Summary

إثراء مزارع الخلايا العصبية للعقد الجذرية الظهرية للفأر البالغ عن طريق التحفيز المناعي

Published: February 24, 2023
doi:

Summary

تصف هذه الورقة بروتوكول منااعي للعقد الجذرية الظهرية للفأر البالغ. من خلال لصق الأجسام المضادة بألواح الثقافة ، يمكننا اختيار الخلايا غير العصبية وإزالتها بشكل سلبي. نظهر أن الثقافات يتم إثراؤها للخلايا العصبية باستخدام هذا البروتوكول ، مما يسمح بإجراء دراسة متعمقة للاستجابات العصبية للتلاعب.

Abstract

العقد الجذرية الظهرية (DRGs) هي هياكل طرفية مجاورة للقرن الظهري للحبل الشوكي ، والتي تضم أجسام الخلايا العصبية الحسية بالإضافة إلى أنواع مختلفة من الخلايا الأخرى. غالبا ما تشير بروتوكولات الثقافة المنشورة إلى ثقافات DRG المنفصلة بالكامل على أنها خلايا عصبية ، على الرغم من وجود الخلايا الليفية وخلايا شوان والبلاعم والخلايا الليمفاوية. في حين أن ثقافات DRG بأكملها كافية لتطبيقات التصوير حيث يمكن تمييز الخلايا العصبية بناء على التشكل أو التلوين ، فإن تجانسات البروتين أو الحمض النووي الريبي التي تم جمعها من هذه الثقافات ليست عصبية في الأصل في المقام الأول. هنا ، نصف تسلسل المناعة ل DRGs الفئران المستزرعة. الهدف من هذه الطريقة هو إثراء ثقافات DRG للخلايا العصبية عن طريق إزالة أنواع الخلايا الأخرى. يشير Immunopanning إلى طريقة لإزالة أنواع الخلايا عن طريق لصق الأجسام المضادة بأطباق زراعة الخلايا. باستخدام هذه الأطباق ، يمكننا الاختيار السلبي وتقليل عدد الخلايا الليفية والخلايا المناعية وخلايا شوان في الثقافة. تسمح لنا هذه الطريقة بزيادة نسبة الخلايا العصبية في الثقافات.

Introduction

تضم العقد الجذرية الظهرية (DRGs) أجسام الخلايا العصبية الحسية التي تعصب الأنسجة المحيطية. تسمح لنا دراسة هذه الخلايا العصبية بفهم الأسس الميكانيكية للألم والظروف الحسية. ومع ذلك ، لا تتكون DRGs من الخلايا العصبية وحدها ، ولكنها تحتوي أيضا على الخلايا الليفية وخلايا Schwann والبلاعم والخلايا المناعية الأخرى1. على الرغم من وجود هذه الأنواع المختلفة من الخلايا ، غالبا ما يشار إلى ثقافات DRG بأكملها في الأدبيات باسم الخلايا العصبية 2,3. لا تزال هذه الثقافات مفيدة للتحقيق العصبي عن طريق التصوير أو قياس التدفق الخلوي ، مما يسمح بتحديد الخلايا العصبية عن طريق التلوين و / أو حجم الخلية و / أو التشكل. ومع ذلك ، بالنسبة للمقايسات مثل تفاعل البوليميراز المتسلسل (PCR) أو النشاف الغربي ، حيث يتم تجانس الثقافات لجمع الحمض النووي الريبي أو البروتين ، قد يتداخل وجود أنواع الخلايا غير العصبية مع النتائج. وبالتالي ، هناك حاجة لزيادة نسبة الخلايا العصبية في مزارع DRG.

Immunopanning هي تقنية تستخدم لتنقية مجموعة متنوعة من أنواع الخلايا ، بما في ذلك الخلايا العصبية القشرية ، والخلايا النجمية ، وخلايا سلائف oligodendrocyte ، والخلايا الدبقية الصغيرة. بكلمات بسيطة ، يتضمن لصق جسم مضاد ضد علامة سطح الخلية بطبق بتري ، يهدف إلى ربط خلايا معينة (الشكل 1) ، ويمكن استخدامه لتحديد إما مع أو ضد أنواع الخلايا ذات الأهمية4،5،6. تم وصف DRGs الجنينية للفئران المناعية للاختيار ضد الخلايا غير العصبية سابقا بواسطة Zuchero7. ومع ذلك ، لم نتمكن من العثور على بروتوكول مناعي خاص ب DRGs للماوس. في هذا البروتوكول ، نبني على المستأجرين الأساسيين لبروتوكول Zuchero ، ولكن بدلا من ذلك قمنا بتكييف تسلسل المناعة لإثراء ثقافات DRG للفأر البالغ (الشكل 2). هذه أداة قوية لدراسة الخلايا العصبية الحسية الراسخة في الثقافة. إنه مفيد لأنه يسمح باستخدام الفئران البالغة من النماذج الوراثية والمرضية والإصابات ، بحيث يمكن دراسة الخلايا العصبية الحسية الخاصة بهم بمزيد من التحديد.

هذا البروتوكول مفيد للقراء الذين يتطلعون إلى زيادة نسبة الخلايا العصبية في مزارع DRG للفأر البالغ. ومع ذلك ، يمكن أيضا حذف خطوات المناعة ، ويمكن أيضا استخدام هذا البروتوكول لثقافات DRG بأكملها.

Protocol

تم إجراء جميع التجارب على الحيوانات بموافقة لجنة رعاية واستخدام الحيوان للعلوم الصحية بجامعة ألبرتا (البروتوكول 0000274). 1. إعداد الكاشف لليوم 1 ، قم بإعداد الكواشف التالية: ماء زراعة الخلايا ؛ poly-D-lysine – تحضير مخزون عن طريق إعادة تكوين الزجاجة بأكملها في 50 مل من ما…

Representative Results

ثم تم تصوير الخلايا الثابتة الملطخة ب DAPI و β3-tubulin بنظام فحص عالي المحتوى متحد البؤر. تم تحليل الصور باستخدام برنامج تجاري مناسب لتحديد النسبة المئوية للخلايا الإيجابية ل DAPI التي تم تصنيفها بشكل مشترك مع β3-tubulin (الشكل 3). تم تحديد مزارع DRG الكاملة على أنها تحتوي على 42.36٪ ± 6.4٪ ت?…

Discussion

يزيد بروتوكول المناعة هذا من نسبة الخلايا العصبية في الثقافات الأولية DRG. للحصول على أفضل النتائج ، يجب إجراء التشريح في الوقت المناسب ، ويجب تقليم DRGs من الأعصاب الزائدة. يجب مراقبة خطوة التفكك بعناية ، ويجب ألا تتجاوز 1 ساعة ، لمنع الخلايا من الإجهاد غير الضروري. فيما يتعلق بالمناعة على وج?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

تم دعم هذا العمل من خلال منحة مشروع من المعاهد الكندية للبحوث الصحية (FRN-162434) ومنحة اكتشاف من جمعية التصلب المتعدد الكندية (EGID-3761). يود المؤلفون أن يشكروا الدكتور صن ومعهد الصليب للسرطان على التدريب واستخدام نظام ImageXpress.

Materials

0.2 um Syringe filters Fisher 723-2520
100 mm petri dishes ThermoFisher FB0875712
24 well black glass-bottom plates Cellvis P24-1.5H-N
70 um cell strainer Cedarlane 15-1070-1(BI)
B27+ supplement Gibco A3582801
Bovine Serum Albumin Sigma Aldrich A7906 for 15% BSA cushion, and ICC (heat shock fraction ≥98%)
Bovine Serum Albumin Sigma Aldrich A4161 for 4% BSA for immunopanning, and SATO for media (essentially globulin free, suitable for cell culture, ≥99%)
CD45 antibody BD Pharmigen 550539
DAPI Invitrogen D1306
DMEM Gibco 11960069
DNAse Worthington LS002007 for stemxyme solution and panning buffer
D-PBS Sigma Aldrich D8662
EBSS Sigma Aldrich E6267 for DNAse solution
Filter paper P8 grade ThermoFisher 09-795K for 8% PFA
Glutamax ThermoFisher 35050061
goat-anti-mouse IgG Jackson Immunoresearch 115-005-020 for O4 dish 
goat-anti-rabbit 488 Invitrogen A11008
goat-anti-rabbit IgG Jackson Immunoresearch 115-005-003 for PDGFRB dish
goat-anti-rat IgG Jackson Immunoresearch 115-005-044 for CD45 dish
HBSS -/- Sigma Aldrich 14175145
Insulin Sigma Aldrich I2643
laminin Invitrogen 23017-015
N-acetyl cysteine Sigma Aldrich A8199
Neurobasal Gibco 21103049
Normal Donkey Serum Sigma-Aldrich D9663
O4 antibody n/a n/a Hybridoma
Ovomucoid trypsin inhibitor Cedarlane LS003086 for low ovo
paraformaldehyde prills Sigma Aldrich 441244 for 8% PFA
PDGFRB antibody Abcam AB32570
penicillin/ streptomycin Gibco 15140-122
Poly-D-Lysine Sigma Aldrich P6407
Progesterone Sigma Aldrich P8783 for SATO
Putrescine dihydrochrloride  Sigma Aldrich P5780 for SATO
Sodium phosphate dibasic Fisher S374-1 for 0.2 M PB
Sodium Phosphate monobasic dihydrate Sigma Aldrich 04269 for 0.2 M PB
Sodium Pyruvate ThermoFisher 11360070
Sodium Selenite Sigma Aldrich S5261 for SATO
Stemxyme I Cedarlane LS004107 for tissue dissociation; combination collagenase
Transferrin Sigma Aldrich T1147 for SATO
Tris-HCl Millipore Sigma T5941
trypan blue Gibco 15250-061
β3-Tubulin Sigma-Aldrich T2200

Referências

  1. Haberberger, R. V., Barry, C., Dominguez, N., Matusica, D. Human dorsal root ganglia. Frontiers in Cellular Neuroscience. 13, 271 (2019).
  2. Perner, C., Sokol, C. L. Protocol for dissection and culture of murine dorsal root ganglia neurons to study neuropeptide release. STAR Protocols. 2 (1), 100333 (2021).
  3. Lin, Y. T., Chen, J. C. Dorsal root ganglia isolation and primary culture to study neurotransmitter release. Journal of Visualized Experiments:JoVE. (140), e57569 (2018).
  4. Foo, L. C., et al. Development of a method for the purification and culture of rodent astrocytes. Neuron. 71 (5), 799-811 (2011).
  5. Nolle, A., et al. Enrichment of Glial Cells From Human Post-mortem Tissue for Transcriptome and Proteome Analysis Using Immunopanning. Frontiers in Cellular Neuroscience. 15, 772011 (2021).
  6. Barres, B. A. Designing and troubleshooting immunopanning protocols for purifying neural cells. Cold Spring Harbor Protocols. 2014 (12), 1342-1347 (2014).
  7. Zuchero, J. B. Purification of dorsal root ganglion neurons from rat by immunopanning. Cold Spring Harbor Protocols. 2014 (8), 826-838 (2014).
  8. Sommer, I., Schachner, M. Monoclonal antibodies (O1 to O4) to oligodendrocyte cell surfaces: an immunocytological study in the central nervous system. Biologia do Desenvolvimento. 83 (2), 311-327 (1981).
  9. Sommer, I., Schachner, M. Cell that are O4 antigen-positive and O1 antigen-negative differentiate into O1 antigen-positive oligodendrocytes. Neuroscience Letters. 29 (2), 183-188 (1982).
  10. Hanani, M. Satellite glial cells in sensory ganglia: from form to function. Brain Research. Brain Research Reviews. 48 (3), 457-476 (2005).
  11. Viveiros, A., et al. In-cell labeling coupled to direct analysis of extracellular vesicles in the conditioned medium to study extracellular vesicles secretion with minimum sample processing and particle loss. Cells. 11 (3), 351 (2022).
check_url/pt/64603?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Maguire, A. D., Plemel, J. R., Kerr, B. J. Enrichment of Adult Mouse Dorsal Root Ganglia Neuron Cultures by Immunopanning. J. Vis. Exp. (192), e64603, doi:10.3791/64603 (2023).

View Video