Summary

Alkole Bağlı Olmayan Yağlı Karaciğer Hastalığının Progresyonunu Değerlendirmek İçin Yeni In Vivo Mikrobilgisayarlı Tomografi Görüntüleme Teknikleri

Published: March 24, 2023
doi:

Summary

Diyete bağlı alkolsüz yağlı karaciğer hastalığı (NAFLD) fare modeli kullanarak, NAFLD’nin progresyon aşamalarını değerlendirmek için non-invaziv bir yöntem olarak yeni in vivo mikro-bilgisayarlı tomografi görüntüleme tekniklerinin kullanımını, ağırlıklı olarak hepatik vasküler ağa odaklanarak tanımladık.

Abstract

Alkolsüz yağlı karaciğer hastalığı (NAFLD) büyüyen bir küresel sağlık sorunudur ve NAFLD’nin etkisi, mevcut etkili tedavilerin eksikliği ile birleşmektedir. NAFLD’nin zamanında ve doğru tanısını (derecelendirme dahil) ve izlenmesini ve potansiyel tedavilerin geliştirilmesini engelleyen önemli sınırlayıcı faktörler, hepatik mikroçevre yapısının karakterizasyonundaki mevcut yetersizlikler ve hastalık evresinin uzay-zamansal ve non-invaziv bir şekilde skorlanmasıdır. Diyete bağlı bir NAFLD fare modeli kullanarak, NAFLD’nin progresyon aşamalarını değerlendirmek için invaziv olmayan bir yöntem olarak in vivo mikro-bilgisayarlı tomografi (BT) görüntüleme tekniklerinin kullanımını araştırdık ve ağırlıklı olarak hepatik vasküler ağa odaklandık. Bu görüntüleme metodolojisi, karaciğer yağlanması ve fonksiyonel doku alımının uzunlamasına analizinin yanı sıra nispi kan hacminin, portal ven çapının ve vasküler ağın yoğunluğunun değerlendirilmesine izin verir. NAFLD progresyonu sırasında hepatik vasküler ağın adaptasyonlarını anlamak ve bunu, önerilen yöntemi kullanarak hastalığın ilerlemesini (steatoz, inflamasyon, fibrozis) karakterize etmenin diğer yollarıyla ilişkilendirmek, farelerde NAFLD araştırmaları için yeni, daha verimli ve tekrarlanabilir yaklaşımların oluşturulmasına giden yolu açabilir. Bu protokolün ayrıca, hastalığın ilerlemesine karşı yeni tedavilerin geliştirilmesini araştırmak için klinik öncesi hayvan modellerinin değerini yükseltmesi beklenmektedir.

Introduction

Alkole bağlı olmayan yağlı karaciğer hastalığı (NAFLD), toplumun yaklaşık %25’ini ve morbid obez kişilerin %>80’ini etkileyen metabolik bir hastalıktır1. Bu bireylerin yaklaşık üçte biri, hepatik steatoz, inflamasyon ve fibroz2 ile karakterize alkolsüz steatohepatit (NASH) hastalığına ilerler. NASH, siroz ve hepatosellüler karsinom (HCC) gelişimi için önemli ölçüde daha yüksek risk taşıyan bir hastalık evresidir3,4. Bu nedenle, NASH şu anda karaciğer transplantasyonunun en sık görülen ikinci nedenidir ve yakın zamanda karaciğer transplantasyonunun en önemli belirleyicisi haline gelmesi beklenmektedir 5,6,7. Prevalansına ve ciddiyetine rağmen, NAFLD için hastalığa özgü bir tedavi mevcut değildir ve mevcut tedaviler sadece insülin direnci ve hiperlipidemi gibi hastalıkla ilişkili patolojilerle mücadele etmeyi amaçlamaktadır 5,6.

Son yıllarda, endotelin ve genel olarak yağ dokusu ve karaciğer gibi metabolik dokuların vasküler ağının patofizyolojik rolü ve adaptasyonları, özellikle obezite ve metabolik düzensizlik sırasında araştırmalarda daha fazla önem kazanmaktadır 7,8. Endotel, vasküler ağı dahili olarak kaplayan, fonksiyonel ve yapısal bir bariyer görevi gören hücresel bir tek tabakadır. Ayrıca tromboz, metabolit taşınması, inflamasyon ve anjiyogenez gibi çeşitli fizyolojik ve patolojik süreçlere de katkıda bulunur 9,10. Karaciğer durumunda, vasküler ağ, diğer özelliklerin yanı sıra, karaciğer sinüzoidal endotel hücreleri (LSEC’ler) olarak tanımlanan oldukça özelleşmiş hücrelerin varlığı ile karakterize edilir. Bu hücreler bir bazal membrandan yoksundur ve kan ve karaciğer parankimi arasında substratların daha kolay transferine izin veren çoklu fenestralara sahiptir. Ayırt edici anatomik konumları ve özellikleri nedeniyle, LSEC’ler, NAFLD/NASH sırasında karaciğer iltihabı ve fibroz gelişimi de dahil olmak üzere karaciğerin patofizyolojik süreçlerinde muhtemelen çok önemli bir role sahiptir. Gerçekten de, LSEC’lerin NAFLD seyri sırasında maruz kaldığı patolojik, moleküler ve hücresel adaptasyonlar hastalığın ilerlemesine katkıda bulunur11. Spesifik olarak, NAFLD sırasında meydana gelen LSEC’ye bağlı hepatik anjiyogenez, inflamasyon gelişimi ve hastalığın NASH’e ve hatta HCC12’ye ilerlemesi ile önemli ölçüde ilişkilidir. Ayrıca, obezite ile ilişkili erken NAFLD, hepatik inflamasyon veya diğer ileri NAFLD belirtilerinin gelişmesinden önce gelen LSEC’lerde insülin direncinin gelişmesi ile karakterizedir13.

Ek olarak, LSEC’ler son zamanlarda çeşitli etiyolojilerin karaciğer hastalığı sırasında hepatik kan akışının ve vasküler ağ adaptasyonlarının merkezi düzenleyicileri olarak ortaya çıkmıştır14,15. Gerçekten de, kronik karaciğer hastalığı, portal hipertansiyonun gelişimine katkıda bulunan belirgin intra-hepatik vazokonstriksiyon ve kan akışına karşı artan direnç ile karakterizedir16. NAFLD söz konusu olduğunda, LSEC ile ilgili birkaç mekanizma bu fenomene katkıda bulunur. Örneğin, yukarıda bahsedildiği gibi LSEC’ye özgü insülin direnci, hepatik vaskülatürün insüline bağlı vazodilatasyonunun azalmasıyla ilişkilidir13. Ayrıca, hastalığın seyri boyunca, karaciğer damar sistemi vazokonstriktörlere karşı daha duyarlı hale gelir, bu da hepatik kan akışının bozulmasına katkıda bulunur ve her ikisi de sinüzoidal mikrosirkülasyonun bozulmasına neden olan kayma stresinin ortaya çıkmasına neden olur17. Bu gerçekler, damar sisteminin karaciğer hastalığında önemli bir hedef olduğunu göstermektedir. Bununla birlikte, NAFLD/NASH’ın zamanında tanı ve izlenmesini ve potansiyel tedavilerin geliştirilmesini engelleyen sınırlayıcı faktörler, hepatik mikroçevrenin ve (mikro)vasküler yapının tutarlı karakterizasyonundaki yetersizliklerin yanı sıra hastalık evresinin uzay-zamansal ve non-invaziv bir şekilde skorlanmasıdır.

Mikro bilgisayarlı tomografi (BT) görüntüleme, canlı bir organizmadaki anatomik bilgileri doğru bir şekilde tasvir etmek için şu anda altın standart non-invaziv görüntüleme yöntemidir. Mikro-BT ve MRG, çok çeşitli patolojileri kapsayabilen ve görüntülenen yapılarda ve dokularda olağanüstü çözünürlük ve ayrıntı sağlayabilen iki tamamlayıcı görüntüleme yöntemini temsil eder. Özellikle mikro-BT, kemik hastalıkları ve ilişkili kemik yüzeyi değişiklikleri18 gibi patolojileri incelemek, pulmoner fibrozun zaman içindeki ilerlemesini değerlendirmek19, akciğer kanserini ve evrelemesiniteşhis etmek 20 ve hatta diş patolojileriniincelemek 21 için sıklıkla kullanılan çok hızlı ve doğru bir araçtır.

Mikro-BT’nin görüntüleme teknolojisi, X-ışınlarının madde ile etkileşimi açısından çeşitli organların farklı zayıflama özelliklerine dayanmaktadır. Yüksek X-ışını zayıflama farklılıkları gösteren organlar, BT görüntülerinde yüksek kontrastla gösterilir (yani, akciğerler karanlık ve kemikler açık görünür). Çok benzer zayıflama özellikleri gösteren organların (farklı yumuşak dokular) BT görüntülerinde ayırt edilmesi zordur22. Bu sınırlamayı ele almak için, iyot, altın ve bizmut bazlı özel kontrast maddeler, in vivo kullanım için kapsamlı bir şekilde araştırılmıştır. Bu ajanlar, içinde biriktikleri dokuların zayıflama özelliklerini değiştirir, dolaşımdan yavaşça temizlenir ve tüm vasküler sistemin veya seçilen dokuların düzgün ve stabil opaklaşmasını sağlar23.

İnsan teşhisinde, BT görüntüleme ve MRI’dan türetilen proton yoğunluğu yağ fraksiyonu gibi karşılaştırılabilir teknikler, hepatik yağ içeriğinin belirlenmesi için halihazırda kullanılmaktadır24,25. NAFLD bağlamında, patolojik lezyonları veya küçük damarları doğru bir şekilde ayırt etmek için yüksek yumuşak doku kontrastı gereklidir. Bu amaçla karaciğer dokusu karakteristiklerinin arttırılmasını sağlayan kontrast maddeler kullanılır. Bu tür araçlar ve materyaller, vasküler ağın mimarisi ve yoğunluğu, lipid birikimi/steatozu ve karaciğerde fonksiyonel doku alımı/lipid (şilomikron) transferi gibi çoklu karaciğer özelliklerinin ve olası patoloji ifadelerinin incelenmesine izin verir. Ek olarak, hepatik bağıl kan hacmi ve portal ven çapı da değerlendirilebilir. Çok kısa bir tarama süresinde, tüm bu parametreler NAFLD’nin değerlendirilmesi ve ilerlemesi hakkında farklı ve tamamlayıcı bilgiler sağlar, bu da non-invaziv ve ayrıntılı bir tanı geliştirmek için kullanılabilir.

Bu makalede, NAFLD’nin progresyon aşamalarını değerlendirmek için non-invaziv bir yöntem olarak yeni in vivo mikro-BT görüntüleme tekniklerinin kullanımı için adım adım bir protokol sunuyoruz. Bu protokol kullanılarak, karaciğer yağlanması ve fonksiyonel doku alımının uzunlamasına analizinin yanı sıra nispi kan hacminin, portal ven çapının ve vasküler ağın yoğunluğunun değerlendirilmesi, karaciğer hastalığının fare modellerinde gerçekleştirilebilir ve uygulanabilir.

Protocol

Tüm prosedürler BIOEMTECH personeli tarafından Avrupa ve ulusal refah yönetmeliklerine uygun olarak gerçekleştirilmiş ve ulusal makamlar tarafından onaylanmıştır (lisans numarası EL 25 BIOexp 45 / PN 49553 21/01/20). Tüm deneyler ARRIVE yönergelerine26 bağlı kalınarak tasarlanmış ve raporlanmıştır. Fareler, Yunanistan’ın Atina kentindeki Hellenic Pasteur Enstitüsü’nden satın alındı. NOT: Hayvanlar, 20-22 °C’de, -60 bağıl nem ve 12 saatl…

Representative Results

Bu temsili çalışmada, herhangi bir kontrast madde içermeyen mikro-BT görüntüleme, NAFLD’li farelerde kontrollere kıyasla daha yüksek bir karaciğer yağı yüzdesi gösterdi (Tablo 2), bu da patolojiyi doğruladı. ExiTron kontrast maddesi ve yukarıda açıklanan hepatik vasküler ağ mimarisi ve yoğunluk analizi kullanılarak, hepatik vasküler ağın toplam hacim yoğunluğunun NAFLD’li farelerde sağlıklı kontrollere kıyasla daha yüksek olduğu bulunmuştur (Şekil …

Discussion

İnsanlarda NAFLD tanısı ve evrelemesi için önerilen güncel yöntem, örnekleme yanlışlıklarının yanı sıra kanama karmaşıklığı riskini de barındıran karaciğer biyopsisidir40. Aksine, hayvan modellerinde, bu tür bir tanı ölüm sonrası histoloji ile gerçekleştirilir, ancak hayatta kalabilir karaciğer biyopsisi için protokoller artık mevcuttur ve çalışma tasarımı izin verdiğinde önerilir41. Ölüm sonrası histolojinin kullanılması, bu has…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Şekil 1 BioRender.com ile oluşturulmuştur. Bu çalışma Hellenic Foundation for Research and Innovation (#3222 – A.C.) tarafından desteklenmiştir. Anna Hadjihambi, Roger Williams Hepatoloji Enstitüsü, Karaciğer Araştırmaları Vakfı tarafından finanse edilmektedir.

Materials

eXIA160 Binitio Biomedical, Inc. https://www.binitio.com/?Page=Products
High fat diet with 60% of kilocalories from fat Research Diets, New Brunswick, NJ, USA D12492
High-fructose corn syrup  Best flavors, CA hfcs-1gallon
Lacrinorm ophthalmic ointment  Bausch & Lomb
Normal diet with 10% of kilocalories from fat  Research Diets, New Brunswick, NJ, USA D12450
Viscover ExiTron nano 12000  Milteny Biotec, Bergisch Gladbach, Germany 130-095-698
VivoQuant Invicro
X-CUBE  Molecubes, Belgium https://www.molecubes.com/systems/

Referências

  1. Lazarus, J. V., et al. Advancing the global public health agenda for NAFLD: A consensus statement. Nature Reviews. Gastroenterology & Hepatology. 19 (1), 60-78 (2022).
  2. Takahashi, Y., Fukusato, T. Histopathology of non-alcoholic fatty liver disease/non-alcoholic steatohepatitis. World Journal of Gastroenterology. 20 (42), 15539-15548 (2014).
  3. Huang, D. Q., El-Serag, H. B., Loomba, R. Global epidemiology of NAFLD-related HCC: Trends, predictions, risk factors and prevention. Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology. 18 (4), 223-238 (2021).
  4. Niederseer, D., Wernly, B., Aigner, E., Stickel, F., Datz, C. NAFLD and cardiovascular diseases: Epidemiological, mechanistic and therapeutic considerations. Journal of Clinical Medicine. 10 (3), 467 (2021).
  5. Lefere, S., et al. Differential effects of selective- and pan-PPAR agonists on experimental steatohepatitis and hepatic macrophages. Journal of Hepatology. 73 (4), 757-770 (2020).
  6. Chrysavgis, L., Papatheodoridi, A. M., Chatzigeorgiou, A., Cholongitas, E. The impact of sodium glucose co-transporter 2 inhibitors on non-alcoholic fatty liver disease.Journal of Gastroenterology and Hepatology. Journal of Gastroenterology and Hepatology. 36 (4), 893-909 (2021).
  7. Li, M., Qian, M., Xu, J. Vascular endothelial regulation of obesity-associated insulin resistance. Frontiers in Cardiovascular Medicine. 4, 51 (2017).
  8. Pi, X., Xie, L., Patterson, C. Emerging roles of vascular endothelium in metabolic homeostasis. Circulation Research. 123 (4), 477-494 (2018).
  9. Chiu, J. J., Chien, S. Effects of disturbed flow on vascular endothelium: Pathophysiological basis and clinical perspectives. Physiological Reviews. 91 (1), 327-387 (2011).
  10. Koyama, Y., Brenner, D. A. Liver inflammation and fibrosis. The Journal of Clinical Investigation. 127 (1), 55-64 (2017).
  11. Nasiri-Ansari, N., et al. Endothelial cell dysfunction and non-alcoholic fatty liver disease (NAFLD): A concise review. Cells. 11 (16), 2511 (2022).
  12. Lefere, S., et al. Angiopoietin-2 promotes pathological angiogenesis and is a therapeutic target in murine non-alcoholic fatty liver disease. Hepatology. 69 (3), 1087-1104 (2019).
  13. Pasarin, M., et al. Insulin resistance and liver microcirculation in a rat model of early NAFLD. Journal of Hepatology. 55 (5), 1095-1102 (2011).
  14. Hammoutene, A., Rautou, P. E. Role of liver sinusoidal endothelial cells in non-alcoholic fatty liver disease. Journal of Hepatology. 70 (6), 1278-1291 (2019).
  15. Sun, X., Harris, E. N. New aspects of hepatic endothelial cells in physiology and non-alcoholic fatty liver disease. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 318 (6), C1200-C1213 (2020).
  16. Iwakiri, Y., Shah, V., Rockey, D. C. Vascular pathobiology in chronic liver disease and cirrhosis – current status and future directions. Journal of Hepatology. 61 (4), 912-924 (2014).
  17. Baffy, G. Origins of portal hypertension in non-alcoholic fatty liver disease. Digestive Diseases and Sciences. 63 (3), 563-576 (2018).
  18. Ruhli, F. J., Kuhn, G., Evison, R., Muller, R., Schultz, M. Diagnostic value of micro-CT in comparison with histology in the qualitative assessment of historical human skull bone pathologies. American Journal of Physical Anthropology. 133 (4), 1099-1111 (2007).
  19. Rodt, T., et al. Micro-computed tomography of pulmonary fibrosis in mice induced by adenoviral gene transfer of biologically active transforming growth factor-beta1. Respiratory Research. 11 (1), 181 (2010).
  20. Deng, L., Xiao, S. M., Qiang, J. W., Li, Y. A., Zhang, Y. Early lung adenocarcinoma in mice: Micro-computed tomography manifestations and correlation with pathology. Translational Oncology. 10 (3), 311-317 (2017).
  21. Feng, J., et al. Abnormalities in the enamel in bmp2-deficient mice. Cells, Tissues, Organs. 194 (2-4), 216-221 (2011).
  22. Kagadis, G. C., Loudos, G., Katsanos, K., Langer, S. G., Nikiforidis, G. C. In vivo small animal imaging: current status and future prospects. Medical Physics. 37 (12), 6421-6442 (2010).
  23. Starosolski, Z., et al. Ultra high-resolution in vivo computed tomography imaging of mouse cerebrovasculature using a long circulating blood pool contrast agent. Scientific Reports. 5, 10178 (2015).
  24. Caussy, C., Reeder, S. B., Sirlin, C. B., Noninvasive Loomba, R. quantitative assessment of liver fat by MRI-PDFF as an endpoint in NASH trials. Hepatology. 68 (2), 763-772 (2018).
  25. Lubura, M., et al. Non-invasive quantification of white and brown adipose tissues and liver fat content by computed tomography in mice. PLoS One. 7 (5), e37026 (2012).
  26. Perciedu Sert, N., et al. The ARRIVE guidelines 2.0: Updated guidelines for reporting animal research. PLoS Biology. 18 (7), e3000410 (2020).
  27. Tetri, L. H., Basaranoglu, M., Brunt, E. M., Yerian, L. M., Neuschwander-Tetri, B. A. Severe NAFLD with hepatic necroinflammatory changes in mice fed trans fats and a high-fructose corn syrup equivalent. American Journal of Physiology. Gastrointestinal and Liver Physiology. 295 (5), G987-G995 (2008).
  28. Machado, M. V., et al. Mouse models of diet-induced non-alcoholic steatohepatitis reproduce the heterogeneity of the human disease. PLoS One. 10 (5), 0127991 (2015).
  29. Jensen, T., et al. Fructose and sugar: A major mediator of non-alcoholic fatty liver disease. Journal of Hepatology. 68 (5), 1063-1075 (2018).
  30. Nevzorova, Y. A., Boyer-Diaz, Z., Cubero, F. J., Gracia-Sancho, J. Animal models for liver disease – A practical approach for translational research. Journal of Hepatology. 73 (2), 423-440 (2020).
  31. De Rudder, M., et al. Automated computerized image analysis for the user-independent evaluation of disease severity in preclinical models of NAFLD/NASH. Laboratory Investigation. 100 (1), 147-160 (2020).
  32. Willekens, I., et al. Time-course of contrast enhancement in spleen and liver with Exia 160, Fenestra LC, and VC. Molecular Imaging and Biology. 11 (2), 128-135 (2009).
  33. Das, N. M., et al. In vivo quantitative microcomputed tomographic analysis of vasculature and organs in a normal and diseased mouse model. PLoS One. 11 (2), e0150085 (2016).
  34. Ehling, J., et al. CCL2-dependent infiltrating macrophages promote angiogenesis in progressive liver fibrosis. Gut. 63 (12), 1960-1971 (2014).
  35. Zhang, J., et al. Gamna-Gandy bodies of the spleen detected with susceptibility weighted imaging: maybe a new potential non-invasive marker of esophageal varices. PLoS One. 8 (1), e55626 (2013).
  36. Chen, Y., Li, J., Zhou, Q., Lyu, G., Li, S. Detection of liver and spleen stiffness in rats with portal hypertension by two-dimensional shear wave elastography. BMC Medical Imaging. 22 (1), 68 (2022).
  37. Lessa, A. S., et al. Ultrasound imaging in an experimental model of fatty liver disease and cirrhosis in rats. BMC Veterinary Research. 6, 6 (2010).
  38. Abikhzer, G., Alabed, Y. Z., Azoulay, L., Assayag, J., Rush, C. Altered hepatic metabolic activity in patients with hepatic steatosis on FDG PET/CT. AJR. American Journal of Roentgenology. 196 (1), 176-180 (2011).
  39. Newman, E. M., Rowland, A. A physiologically based pharmacokinetic model to predict the impact of metabolic changes associated with metabolic associated fatty liver disease on drug exposure. International Journal of Molecular Sciences. 23 (19), 11751 (2022).
  40. Tsai, E., Lee, T. P. Diagnosis and evaluation of non-alcoholic fatty liver disease/non-alcoholic steatohepatitis, including noninvasive biomarkers and transient elastography. Clinics in Liver Disease. 22 (1), 73-92 (2018).
  41. Oldham, S., Rivera, C., Boland, M. L., Trevaskis, J. L. Incorporation of a survivable liver biopsy procedure in mice to assess non-alcoholic steatohepatitis (NASH) resolution. Journal of Visualized Experiments. 146, e59130 (2019).
  42. Boll, H., et al. Comparison of Fenestra LC, ExiTron nano 6000, and ExiTron nano 12000 for micro-CT imaging of liver and spleen in mice. Academic Radiology. 20 (9), 1137-1143 (2013).
  43. Ashton, J. R., West, J. L., Badea, C. T. In vivo small animal micro-CT using nanoparticle contrast agents. Frontiers in Pharmacology. 6, 256 (2015).
  44. Rothe, J. H., et al. Time course of contrast enhancement by micro-CT with dedicated contrast agents in normal mice and mice with hepatocellular carcinoma: Comparison of one iodinated and two nanoparticle-based agents. Academic Radiology. 22 (2), 169-178 (2015).
  45. Toczek, J., et al. Computed tomography imaging of macrophage phagocytic activity in abdominal aortic aneurysm. Theranostics. 11 (12), 5876-5888 (2021).
  46. Mannheim, J. G., et al. Comparison of small animal CT contrast agents. Contrast Media & Molecular Imaging. 11 (4), 272-284 (2016).
check_url/pt/64838?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Hadjihambi, A., Velliou, R., Tsialios, P., Legaki, A., Chatzigeorgiou, A., Rouchota, M. G. Novel In Vivo Micro-Computed Tomography Imaging Techniques for Assessing the Progression of Non-Alcoholic Fatty Liver Disease. J. Vis. Exp. (193), e64838, doi:10.3791/64838 (2023).

View Video