Summary

الثقافة المشتركة للخلايا العصبية الغلوتاماترجية وخلايا الورم الدبقي عالية الجودة للأطفال في الأجهزة الدقيقة لتقييم التفاعلات الكهربائية

Published: November 17, 2021
doi:

Summary

تكشف الأعمال الحديثة عن تأثير الخلايا العصبية على خلايا الورم الدبقي للأطفال عالية الجودة (pHGG) وتفاعلاتها المتبادلة. يظهر العمل الحالي تطور نموذج في المختبر يشارك في زراعة خلايا pHGG والخلايا العصبية الغلوتاماترجية وسجل تفاعلاتها الكهربية لمحاكاة تلك التفاعلات.

Abstract

تمثل الأورام الدبقية عالية الجودة لدى الأطفال (pHGG) سرطان الدماغ في مرحلة الطفولة والمراهقة التي تحمل تشخيصا كئيبا سريعا. نظرا لوجود حاجة للتغلب على مقاومة العلاجات الحالية وإيجاد طريقة جديدة للعلاج ، فإن نمذجة المرض في أقرب وقت ممكن في وضع المختبر لاختبار أدوية جديدة وإجراءات علاجية أمر صعب للغاية. دراسة العمليات البيولوجية المرضية الأساسية، بما في ذلك فرط حساسية الخلايا العصبية الغلوتاماترجية، سيكون تقدما حقيقيا في فهم التفاعلات بين الدماغ البيئي وخلايا pHGG. لذلك، لإعادة التفاعلات الخلية الخلايا العصبية / pHGG، وهذا العمل يظهر تطوير نموذج وظيفي في المختبر المشاركة في زراعة الجذعية متعددة القدرات التي يسببها الإنسان (hiPS) المستمدة من الخلايا العصبية القشرية الجلوتاماترجية خلايا pHGG في أجهزة microfluidic مجزأة وعملية لتسجيل التعديلات الكهربية. كانت الخطوة الأولى هي التمييز وتوصيف الخلايا العصبية الجلوتاماترجية البشرية. ثانيا، تم استزراع الخلايا في أجهزة ميكروفلويديك مع خطوط الخلايا المشتقة من pHGG. ثم تم تضمين البيئة الدقيقة في الدماغ ونشاط الخلايا العصبية في هذا النموذج لتحليل التأثير الكهربائي لخلايا pHGG على هذه الخلايا العصبية البيئية الدقيقة. وتقترن التسجيلات الكهربية باستخدام صفائف متعددة الأقطاب (MEA) لهذه الأجهزة microfluidic لمحاكاة الظروف الفسيولوجية وتسجيل النشاط الكهربائي للشبكة العصبية بأكملها. تم التأكيد على زيادة كبيرة في استثارة الخلايا العصبية في وجود الخلايا السرطانية.

Introduction

الأطفال جليوما عالية الجودة (pHGG) معرض التنوع الجيني الموسعة و phenotypic اعتمادا على عمر المريض, موقع الورم التشريحية وتمديد, والسائقين الجزيئية1. وهي أورام الدماغ العدوانية التي يتم التحكم فيها بشكل سيئ مع خيارات العلاج المتاحة حاليا، وهي السبب الرئيسي للوفاة المتعلقة بسرطان الدماغ في الأطفال والمراهقين2. لذلك ، أكثر من 80 ٪ من المرضى يندبون في غضون عامين بعد تشخيصهم ، ومتوسط بقائهم على قيد الحياة هو 9-15 شهرا ، اعتمادا على مواقع الدماغ والطفرات السائق. غياب العلاج العلاجي هو الدافع الرئيسي للبحوث المختبرية ويسلط الضوء على الحاجة الفورية لنهج علاجية مبتكرة جديدة. لهذا الغرض، تم تطوير خطوط الخلايا المشتقة من المريض (PDCL) على أمل توفير التنوع pHGG3 في خطوط ثنائية الأبعاد (2D) و / أو ثلاثي الأبعاد (3D) الأعصاب. ومع ذلك، فإن تلك الثقافات المشتقة من المريض في الخلايا المختبرية لا تحاكي جميع الحالات المتغيرة في الدماغ. لا تأخذ هذه النماذج في الاعتبار البيئات التشريحية العصبية المجهرية والمجهرية الموصوفة عادة في pHGG.

عادة، يتطور pHGG في الأطفال الأصغر سنا بشكل رئيسي في مناطق بونتين والثالامي، في حين يركز HGG للمراهقين والشباب في المناطق القشرية، وخاصة في الفصوص الجبهية الصدغية1. هذه الخصائص الموقع عبر أعمار الأطفال ويبدو أن تنطوي على بيئات مختلفة تؤدي إلى تكوين الدبقية وشبكة علاج بين الخلايا السرطانية ونشاط الخلايا العصبية محددة4,5,6. على الرغم من أن الآليات لا تزال غير محددة، يتطور pHGG بشكل رئيسي من الخلايا السليفة العصبية على طول مسار التمايز من الأنساب الفلكية والأوليغوديندروغليال. في حين أن دور هذه الأنساب الدبقية كان لفترة طويلة يقتصر على الدعم الهيكلي البسيط للخلايا العصبية ، فمن الواضح الآن أنها تتكامل تماما في الدوائر العصبية وتظهر تفاعلات معقدة ثنائية الاتجاه بين الخلايا العصبية الدبقية القادرة على إعادة تنظيم المناطق الهيكلية للدماغ وإعادة تشكيل الدوائر العصبية4،7،8 . وعلاوة على ذلك، تشير قطع متزايدة من الأدلة إلى أن الجهاز العصبي المركزي (CNS) يلعب دورا حاسما في بدء سرطان الدماغ وتطوره. ركزت الأعمال الأخيرة على نشاط الخلايا العصبية ، والذي يبدو أنه يدفع نمو وداء العث من الأورام الخبيثة الدبقية من خلال عوامل النمو المفرزة والاتصالات الكهروكيميائية المباشرة6،9. على نحو متبادل، يبدو أن الخلايا الدبقية عالية الجودة تؤثر على وظيفة الخلايا العصبية مع زيادة نشاط الخلايا العصبية الغلوتاماترجية وتعديل تشغيل الدوائر التي يتم دمجها فيها هيكليا وكهربائيا9. لذا، أظهرت الدراسات التي تستخدم نماذج مشتقة من المريض وأدوات علم الأعصاب الجديدة التي تتحكم في عمل الخلايا العصبية تأثيرا خاصا بالدائرة لنشاط الخلايا العصبية على موقع الورم الدبقي والنمو والتقدم. معظم هذه التوقعات العصبية المشاركة في الأورام الدبقية هي الجلوتاماترجية والتواصل من خلال إفرازات الغلوتامات. المؤشرات الحيوية الجلوتاماترجية المحددة مثل mGluR2 أو vGlut1/2 توصف عادة6.

ومن المثير للاهتمام، على الرغم من عدم التجانس الجزيئي، الأطفال والكبار جليوماس عالية الجودة تظهر استجابة التكاثر نموذجية لنشاط الخلايا العصبية الغلوتاماترجية وغيرها من العوامل المفرزة مثل neuroligin-3 أو BDNF (عامل العصبية المشتقة من الدماغ)4،6،10،11،12،13 . في المناطق القشرية, الأطفال والكبار HGGs يمكن أن تحفز فرط الخلايا العصبية من خلال زيادة إفراز الغلوتامات وتمنع الخلايا الداخلية GABA مما يؤدي إلى الأورام الدبقية المرتبطة نشاط شبكة الصرع14,15. وعلاوة على ذلك، يمكن إعادة تشكيل الدوائر العصبية من قبل الأورام الدبقية دفع مهام عصبية محددة، على سبيل المثال، اللغة، ويمكن الاستيلاء على نشاط الخلايا العصبية المنظمة إضافية9.

وبناء على هذا الأساس المنطقي، يجب توضيح وتعزيز فهم الاتصالات ثنائية الاتجاه بين خلايا الورم الدبقي والخلايا العصبية بشكل كامل ودمجها مع المراحل المبكرة من نهج pHGG في المختبر. مثل هذه النمذجة المبتكرة أمر بالغ الأهمية في فهم وقياس تأثير النشاط الكهربائي العصبي أثناء اختبار المخدرات وتوقع استجابة pHGG في دوائر الدماغ. التطورات الأخيرة في أدوات علم الأعصاب، مثل الأجهزة microfluidic وأعمال البحوث pHGG، هي السرير لتطوير نهج النمذجة الجديدة وتكون قادرة الآن على دمج البيئة الدقيقة في الدماغ في نماذج pHGG المختبر3،16،17،18،19. إلى جانب التسجيلات الكهربية باستخدام صفائف متعددة الإلكترونات (MEA) ، توفر الأجهزة الدقيقة 20،21،22 إمكانية محاكاة الظروف الفسيولوجية أثناء تسجيل النشاط الكهربائي للشبكة العصبية بأكملها واستخراج معلمات اتصال الشبكة في ظل عدة ظروف. يسمح هذا الجهاز23,24 أولا بالترسب الدقيق للخلايا في غرفة مباشرة على MEA. تمكن هذه التكنولوجيا من التحكم في كثافة وبذر الخلايا والتجانس على MEA والتحكم الدقيق في تبادل الوسائط ، وهي خطوة حاسمة لتمايز السلف العصبي البشري مباشرة إلى أجهزة. وعلاوة على ذلك، يمكن أن تكون البذور غرفة الترسيب الحالية مع خلايا متعددة في نقاط زمنية مختلفة.

لذلك، تهدف هذه الدراسة إلى تطوير نموذج وظيفي في المختبر يشارك في زراعة الخلايا العصبية القشرية المشتقة من الجلوتاماترجية البشرية (hiPS) والخلايا المشتقة من pHGG في أجهزة microfluidic وتسجيل نشاطها الكهربائي لتقييم التفاعلات الكهربائية بين مجموعتي الخلايا. أولا، تم الحصول على الخلايا العصبية الغلوتاماترجية القشرية المشتقة من hiPS وتتميز في الأجهزة الدقيقة فلوريدية في مراحل مختلفة من الثقافة [اليوم 4 (D4)، كخلايا hiPS، واليوم 21 (D21) واليوم 23 (D23)، والخلايا العصبية نضجت الجلوتاماترجية]. للخطوة الثانية من الثقافة المشتركة، تم استخدام نموذجين pHGG: خط UW479 الأطفال التجارية وخلايا pHGG بدأت من ورم المريض (BT35)3، تحمل طفرة سائق K27M H3.3. وأخيرا، قمنا بإجراء تسجيلات كهربية للخلايا الجلوتاماترجية في D21 قبل بذر خلايا pHGG وD23 بعد 48 ساعة من الثقافة المشتركة في نفس الجهاز microfluidic. تميزت التفاعلات بين الخلايا العصبية الغلوتاماترجية وخلايا pHGG بزيادة كبيرة في النشاط الكهربي المسجل.

Protocol

بالنسبة لهذا البروتوكول، فإن رقم الاعتماد المتعلق باستخدام المواد البشرية هو DC-2020-4203. 1. تصنيع الجهاز microfluidic، وإعداد والعلاج تصنيع قوالب SU-8 باستخدام تقنيات التصوير الضوئي التقليدية18.ملاحظة: لهذا الغرض، تم تصميم قناعين للليثوغرافيا الضوئية لبناء طبقتي?…

Representative Results

قبل دراسة التفاعلات الكهربائية بين الخلايا العصبية الغلوتاماترجية وخلايا الورم الدبقي، تم وصف الخلايا العصبية القشرية المشتقة من hiPS للتحقق من جدوى زراعة هذه الخلايا في الأجهزة الدقيقة (الشكل 1A). تم تقييم توصيفها باستخدام نستين، Sox2، mGlurR2 (مستقبلات الغلوتامات…

Discussion

يصف هذا العمل نموذجا وظيفيا دقيقا في المختبر لتقييم التفاعل بين الخلايا العصبية القشرية المشتقة من hiPS البشرية والخلايا السرطانية في الدماغ في الأجهزة الدقيقة. واحدة من الخطوات الحاسمة في هذا البروتوكول كان التمايز hiPS في الخلايا العصبية الجلوتاماترجية، والتي أكدت من خلال انخفاض تلط…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وقد دعم هذا العمل من خلال منح من برنامج سات كونيكوس، ومؤسسة جامعة ستراسبورغ، و«J’ai demandé la lune»، و«Une roulade pour Charline»، و«LifePink»، و«فرانك، وريون دي سوليه» و«Semeurs d’Etoile». نشكر الأطفال والأسر المتضررة من مجموعات HG على مساهماتهم في هذا البحث ودعمهم.

Materials

256MEA100/30iR-ITO-w/o MCS 256MEA100/30iR-ITO-w/o
40 µm probe for Scepter counter  Dutscher 53750
60 µm probe for Scepter counter  Dutscher 51999
Accutase Sigma A6964
Ala -Gln (GlutaMAX) Sigma G8541
Axel Observer 7 Microscope Zeiss 431007-9904-000
Cell culture flask with cap with filter membrane 70 mL Falcon® Dutscher 353109
Class II Biological Safety Cabinet Thermo Scientific HERASafe type KS12
Colibri 7 LED Zeiss 4230529710-000
Cortical Glutamatergic Neurons
BrainXell BX-0300
DMEM/F-12 (1:1) GlutaMAX Gibco 31331-028
DMEM/F12 Medium Sigma D8437
DPBS 1X Dutscher L0615-500
EasYFlaskTM cell culture flasks 75cm3 Nunc 156499
Foetal Bovine Serum (FBS) Dutscher 500105
GDNF Peprotech 450-10
Geltrex Life Technologies A1413201
Human BDNF Peprotech 450-02
Incubator Memmert IC0150med
MCS InterFace Boarder MCS 181205-MEA2100-11240
MEA2100 MCS 181205-MEA2100-11240
Micropipette P10 Sartorius LH-729020
Micropipette P100 Sartorius LH-729050
Micropipette P1000 Sartorius LH-729070
Micropipette P200 Sartorius LH-729060
Microtube Eppendorf 1,5 ml Safe-Lock Dutscher 33290
MultiChannel Experimenter MCS
N2 Supplement-A StemCell 7152
Neurobasal Medium Life Technologies 21103049
Neurocult SM1 neuronal supplement StemCell 5711
Non filter tip 0.1 – 10 µl ClearLine® sterile in removable-lid rack  Dutscher 030570ACL
Non filter tip 1 – 200 µl ClearLine® sterile in removable-lid rack  Dutscher 032260CL
Non filter tip 50 – 1250 µl ClearLine® sterile in removable-lid rack Dutscher 134760CL
Non-essential amino acids (NEAA) without L-glutamine Dutscher X0557-100
Pipeteur Pipet-Aid XP Gravity Drummond 4000202/4038202
Pipette for cell culture 10 mL Falcon®  Dutscher 357551
Pipette for cell culture 5 mL Falcon®  Dutscher 357543
Plaque chauffante (CultureTemp) Belart 370151000
Poly-D-Lysine Sigma P6407
Primovert microscope Zeiss 415510-1100-000
Scepter (Handheld Automated Cell Counter) Millipore PHCC00000
TGF-β1 Peprotech 100-21C
Tube with conical bottom 15 mL (bulk) Falcon®  Dutscher 352096
Tube with conical bottom 50 mL (bulk) Falcon®  Dutscher 352070

Referências

  1. Mackay, A., et al. Integrated molecular meta-analysis of 1,000 pediatric high-grade and diffuse intrinsic pontine glioma. Cancer Cell. 32 (4), 520-537 (2017).
  2. Ostrom, Q. T., et al. Alex’s lemonade stand foundation infant and childhood primary brain and central nervous system tumors diagnosed in the United States in 2007-2011. Neuro-Oncology. 16, 1-36 (2015).
  3. Blandin, A. F., et al. Hypoxic environment and paired hierarchical 3D and 2D models of pediatric H3.3-mutated gliomas recreate the patient tumor complexity. Cancers (Basel). 11 (12), 1875 (2019).
  4. Monje, M. Synaptic communication in brain cancer. Pesquisa do Câncer. 80 (14), 2979-2982 (2020).
  5. Mount, C. W., Yalçın, B., Cunliffe-Koehler, K., Sundaresh, S., Monje, M. Monosynaptic tracing maps brain-wide afferent oligodendrocyte precursor cell connectivity. eLife. 18 (8), 49291 (2019).
  6. Venkatesh, H. S., et al. Electrical and synaptic integration of glioma into neural circuits. Nature. 573 (7775), 539-545 (2019).
  7. Blanco-Suárez, E., Caldwell, A. L., Allen, N. J. Role of astrocyte-synapse interactions in CNS disorders. Journal of Physiology. 595 (6), 1903-1916 (2017).
  8. Neftel, C., et al. An integrative model of cellular states, plasticity, and genetics for glioblastoma. Cell. 178 (4), 835-849 (2019).
  9. Krishna, S., et al. Glioblastoma remodeling of neural circuits in the human brain decreases survival. BioRxiv. , (2021).
  10. Venkataramani, V., et al. Glutamatergic synaptic input to glioma cells drives brain tumour progression. Nature. 573 (7775), 532-538 (2019).
  11. Wang, X., et al. Reciprocal signaling between glioblastoma stem cells and differentiated tumor cells promotes malignant progression. Cell Stem Cell. 22 (4), 514-528 (2018).
  12. Venkatesh, H. S., et al. Targeting neuronal activity-regulated neuroligin-3 dependency in high-grade glioma. Nature. 549 (7673), 533-537 (2017).
  13. Venkatesh, H. S., et al. Neuronal activity promotes glioma growth through Neuroligin-3 secretion. Cell. 161 (4), 803-816 (2015).
  14. Buckingham, S. C., et al. Glutamate release by primary brain tumors induces epileptic activity. Nature Medicine. 17 (10), 1269-1274 (2011).
  15. Campbell, S. L., Buckingham, S. C., Sontheimer, H. Human glioma cells induce hyperexcitability in cortical networks. Epilepsia. 53 (8), 1360-1370 (2012).
  16. Maisonneuve, B. G. C., Vieira, J., Larramendy, F., Honegger, T. Microchannel patterning strategies for in vitro structural connectivity modulation of neural networks. BioRxiv. , (2021).
  17. Pastore, V. P., Godjoski, A., Martinoia, S., Massobrio, P. SpiCoDyn: A toolbox for the analysis of neuronal network dynamics and connectivity from multi-site spike signal recordings. Neuroinformatics. 16 (1), 15-30 (2018).
  18. Honegger, T., Thielen, M. I., Feizi, S., Sanjana, N. E., Voldman, J. Microfluidic neurite guidance to study structure-function relationships in topologically-complex population-based neural networks. Scientific Reports. 6, 28384 (2016).
  19. Nguyen, A., et al. Characterization of the transcriptional and metabolic responses of pediatric high grade gliomas to mTOR-HIF-1α axis inhibition. Oncotarget. 8 (42), 71597-71617 (2017).
  20. Taylor, A. M., Dieterich, D. C., Ito, H. T., Kim, S. A., Schuman, E. M. Microfluidic local perfusion chambers for the visualization and manipulation of synapses. Neuron. 66 (1), 57-68 (2010).
  21. Cerea, A., et al. Selective intracellular delivery and intracellular recordings combined in MEA biosensors. Lab on a Chip. 18 (22), 3492-3500 (2018).
  22. Bruno, G., et al. Microfluidic multielectrode arrays for spatially localized drug delivery and electrical recordings of primary neuronal cultures. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 8, 626 (2020).
  23. Park, J. W., Vahidi, B., Taylor, A. M., Rhee, S. W., Jeon, N. L. Microfluidic culture platform for neuroscience research. Nature Protocols. 1 (4), 2128-2136 (2006).
  24. Maisonneuve, B. G. C., et al. Deposition chamber technology as building blocks for a standardized brain on chip framework. BioRxiv. , (2021).
  25. Maccione, A., et al. A novel algorithm for precise identification of spikes in extracellularly recorded neuronal signals. Journal of Neuroscience Methods. 177 (1), 241-249 (2009).
  26. Andreiuk, B., et al. Fluorescent polymer nanoparticles for cell barcoding in vitro and in vivo. Small. 13 (38), (2017).

Play Video

Citar este artigo
Fuchs, Q., Batut, A., Gleyzes, M., Rontard, J., Miny, L., Libralato, M., Vieira, J., Debis, D., Larramendy, F., Honegger, T., Messe, M., Pierrevelcin, M., Lhermitte, B., Dontenwill, M., Entz-Werlé, N. Co-culture of Glutamatergic Neurons and Pediatric High-Grade Glioma Cells Into Microfluidic Devices to Assess Electrical Interactions. J. Vis. Exp. (177), e62748, doi:10.3791/62748 (2021).

View Video