Summary

Metodo di isolamento per cellule staminali ematopoietiche a lungo e breve termine

Published: May 19, 2023
doi:

Summary

Presentiamo un protocollo passo-passo per l’isolamento di cellule staminali ematopoietiche a lungo termine (LT-HSCs) e HSCs a breve termine (ST-HSCs) utilizzando il sistema reporter Hoxb5.

Abstract

La capacità di auto-rinnovamento e il potenziale di differenziazione multi-lineage sono generalmente considerati come le caratteristiche distintive delle cellule staminali ematopoietiche (HSC). Tuttavia, numerosi studi hanno suggerito che esiste eterogeneità funzionale nel compartimento HSC. Recenti analisi a singola cellula hanno riportato cloni HSC con diversi destini cellulari all’interno del compartimento HSC, che sono indicati come cloni HSC distorti. I meccanismi alla base di risultati eterogenei o scarsamente riproducibili sono poco compresi, soprattutto per quanto riguarda la durata dell’auto-rinnovamento quando le frazioni HSC purificate vengono trapiantate mediante immunocolorazione convenzionale. Pertanto, stabilire un metodo di isolamento riproducibile per le HSC a lungo termine (LT-HSC) e le HSC a breve termine (ST-HSC), definite dalla durata del loro auto-rinnovamento, è fondamentale per superare questo problema. Utilizzando uno screening imparziale multi-step, abbiamo identificato un fattore di trascrizione, Hoxb5, che potrebbe essere un marker esclusivo di LT-HSC nel sistema ematopoietico del topo. Sulla base di questa scoperta, abbiamo stabilito una linea di topi reporter Hoxb5 e isolato con successo LT-HSC e ST-HSC. Qui descriviamo un protocollo dettagliato per l’isolamento di LT-HSC e ST-HSC utilizzando il sistema di reporter Hoxb5 . Questo metodo di isolamento aiuterà i ricercatori a comprendere meglio i meccanismi di auto-rinnovamento e le basi biologiche di tale eterogeneità nel compartimento HSC.

Introduction

Le cellule staminali ematopoietiche (HSC), che possiedono capacità di auto-rinnovamento e multipotenza, risiedono all’apice della gerarchia ematopoietica 1,2. Nel 1988, Weissman e colleghi hanno dimostrato per la prima volta che l’isolamento delle HSC di topo potrebbe essere ottenuto utilizzando la citometria a flusso3. Successivamente, una frazione definita da una combinazione di marcatori di superficie cellulare, Lineagec-Kit+Sca-1+CD150+CD34−/loFlk2, è stata riportata per contenere tutte le HSC nei topi 4,5,6,7,8.

Le HSCs immunofenotipicamente definite (Lineagec-Kit+Sca-1+CD150+CD34−/loFlk2) (di seguito, pHSCs) sono state precedentemente considerate funzionalmente omogenee. Tuttavia, recenti analisi monocellulari hanno rivelato che le pHSC mostrano ancora eterogeneità rispetto alla loro capacità di auto-rinnovamento9,10 e multipotenza11,12. In particolare, nella frazione pHSC sembrano esistere due popolazioni per quanto riguarda la loro capacità di auto-rinnovamento: le cellule staminali ematopoietiche a lungo termine (LT-HSCs), che hanno una capacità di auto-rinnovamento continuo, e le cellule staminali ematopoietiche a breve termine (ST-HSCs), che hanno capacità transitorie di auto-rinnovamento 9,10.

Ad oggi, i meccanismi molecolari della capacità di auto-rinnovamento che distinguono LT-HSCs e ST-HSCs rimangono poco conosciuti. È fondamentale isolare entrambe le popolazioni cellulari in base alle loro capacità di auto-rinnovamento e scoprire i meccanismi molecolari sottostanti. Sono stati inoltre introdotti diversi sistemi di segnalazione per purificare LT-HSC13,14,15; tuttavia, la purezza LT-HSC definita da ciascun sistema reporter è variabile e la purificazione LT-HSC esclusiva non è stata raggiunta fino ad oggi.

Pertanto, lo sviluppo di un sistema di isolamento per LT-HSC e ST-HSC accelererà la ricerca sulla capacità di auto-rinnovamento nella frazione pHSC. Nell’isolamento di LT-HSCs e ST-HSCs, uno studio che utilizza uno screening multi-step e imparziale ha identificato un singolo gene, Hoxb5, che è eterogeneamente espresso nella frazione pHSC16. Inoltre, l’analisi del midollo osseo dei topi reporter Hoxb5 ha rivelato che circa il 20% -25% della frazione pHSC è costituita da cellule Hoxb5 pos. Un test competitivo di trapianto utilizzando le pHSC Hoxb5 pos e le pHSC Hoxb5 neg ha rivelato che solo le pHSC Hoxb5pos possiedono una capacità di auto-rinnovamento a lungo termine, mentre le pHSC Hoxb5neg perdono la loro capacità di auto-rinnovamento entro un breve periodo, indicando che Hoxb5 identifica LT-HSC nella frazione pHSC16.

Qui, dimostriamo un protocollo passo-passo per isolare LT-HSC e ST-HSC utilizzando il sistema di reporter Hoxb5 . Inoltre, presentiamo un saggio di trapianto competitivo per valutare la capacità di auto-rinnovamento delle pHSC Hoxb5pos/neg (Figura 1). Questo sistema di reporter Hoxb5 ci consente di isolare prospetticamente LT-HSC e ST-HSC e contribuisce alla comprensione delle caratteristiche specifiche di LT-HSC.

Protocol

Tutti gli esperimenti sugli animali descritti sono stati approvati dal RIKEN Center for Biosystems Dynamics Research. 1. Precondizionamento dei topi riceventi Preparare topi congeniti maschi C57BL / 6 di età compresa tra 8 e 10 settimane come topi riceventi. Il numero di topi riceventi dipende dal protocollo sperimentale. In genere prepariamo 10-20 topi per ogni condizione.Nutrire i topi con acqua sterilizzata integrata con enrofloxacina (170 mg / L). Poich?…

Representative Results

In precedenza, la capacità di auto-rinnovamento è stata misurata utilizzando saggi di trapianto competitivi, in cui si ritiene che le HSC del donatore mantengano la loro capacità di auto-rinnovamento solo se si osservano cellule donatrici multi-laudio nel sangue periferico ricevente17. Inoltre, diversi rapporti definiscono le LT-HSC come cellule che continuano a produrre cellule del sangue periferico diversi mesi dopo il secondo trapianto di midollo osseo10,18…

Discussion

Tradizionalmente, le HSC definite dai marcatori di superficie cellulare sono state preparate per studiare le funzioni delle HSC, come la capacità di auto-rinnovamento e la multi-potenza 19,20,21. Tuttavia, la frazione HSC immunofenotipicamente definita (Lineagec-Kit+Sca-1+CD150+CD34−/loFlk2) contiene due popolazioni HSC discrete: LT-HSCs e ST-H…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Riconosciamo con gratitudine Hiroshi Kiyonari per la cura degli animali e per aver fornito topi riceventi a RIKEN BDR, così come Hitomi Oga, Kayoko Nagasaka e Masaki Miyahashi per la gestione del laboratorio presso l’Università di Kobe. Gli autori apprezzano molto anche il continuo supporto per questo lavoro. Masanori Miyanishi è stato supportato dalla Japan Society for the Promotion of Science (JSPS) KAKENHI Grant Numbers JP17K07407 e JP20H03268, dalla Mochida Memorial Foundation for Medical and Pharmaceutical Research, dalla Life Science Foundation of Japan, dalla Takeda Science Foundation, dalla Astellas Foundation for Research on Metabolic Disorders e da AMED-PRIME, AMED con il numero di sovvenzione JP18gm6110020. Taro Sakamaki è supportato dai numeri di sovvenzione JSPS KAKENHI JP21K20669 e JP22K16334 ed è stato supportato da il programma JSPS Core-to-Core e il programma RIKEN Junior Research Associate. Katsuyuki Nishi è stato supportato da JSPS Grant Number KAKENHI JP18J13408.

Materials

0.2 mL Strip of 8 Tubes, Dome Cap SSIbio 3230-00
0.5M EDTA pH 8.0 Iinvtrogen AM9260G
100 µm Cell Strainer Falcon 352360
30G insulin syringe BD 326668
40 µm Cell Strainer Falcon 352340
5 mL Round Bottom Polystyrene Test Tube, with Cell Strainer Snap Cap FALCON 352235
7-AAD Viability Staining Solution BioLegend 420404
96 well U-Bottom FALCON 351177
Anti-APC-MicroBeads Milteny biotec 130-090-855
Aspirator with trap flask Biosan FTA-1
B220-Alexa Fluor 700 (RA3-6B2) BioLegend 103232
B220-Biotin (RA3-6B2) BioLegend 103204
B220-BV786 (RA3-6B2) BD Biosciences 563894
B6.CD45.1 congenic mice  Sankyo Labo Service N/A
Baytril 10% BAYER 341106546
BD FACS Aria II special order system  BD N/A
Brilliant stain buffer BD 566349
CD11b-Alexa Fluor 700 (M1/70) BioLegend 101222
CD11b-Biotin (M1/70) BioLegend 101204
CD11b-BUV395 (M1/70) BD Biosciences 563553
CD11b-BV711 (M1/70) BD Biosciences 563168
CD127-Alexa Fluor 700 (A7R34) Invitrogen 56-1271-82
CD150-BV421 (TC15-12F12.2) BioLegend 115943
CD16/CD32-Alexa Fluor 700 (93) Invitrogen 56-0161-82
CD34-Alexa Fluor 647 (RAM34) BD Biosciences 560230
CD34-FITC (RAM34) Invitrogen 11034185
CD3-Alexa Fluor 700 (17A2) BioLegend 100216
CD3ε -Biotin (145-2C11) BioLegend 100304
CD3ε -BV421 (145-2C11) BioLegend 100341
CD45.1/CD45.2 congenic mice N/A N/A Bred in our Laboratory
CD45.1-FITC (A20) BD Biosciences 553775
CD45.2-PE (104) BD Biosciences 560695
CD4-Alexa Fluor 700 (GK1.5) BioLegend 100430
CD4-Biotin (GK1.5) BioLegend 100404
CD8a-Alexa Fluor 700 (53-6.7) BioLegend 100730
CD8a-Biotin (53-6.7) BioLegend 100704
Centrifuge Tube 15ml NICHIRYO 00-ETS-CT-15
Centrifuge Tube 50ml NICHIRYO 00-ETS-CT-50
c-Kit-APC-eFluor780 (2B8) Invitrogen 47117182
D-PBS (-) without Ca and Mg, liquid  Nacalai 14249-24
Fetal Bovine Serum Thermo Fisher 10270106
Flk2-PerCP-eFluor710 (A2F10) eBioscience 46135182
FlowJo version 10 BD Biosciences  https://www.flowjo.com/solutions/flowjo
Gmmacell 40 Exactor Best theratronics N/A
Gr-1-Alexa Fluor 700 (RB6-8C5) BioLegend 108422
Gr-1-Biotin (RB6-8C5) BioLegend 108404
Hoxb5-tri-mCherry mice (C57BL/6J background)  N/A N/A Bred in our Laboratory
IgG from rat serum, technical grade, >=80% (SDS-PAGE), buffered aqueous solution Sigma-Aldrich I8015-100MG
isoflurane Pfizer 4987-114-13340-3 
Kimwipes S200 NIPPON PAPER CRECIA  6-6689-01
LS Columns Milteny biotec 130-042-401
Lysis buffer  BD 555899
MACS  MultiStand Milteny biotec 130-042-303
Microplate for Tissue Culture (For Adhesion Cell) 6Well IWAKI 3810-006
MidiMACS Separator Milteny biotec 130-042-302
Mouse Pie Cages Natsume Seisakusho KN-331
Multipurpose refrigerated Centrifuge TOMY EX-125
NARCOBIT-E (II) Natsume Seisakusho KN-1071-I
NK-1.1-PerCP-Cy5.5 (PK136) BioLegend 108728
Penicillin-Streptomycin Mixed Solution nacalai 26253-84
Porcelain Mortar φ120mm with Pestle Asone 6-549-03
Protein LoBind Tube 1.5 mL  Eppendorf 22431081
Sca-I-BUV395 (D7) BD Biosciences 563990
Stainless steel scalpel blade FastGene FG-B2010
Streptavidin-BUV737 BD Biosciences 612775
SYTOX-red Invitrogen S34859
Tailveiner Restrainer for Mice standard Braintree TV-150 STD
TCRb-BV421 (H57-597) BioLegend 109230
Ter-119-Alexa Fluor 700 (TER-119) BioLegend 116220
Ter-119-Biotin (TER-119) BioLegend 116204
Terumo 5ml Concentric Luer-Slip Syringe TERUMO SS-05LZ
Terumo Hypodermic Needle 23G x 1 TERUMO NN-2325-R

Referências

  1. Weissman, I. L., Shizuru, J. A. The origins of the identification and isolation of hematopoietic stem cells, and their capability to induce donor-specific transplantation tolerance and treat autoimmune diseases. Blood. 112 (9), 3543-3553 (2008).
  2. Majeti, R., Park, C. Y., Weissman, I. L. Identification of a hierarchy of multipotent hematopoietic progenitors in human cord blood. Cell Stem Cell. 1 (6), 635-645 (2007).
  3. Spangrude, G. J., Heimfeld, S., Weissman, I. L. Purification and characterization of mouse hematopoietic stem cells. Science. 241 (4861), 58-62 (1988).
  4. Ogawa, M., et al. Expression and function of c-kit in hemopoietic progenitor cells. Journal of Experimental Medicine. 174 (1), 63-71 (1991).
  5. Ikuta, K., Weissman, I. L. Evidence that hematopoietic stem cells express mouse c-kit but do not depend on steel factor for their generation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 89 (4), 1502-1506 (1992).
  6. Osawa, M., Hanada, K., Hamada, H., Nakauchi, H. Long-term lymphohematopoietic reconstitution by a single CD34-low/negative hematopoietic stem cell. Science. 273 (5272), 242-245 (1996).
  7. Christensen, J. L., Weissman, I. L. Flk-2 is a marker in hematopoietic stem cell differentiation: A simple method to isolate long-term stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (25), 14541-14546 (2001).
  8. Kiel, M. J., et al. SLAM family receptors distinguish hematopoietic stem and progenitor cells and reveal endothelial niches for stem cells. Cell. 121 (7), 1109-1121 (2005).
  9. Morrison, S. J., Weissman, I. L. The long-term repopulating subset of hematopoietic stem cells is deterministic and isolatable by phenotype. Immunity. 1 (8), 661-673 (1994).
  10. Spangrude, G. J., Brooks, D. M., Tumas, D. B. Long-term repopulation of irradiated mice with limiting numbers of purified hematopoietic stem cells: In vivo expansion of stem cell phenotype but not function. Blood. 85 (4), 1006-1016 (1995).
  11. Dykstra, B., Olthof, S., Schreuder, J., Ritsema, M., de Haan, G. Clonal analysis reveals multiple functional defects of aged murine hematopoietic stem cells. Journal of Experimental Medicine. 208 (13), 2691-2703 (2011).
  12. Grover, A., et al. Single-cell RNA sequencing reveals molecular and functional platelet bias of aged haematopoietic stem cells. Nature Communications. 7, 11075 (2016).
  13. Kataoka, K., et al. Evi1 is essential for hematopoietic stem cell self-renewal, and its expression marks hematopoietic cells with long-term multilineage repopulating activity. Journal of Experimental Medicine. 208 (12), 2403-2416 (2011).
  14. Gazit, R., et al. Fgd5 identifies hematopoietic stem cells in the murine bone marrow. Journal of Experimental Medicine. 211 (7), 1315-1331 (2014).
  15. Acar, M., et al. Deep imaging of bone marrow shows non-dividing stem cells are mainly perisinusoidal. Nature. 526 (7571), 126-130 (2015).
  16. Chen, J. Y., et al. Hoxb5 marks long-term haematopoietic stem cells and reveals a homogenous perivascular niche. Nature. 530 (7589), 223-227 (2016).
  17. Ema, H., et al. Quantification of self-renewal capacity in single hematopoietic stem cells from normal and Lnk-deficient mice. Developmental Cell. 8 (6), 907-914 (2005).
  18. Morita, Y., Ema, H., Nakauchi, H. Heterogeneity and hierarchy within the most primitive hematopoietic stem cell compartment. Journal of Experimental Medicine. 207 (6), 1173-1182 (2010).
  19. Yamamoto, R., et al. Clonal analysis unveils self-renewing lineage-restricted progenitors generated directly from hematopoietic stem cells. Cell. 154 (5), 1112-1126 (2013).
  20. Fathman, J. W., et al. Upregulation of CD11A on hematopoietic stem cells denotes the loss of long-term reconstitution potential. Stem Cell Reports. 3 (5), 707-715 (2014).
  21. Oguro, H., Ding, L., Morrison, S. J. SLAM family markers resolve functionally distinct subpopulations of hematopoietic stem cells and multipotent progenitors. Cell Stem Cell. 13 (1), 102-116 (2013).
  22. Haas, S., Trumpp, A., Milsom, M. D. Causes and consequences of hematopoietic stem cell heterogeneity. Cell Stem Cell. 22 (5), 627-638 (2018).
  23. Schroeder, T. Hematopoietic stem cell heterogeneity: Subtypes, not unpredictable behavior. Cell Stem Cell. 6 (3), 203-207 (2010).
  24. Muller-Sieburg, C. E., Sieburg, H. B., Bernitz, J. M., Cattarossi, G. Stem cell heterogeneity: Implications for aging and regenerative medicine. Blood. 119 (17), 3900-3907 (2012).
  25. Duran-Struuck, R., Dysko, R. C. Principles of bone marrow transplantation (BMT): Providing optimal veterinary and husbandry care to irradiated mice in BMT studies. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 48 (1), 11-22 (2009).
  26. Nishi, K., et al. Identification of the minimum requirements for successful haematopoietic stem cell transplantation. British Journal of Haematology. 196 (3), 711-723 (2022).
  27. Sakamaki, T., et al. Hoxb5 defines the heterogeneity of self-renewal capacity in the hematopoietic stem cell compartment. Biochemical and Biophysical Research Communications. 539, 34-41 (2021).

Play Video

Citar este artigo
Nishi, K., Nagasaka, A., Sakamaki, T., Sadaoka, K., Miyanishi, M. Isolation Method for Long-Term and Short-Term Hematopoietic Stem Cells. J. Vis. Exp. (195), e64488, doi:10.3791/64488 (2023).

View Video