらの生細胞は腫瘍から血流に放出され、そこで自由に循環する。CTCの分析は日常的に使用されていないが、肺癌における分子的および表現型的特徴付け、予後、および予測的意義の場合(DNAseq、RNAseq、miRNAおよびタンパク質分析を介して)において非常に有望であると思われる。実際、CTCは初期マーカーではなく、活性疾患の型表示特性を持つ可能性が高い(診断時に組織生検で検出される)。さらに、CTCは腫瘍組織の空間的不均一性の問題をバイパスし、これは小さな生検において重要な問題でありうる。その結果、CTC上のPD-L1発現は、腫瘍組織を用いた予測バイオマーカーとしての使用に由来する不一致を明らかにする可能性がある。

近年、PD-L1発現はNSCLCのCTCで試験されている。9を検査した患者のほとんどはPD-L1陽性であり、結果とその臨床使用の解釈を複雑にした。全体として、PD-L1陽性CTCは、平均4.5セル/mL10からのサンプルの69.4%で検出された。放射線治療の開始後、PD-L1陽性CTCの割合が有意に増加し、放射線11に応答するPD-L1発現のアップレギュレーションを示した。したがって、PD-L1 CTC分析は、化学療法、放射線、および可能性の高い免疫療法(IT)治療に対する応答を反映する腫瘍および免疫応答の動的変化を監視するために使用することができる。

現在までに、CTCの分離およびPD-L1特性化は、抗EpCAMコーティング磁気ビーズベースのCTC捕捉、濃縮フリーベースのアッセイ、サイズベースの12、13 CTCキャプチャアッセイなどの様々な方法に依存しています。しかし、CTCは転移性NSCLC患者の45%~65%でのみ検出され、転移性NSCLC患者の半数以上に情報を提供する能力が制限されました。さらに、CTC数は、サイズベースのアプローチ10を使用して、これらの研究のほとんどで低かった。さらに、この方法は、健康なドナーの血流における「悪性腫瘍の細胞形態パターン」を有するCD45(-)/DAPI(+)細胞の検出などの不一致をもたらした。これらの懸念は、NSCLCにおける追加の癌バイオマーカー(すなわち、TTF1、ビメンチン、EpCAM、およびCD44)を用いて健康な全血からの非定型CD45(-)細胞の免疫表現型に関連するCTCコレクションの高感度な方法の必要性を強調している。

その結果、慣性とディーンドラッグ力を用いて、マイクロ流体チップを介してサイズと可塑性に基づいて細胞を分離するスパイラルマイクロ流体デバイスを評価しました。マイクロ流体チップに存在するディーン渦の形成は、内壁に沿って位置するより大きなCTCと、チップの外壁に沿ってより小さな免疫細胞をもたらす。濃縮プロセスは、濃縮CTC分画として、より大きな細胞を集出口にサイフォンすることによって完了する。この方法は、特に感受性および特異的(全血の約1 CTC/mLの検出)14であり、カスタマイズされた免疫蛍光(IF)分析に関連させることができる。これらの用具は臨床解釈のための肯定的なしきい値の設定を可能にする。このように、生物学者が高い回復率と特異性を持つ免疫表現型CTCを分離し、免疫性を高めるワークフローを説明します。このプロトコルは、CTCを収集するためのスパイラルマイクロ流体デバイスの最適な使用、癌の種類に応じてカスタマイズできる最適化されたIFアッセイ、および半自動を実行するために細胞画像を測定および分析するための無料のオープンソースソフトウェアの使用について説明します。蛍光染色による細胞の数値化。さらに、顕微鏡多重化は、利用可能な蛍光フィルター/マーカーの数に応じて行うことができる。

Protocol

サンプルは、患者の書面による同意に従ってリヨン大学病院に拠点を置くCIRCAN(「CIRculating CANcer」)コホートの枠組みの中で前向きに収集されました。この研究はCIRCAN_ALLコホートに統合された。CIRCAN_ALLの研究は、参考文献L15-188の下で2015年04月11日付けのCPP南東IVによって非介入として認識された。改訂版は、参考L16-160の下で20/09/2016に非介入として認識されました。CIRCAN_ALL研究は、参照15-131の?…

Representative Results

最初の前提条件は、組織培養のための汚染されていない(感染性薬剤を含まない)CTCのコレクションを取得し、IFの背景が生成されないようにすることです。除染プロトコルは、すべてのパイプとポンプの洗浄を可能にし、細菌汚染なしで良好な回収率でCTCの収集をもたらした。濃縮されたサンプルは、スパイラルマイクロ流体装置の除染プロトコルワークフローの有無と比較した。除染プロト…

Discussion

本研究では、臨床応用への移植ワークフローの性能に関する2つの大きなポイント、第1の点は、得られた蛍光画像の分析のための主観性の低下に関する2つである。

CTC列挙のための実行可能で最適化されたワークフローは、CTCラベルフリーマイクロ流体システム(スパイラルマイクロ流体デバイス)を介した細胞濃縮後のカスタマイズ可能なIFアッセイを用いて最初に決定さ?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、アストラゼネカ(ロンドン、イギリス)、バイオリディックス(シンガポール)、リーグ・コントル・ル・ガン(フランス・ローレ)からの研究助成金によって支えられた。著者らは、アストラゼネカとバイオリディクスの企業の財政的支援に感謝している。

Materials

4',6-diamidino-2-phénylindole (DAPI) Ozyme BLE 422801 Storage conditions: +4°C
BD Facs Clean – 5L BD Biosciences 340345 Bleach-based cleaning agent. Storage conditions: Room temperature
Bleach 1% Cleaning Solution 100 mL Biolidics CBB-F016012 Bleach. Storage conditions: Room temperature
Bovine Serum Albumin (BSA) 7.5% Sigma A8412 Storage conditions: +4°C
CD45 monoclonal antibody (clone HI30) Alexa Fluor 647 BioLegend BLE304020 Storage conditions: +4°C
CellProfiler Software Broad Institute Image Analysis Software
Centrifuge device Hettich 4706 Storage conditions: Room temperature
Centrifuge tube 50 mL Corning 430-829 Storage conditions: Room temperature
Centrifuge Tube 15 mL Biolidics CBB-F001004-25 Storage conditions: Room temperature
ClearCell FX-1 System Biolidics CBB-F011002 Spiral microfluidic device. Storage conditions: Room temperature
Coulter Clenz Cleaning Agent – 5L Beckman Coulter 8448222 All-purpose cleaning reagent. Storage conditions: Room temperature
CTChip FR1S Biolidics CBB-FR001002 Microfluidic chip. Storage conditions: Room temperature
Cytospin 4 ThermoFisher A78300003 Storage conditions: Room temperature
Diluent Additive Reagent – 20 mL Biolidics CBB-F016009 Storage conditions: +4°C
EZ Cytofunnels ThermoFisher A78710003 Sample chamber with cotton. Storage conditions: Room temperature
FcR blocking Agent Miltenyi Biotec 130-059-901 Storage conditions: +4°C
Fetal Calf Serum (FCS) Gibco 10270-106 Storage conditions: +4°C
Fluoromount Sigma F4680 Mounting solution. Storage conditions: Room temperature
Fungizone – 50 mg Bristol-Myers-Squibb 90129TB29 Anti-fungal reagent. Storage conditions: +4°C
FX1 Input Straw with lock cap Biolidics CBB-F013005 Straw. Storage conditions: Room temperature
KovaSlide Dutscher 50126 Chambered slide. Storage conditions: Room temperature
PanCK monoclonal antibody (clone AE1/AE3) Alexa Fluor 488 ThermoFisher 53-9003-80 Storage conditions: +4°C
Paraformaldehyde 16% ThermoFisher 11490570 Fixation solution. Storage conditions: +4°C
PD-L1 monoclonal antibody (clone 29E2A3) – Phycoerythrin BioLegend BLE329706 Storage conditions: +4°C
Petri Dish Dutscher 632180 Storage conditions: Room temperature
Phosphate Buffered Saline (PBS) Ozyme BE17-512F Storage conditions: +4°C
Phosphate Buffered Saline Ultra Pure Grade 1X – 1L 1st Base Laboratory BUF-2040-1X1L Storage conditions: Room temperature
Pluronic F-68 10% Gibco 24040-032 Anti-binding solution. Storage conditions: Room temperature
Polylysine slides ThermoFisher J2800AMNZ Storage conditions: Room temperature
Polypropylene Conical Tube 50 mL Falcon 352098 Storage conditions: Room temperature
RBC Lysis Buffer – 100 mL G Biosciences 786-649 Storage conditions: +4°C
RBC Lysis Buffer – 250 mL G Biosciences 786-650 Storage conditions: +4°C
Resuspension Buffer (RSB) Biolidics CBB-F016003 Storage conditions: +4°C
Shandon Cytopsin4 centrifuge ThermoFisher A78300003 Dedicated centrifuge. Storage conditions: Room temperature
Silicon Isolator Grace bio-Labs 664270 Storage conditions: Room temperature
Sterile Deionized Water – 100 mL 1st Base Laboratory CUS-4100-100ml Storage conditions: Room temperature
Straight Fluorescent microscope Axio Imager D1 Zeiss Storage conditions: Room temperature
Surgical Sterile Bag SPS Laboratoires 98ULT01240 Storage conditions: Room temperature
Syringe BD Discardit II 20 mL sterile BD Biosciences 300296 Storage conditions: Room temperature
Syringe Filter 0.22 µm 33 mm sterile ClearLine 51732 Storage conditions: Room temperature
Zen lite 2.3 Lite Software Zeiss Microscope associated software

Referências

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Citar este artigo
Garcia, J., Barthelemy, D., Geiguer, F., Ballandier, J., Li, K. W., Aurel, J., Le Breton, F., Rodriguez-Lafrasse, C., Manship, B., Couraud, S., Payen, L. Semi-automatic PD-L1 Characterization and Enumeration of Circulating Tumor Cells from Non-small Cell Lung Cancer Patients by Immunofluorescence. J. Vis. Exp. (150), e59873, doi:10.3791/59873 (2019).

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