Summary
Denne protokollen demonstrerer trinnvise detaljer om hvordan du trekker ut den første jekselen i musen. Det gir en alternativ metode for forskere som fokuserer på kjevebenheling og regenerering.
Abstract
Denne studien introduserer utviklingen av en molær ekstraksjonsmodell i murine mandibelen for å gi en praktisk modell for å studere alveolær beinregenerering og intramembranøs ossifikasjon. C57 / J6-mus ble brukt til å trekke ut mandibulær første molar for å etablere denne modellen. De ble avlivet, og de bilaterale mandiblene høstet, henholdsvis 1 uke og 4 uker etter operasjonen. Påfølgende seriell stereoskopisk høsting, histologisk vurdering og immunfluorescensfarging ble utført for å demonstrere vellykket kirurgi. Umiddelbart etter operasjonen viste de stereoskopiske bildene en tom ekstraksjonskontakt. Hematoksylin og eosin (H&E) ved 1 uke og Masson-farging 4 uker etter operasjonen viste at området av den opprinnelige roten var henholdsvis delvis og fullstendig fylt med bentrabekler. Immunfluorescensfargingen viste at Sp7-uttrykket økte 1 uke etter operasjonen sammenlignet med homeostasesiden, noe som tyder på kraftig osteogenese i alveolær fossa. Alle disse resultatene demonstrerte en praktisk gjennomførbar modell for reparasjon av murine tanntrekking. Kommende studier som avslører mekanismene for kjevebensdefektheling eller socket healing kan vedta denne metoden.
Introduction
Socket healing etter tanntrekking er et vanlig klinisk scenario, noe som kan resultere i upassende komplikasjoner som socket blødning, tørr socket, eller til og med kjeve osteomyelitt under uønsket helbredelse 1,2,3. Disse komorbiditetene kan svekke livskvaliteten til pasienter og, enda verre, vitalt utfordre proteserehabilitering på grunn av massivt bentap4. Selv om stikkontakthelingsstadiene er belyst, er de utilstrekkelige til å lede klinisk behandling etter tanntrekkingskirurgi i møte med ulike prognoseutfordringer4.
Flere studier basert på dyremodeller har blitt utført for å få en bedre forståelse av de underliggende mekanismene i sokkelhelingsprosessen og avverge de ovennevnte situasjonene. Sp7 er en hovedregulator i osteoblastdifferensiering, og spiller en viktig rolle i skjelettutvikling, beinhemostase og beinregenerering 5,6. Rasjonelle socket healing modeller kan vise redundans av Sp7 posttraumatisk i bein regenerering. I tillegg, til forskjell fra tilheling av lange beinbrudd, involverer bare en enkelt osteogen prosess, intramembranøs ossifikasjon, helingsprosessen til ekstraksjonssokkelen7. Dette gjør dyretanntrekkingsmodellen optimal for å studere implantatbaserte terapier, da implantatets osseointegrasjon adlyder den samme osteogene regel8.
I flere tiår har tanntrekkingsmodellen blitt utført på rotter, kaniner og hunder, siden disse artene har store tenner som er praktiske å operere på 9,10,11. Men gitt de blomstrende kravene til genetisk modifisering og som en mer adaptiv genetisk bakgrunn for mennesker, blir mus i økende grad brukt til å etablere en tannutvinningsmodell. Fremover kunne forskere avdekke en bestemt cellepopulasjons rolle i socket-helbredelsesprosessen ved hjelp av genommodifiserte mus i stedet for å observere fenotyper bare12. Blant murine tanntrekking socket modeller, tidligere studier har vist etablering og helbredelse prosessen med murine maxillary tann og fortennen ekstraksjon sockets13,14,15,16. Imidlertid kan helbredelsesmønsteret til prognosen, og detektiv- og observasjonstidspunktene, variere på tvers av protokoller. Dette appellerer til et universelt kriterium for forskere å etablere en murine socket healing modell.
Denne studien hadde som mål å utgjøre en praktisk gjennomførbar modell for helbredelse av murine socket for de ovennevnte problemene. Mandible molarer hos mus har særegne morfologiske egenskaper sammenlignet med maksillære molarer og snitt, noe som gir unike fordeler og ulemper. Siden modellene som fokuserer på murine mandibelen for tiden er vakuumbaserte, forsøkte denne protokollen å gi en oppnådd metode for å trekke ut mandibulær første molar i mus. Vi håper denne protokollen vil opplyse grunnleggende forskere med nye ideer for å avdekke underliggende mekanismer for socket healing og indikere klinisk behandling.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Alle dyreprosedyrer i denne studien ble gjennomgått og godkjent av den etiske komiteen ved West China School of Stomatology, Sichuan University (WCHSIRB-D-2017-041). Voksne C57BL/6-mus, hentet fra en kommersiell kilde (se materialfortegnelse), ble brukt i denne studien.
1. Prekirurgisk forberedelse
- Instrument forberedelse
- Klargjør ulike nåler av engangssprøyter (26G, 25G, 23G; se Materialfortegnelse) som skal brukes som heiser. Bøy kanylehodet ca. 20°-40°, som vist i figur 1.
- Forbered tann oftalmisk pinsett som tang. Sørg for at den passer til størrelsen på musens jeksler og kan gripe jekslene fast. Den ideelle pinsettstørrelsen er vist i figur 1A, B3.
- Få tak i et gummibånd (som kan rives fra en medisinsk latexhanske) som skal brukes som munnåpner, skumbrett eller korktavle som kirurgisk plattform, en hodelykt for å lyse opp operasjonsområdet og en varmepute for postoperativ gjenoppliving. Riv en tørr bomullsdott i små biter og påfør den på operasjonsstedet hvis det oppstår blødning under prosedyren.
- Anestesi forberedelse
- Musen kan bedøves av en hvilken som helst egnet bedøvelsesprotokoll som oppnår generell anestesi bekreftet gjennom "tåklemme" -metoden. Etter anestesi, bruk veterinærsalve på musens øyne.
MERK: Foretrukket generell anestesiprotokoll kan være: induksjon og vedlikehold med xylazin (10 mg/kg) og ketamin (100 mg/kg) intraperitonealt (IP);
I denne studien ble isofluran og 1 % pentobarbitalnatrium (50 mg/kg, IP) brukt til anestesiinduksjon og vedlikehold med tilleggsdoser etter behov.
- Musen kan bedøves av en hvilken som helst egnet bedøvelsesprotokoll som oppnår generell anestesi bekreftet gjennom "tåklemme" -metoden. Etter anestesi, bruk veterinærsalve på musens øyne.
- Desinfeksjon og sterilisering forberedelse
- Desinfiser operasjonsplattformen og overhead med en 75% etanolsprøyter. Før hver museprosedyre anbefales det å bruke et nytt sett engangsnåler.
MERK: Den tannede pinsetten er gjenbrukbar og kan steriliseres ved hjelp av en hvilken som helst foretrukket metode som dampsterilisering.
- Desinfiser operasjonsplattformen og overhead med en 75% etanolsprøyter. Før hver museprosedyre anbefales det å bruke et nytt sett engangsnåler.
2. Kirurgisk prosess
- Fiksering av musen og dens mandibel
- Bind musen til en kirurgisk plattform i liggende stilling ved hjelp av tape. Fest to 26 G nåler på linje med det orbitale øreplanet og ytterligere to 26 G nåler rolig under mandibelen.
- Påfør gummibåndet rundt nålene og kryss fortennene for å holde munnen åpen. Trekk tungen litt ut og fest den under gummibåndet motsatt kirurgisk side, for å forhindre at den hindrer synsfeltet (figur 1C).
- Eliminere den distale motstanden
- Hold molaren med pinsett mesialt, tving en 23 G nål inn i bukkal alveolær bein av distalroten, og gjengi et intervall.
MERK: Dette trinnet må tas med stor forsiktighet, da en nål som er innebygd for dypt, sannsynligvis vil knipse roten. - Bytt deretter til en 25 G nål for å fortsette å utvide intervallet, og gå forsiktig mot det periapikale området mens du sakte roterer nålen fremover og språklig (med musens anatomiske posisjon) for å presse roten ut av alveolar fossa.
- Hold molaren med pinsett mesialt, tving en 23 G nål inn i bukkal alveolær bein av distalroten, og gjengi et intervall.
- Eliminere mesial motstand
- Når det er nok plass, bruk en 23 G nål til å sette inn i rotgaffelen og løft jekslen okklusjonelt. Etter å ha holdt molaren tett, ta en annen 23 G nål og tving den inn i den linguale mesial periodontale membranen for å skape et intervall.
- Deretter erstatter du med en 25 G nål og roterer sakte fremover og bukkalt. Hvis noen underliggende hindringer hindrer luksasjonen av jekselen, bruk en 26 G nål for å trenge inn i rotapexen, og gjenta operasjonene.
- Endelig utvinning
- Trekk ut tannen, og mens du trekker ut, sørg for at kronen stiger høyt over okklusjonsplanet og at to intakte røtter kan ses tydelig.
MERK: Luksasjonen (dislokasjonen) av tannen regnes som det mest smertefulle og plagsomme øyeblikket i prosedyren. Før tannen dislokeres, bør bedøvelsesdybden revurderes ved hjelp av tåklemmetesten, og følgelig bør en moderat dose av et bedøvelsesmiddel administreres om nødvendig.
- Trekk ut tannen, og mens du trekker ut, sørg for at kronen stiger høyt over okklusjonsplanet og at to intakte røtter kan ses tydelig.
- Postoperativ behandling
- Etter å ha trukket tannen, bruk tørr bomull for å stoppe blødningen, plasser tungen, administrer karprofen (5 mg / kg) subkutant, og legg musen på en konstant temperatur varmepute til utvinning fra anestesi.
3. Avbildning av musekjeven og ekstraksjonskontakten
- Utarbeidelse av prøvene
- Euthanize musen ved cervical dislokasjon. Bruk oftalmisk saks til å kutte skjelettmuskulaturen festet til mandibelen og den zygomatiske buen. Klipp fra halsen langs underkanten av mandibelen til den stigende grenen og deretter til baksiden av kondylen, og trekk deretter mandibelen ned og kutt langs den nedre snittets midtlinje. På denne måten høstes de to separate mandiblene.
- Utfør fiksering, demineralisering og dehydrering etter standardprosedyren17. Når du bygger inn17, må du sørge for at okklusjonsplanet er parallelt med kanten av kassetten (se Materialfortegnelse). Fest kjeven på bunnen av kassetten, med den nedre kanten kledd (figur 2).
MERK: Denne protokollen tilbyr sagittalplanet til mandibelområdet.
- Feste prøven på mikrotomen
- Reguler prøveklemmen i mikrotomen for å stikke kondylen og kronesiden 5°-20° mer ut, for å oppnå et integrert bilde av kronemasse samtidig med rotmasse (figur 2).
- Klargjøre seksjonene
MERK: Condyle er alltid den første anatomiske strukturen som skal kuttes. Når det forsvinner ut, kan det molare området kuttes i flere skiver.- Flytt mikrotomområdet til 5 μm, samle hver åttende skive og speid etter dentin i den siste skiven. Hvis kronedentinet først vises uten noe apikalt rotdentin, justerer du prøveklemmen for å få rotområdet til å stikke ut, og omvendt.
- Samler seksjonene
MERK: Skjærevinkelen er passende til dentinet oppnås likt i både kronen og det apikale området.- Klipp langs denne retningen og se skivene under mikroskopet til tannmassen vises i både kronen og røttene. Samle seksjonene når en uklar kontur av jeksler vises på overflaten av parafinprøven17.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
For å belyse den praktiske bruken av denne metoden ble den høyre kjevemolare av to friske C57BL/6-mus (3 måneder gamle, begge hunnlige) ekstrahert og fulgt i henholdsvis 1 uke og 4 uker. De uskadet venstre mandiblene ble brukt som sunne kontroller. Figur 1A viser de spesifikke egenskapene til det kirurgiske apparatet, inkludert 26-23 G nåler og en tannet oftalmisk pinsett. 26 G-kanylen er spissfjernet og bøyd. 25 G kanylen bøyes ca. 25° ved målepunktet. 23 G nålene er krumtappen for operasjonen og er bøyd ved henholdsvis ca. 25° og 35° ved punktet (figur 1B1,B2). Pincetten har en 1 mm lang tann som passer formen på murine jekslene (figur 1B3). Figur 1C viser musens tilstand før operasjonen. De viktigste punktene er plasseringen av de fire pinnene rundt hodet og feste tungen under gummibåndet til venstre.
Figur 3A viser posisjonen og morfologien til høyre mandibulær første molar. Figur 3B viser tannstikket som umiddelbart fylles med blodpropp etter ekstraksjon. Etter 1 uke og 2 uker ble musene avlivet, og mandiblene ble demineralisert, innebygd i parafin17 og snittet i skiver. Figur 4A viser helingsprosessen til kontakten etter 1 uke. Noen svamplignende trabekulære bein ble dannet, men blodproppen ble værende. I helbredelsesprosessen etter 2 uker (figur 4B) var sokkelen fullstendig fylt med svampben, noe som betyr at regenereringen var omtrent fullført. Immunfluorescensfargingen (IF) bekreftet også resultatene av histopatologifargingen. I figur 5 kom Sp7 bredt til uttrykk i beinmargscellene, spesielt i margen, som er den bendannende fronten. Under homeostasetilstanden var de trabekulære beinene konsistente og sammenflytende, med benmargscelleblokker drysset som øyer. Men 1 uke etter operasjonen fylte mange Sp7-uttrykkende celler ekstraksjonssokkelen, med nydannet trabekulært bein drysset rundt. Ved 4 uker etter operasjonen reverserte tilstanden og vendte seg til stort sett sammenslått trabekulært bein igjen, og aktiviteten til Sp7-uttrykkende celler falt til et nivå som nærmet seg homeostasetilstanden.
Figur 1 Objektbilder av kirurgiske apparater og kirurgiforberedte mus. (A) De kirurgiske apparatene besto hovedsakelig av 26, 25 og 23 G nåler og en tannpinsett. (B) Nålene ble bøyd ved punktet ved 20°-40° (B1,2). Pinsettens tann må være ca. 1 mm stor (B3). Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.
Figur 2: Flytskjemaet for prosedyren fra tanntrekking til snitting. Dette bildet viser en skjematisk flyt fra tanntrekking til snitting. Den høyre mandibulære første molaren ble ekstrahert i henhold til protokollen, deretter ble musen avlivet, og mandibelen ble høstet. Ved høsting ble mandibelen gjennomvåt i 4% POM i 24 timer, deretter gjennomvåt i 10% EDTA; Væsken ble fornyet hver dag i 14 dager. Deretter ble prøvene dehydrert og innebygd i parafin etter en universell protokoll. Den bukkale eller språklige siden må være med forsiden ned, da sagittale planskiver skal seksjoneres. Til slutt, når prøven festes på prøveklemmen, må kondylen og kronesidene være 5°-20° utstått. Forkortelser: POM = paraformaldehyd; EDTA = etylendiamintetraeddiksyre. Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.
Figur 3: Stereoskopiske bilder av musens første jeksel og ekstraksjonssokkelen . (A) Stereoskopisk bilde av høyre mandibulær første molar, indikert med den gule pilen. (B) Ekstraksjonskontakten til den første høyre mandibulære molar etter operasjonen, indikert med den gule pilen. Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.
Figur 4: H&E-farging. H&E-farging av ekstraksjonsuttaket ved (A) 1 uke og (B) 4 uker etter operasjonen. De gule pilene indikerer mandibulær andre molar i nærheten av den første molare ekstraksjonssokkelen. Den stiplede rektangellinjen indikerer det første molare ekstraksjonssokkelområdet. Skala barer: 500 μm. Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.
Figur 5: Deteksjon av Sp7 via IF-farging. Dette bildet viser fordelingen av Sp7-uttrykk i benmargscellene fra mus og det omkringliggende trabekulære benet under en homeostasetilstand (frisk kontroll), henholdsvis 1 uke og 4 uker etter operasjonen. Den hvite stiplede linjen konturerte den estimerte skalaen av det trabekulære beinet. De gule pilene indikerte de typiske Sp7-uttrykkende cellene. Skala barer: 50 μm. Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Murine socket healing-modellen er en viktig metode for å avdekke de underliggende mekanismene i beinheling og regenerering, og til slutt løse kliniske utfordringer. Eksisterende studier har vist muligheten for snittekstraksjonsmodellen og den maksillære molare ekstraksjonsmodellen, mens studier ikke har brukt den første jekselmodellen13,17,18. Imidlertid er fortenner avgjørende for gnagerliv, og deres svekkelse kan være dødelig. Dessuten, da beinet i maxillaen er mer avbrytende enn mandibelen, kan det være noe ulikhet i de underliggende mekanismene under helbredelsesprosessen. Derfor er det nødvendig å etablere en mulig mandibulær første molar ekstraksjonsmodell.
Det viktigste hensynet ved tanntrekking er å unngå rotbrudd19. Murine jeksler er små og sårbare, og restrøttene i mandibelen kan ikke ekstraheres. I denne protokollen eksisterer imidlertid den rotbrytende risikoen gjennom hele operasjonen. Dermed er det avgjørende å holde molaren tett og strengt kontrollere kraften. For å være spesifikk, når man eliminerer den distale motstanden, må man være forsiktig så man ikke skrumper kronen; når man eliminerer mesial motstand, må man være forsiktig slik at nålen ikke strømmer fra rotgaffelen; Når du bruker nåler til å gjengi intervaller, er det viktig å huske at intervallene skal mellom roten og alveolarprosessen, derfor bør man ikke bruke mye rotasjonskraft, da dette kan føre til stor risiko for at roten bryter.
Å trekke ut murine mandibulær første molar er vanskelig og trenger tilstrekkelig trening for å mestre. Under operasjonen kan det oppstå nødsituasjoner, inkludert, men ikke begrenset til følgende: (1) tanntrekkingsinstrumenter har en tendens til å skli og stikke bløtvev rundt på grunn av mandibelens og tungens mobilitet, noe som kan forårsake mild til alvorlig blødning. I dette tilfellet kan man sette en ren, tørr bomullsdott inn i munnen, slippe gummistrikken og la den lukke spontant en stund. Kompresjon for å stoppe blødning er ikke foreslått, da dette kan føre til større kuttskader og blødninger. (2) Operatører blir ofte konfrontert med et binært valg på alveolar benplatereservasjon eller molarrotreservasjon, da de første jekslene er tett forbundet med mandibelen. For å lindre denne bindingskraften kan operatøren bryte den linguale eller bukkale beinplaten; Ellers fører en voldsom rotasjonskraft i kontakten til at roten(e) blir ødelagt. Om man velger å bevare benplaten avhenger av forskningsmålet. (3) Ekstrahering av mandibulær første molar kan være mer traumatisk enn den maksillære første molar eller fortennen. Vi foreslår at du ser med gransking til musen våkner etter operasjonen. (4) Den mesiale roten til den mandibulære andre jekselen er sårbar på grunn av det begrensede operasjonsrommet i bukkalområdet; Noen ganger kan selv kronen til den andre molaren bli ødelagt. Fordi fraværet av den andre molaren ikke påvirker observasjonen av den første molare ekstraksjonssokkelen, kan denne ulykken ignoreres. (5) Overvåk anestesidybden til musen nøye under tanntrekkingen, da dette er en smertefull prosedyre for både mennesker og gnagere. Administrer bedøvelsesmidler etter behov for å opprettholde et kirurgisk anestesiplan til ekstraksjonen er fullført. I tillegg kan langvarig trykk fra gummibåndet forårsake oksygenmangel i tungen, preget av bleke membraner. Operasjoner må stoppes umiddelbart i slike tilfeller, med instrumenter fjernet, slik at musen får tid til å komme seg.
Samlet sett kan ufaglærte operatører utilsiktet påføre musene utilsiktede skader, som listet opp i punkt 1. For å sikre sikkerheten og trivselen til alle forsøksdyr, anbefales det sterkt at det utføres god praksis på murine før du mestrer denne ferdigheten og utfører levende prosedyrer på faktiske mus.
Selv om denne protokollen gir en alternativ metode for forskere som fokuserer på kjevebenheling og regenerering, har den flere ulemper. (1) Mandibelen kan ikke fikses og har stor fleksibilitet. Som et resultat er heiser vanskelig å holde et jevnvirkende punkt på alveolarbenet, noe som forårsaker noen nødsituasjoner. (2) Voksne hannmus har intensivert mandibelben, så det kan være vanskelig å eliminere mesiell motstand. (3) Denne protokollen gjelder ikke for venstre mandibulær første molare ekstraksjon.
For å konkludere, selv om denne protokollen har demonstrert detaljene for å trekke ut murine mandibulær første molar, trenger operatørene fortsatt mye praksis og forsiktighet for å utføre en vellykket operasjon.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Alle originale data og bilder er inkludert i dette papiret. Forfatterne oppgir ingen interessekonflikt.
Acknowledgments
Dette arbeidet støttes av National Natural Science Foundation of China 81825005 (LY), 82201045 (F.Y.) og 82100982 (F.L.), og av Sichuan Province Science and Technology Program 2021JDRC0144 (F.L.), 2022JDRC0130 (F.Y.).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 23/25/26 G needle | Chengdu Xinjin Shifeng Medical Apparatus & Instruments Co. LTD. | SB1-074(IV) | |
| C57/B6J | Gempharmatech Experimental Animals Company, Chengdu, China | C57/B6J | |
| DAPI Staining Solution | Beyotime | Cat#C1005 | |
| Embedding Cassettes | CITOTEST Scientific | 80106-1100-16 | |
| Hematoxylin and Eosin Stain Kit | Biosharp | BL700B | |
| Isoflurane | RWD Life Science Co.,Ltd | R510-22-10 | |
| Masson’s Trichrome Stain Kit | Solarbio | G1340 | |
| Microtome | Leica | RM2235 | |
| Pentobarbital Sodium | Huaxia Chemical Reagent Co., Ltd | 2018042001 | |
| Rabbit polyclonal | anti-Sp7 | Abcam Cat# ab22552 | |
| Tweezers | Chengdu Xinjin Shifeng Medical Apparatus & Instruments Co. LTD. | SB2-115 |
References
- Mamoun, J. Dry socket etiology, diagnosis, and clinical treatment techniques. Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons. 44 (2), 52-58 (2018).
- Laraki, M., Chbicheb, S., El Wady, W.
- Soundia, A., et al. Osteonecrosis of the jaws (ONJ) in mice after extraction of teeth with periradicular disease. Bone. 90, 133-141 (2016).
- Araújo, M. G., Silva, C. O., Misawa, M., Sukekava, F. Alveolar socket healing: what can we learn. Periodontology 2000. 68 (1), 122-134 (2015).
- Hojo, H., Ohba, S. Sp7 Action in the skeleton: its mode of action, functions, and relevance to skeletal diseases. International Journal of Molecular Sciences. 23 (10), 5647 (2022).
- Zhou, X., et al. Multiple functions of Osterix are required for bone growth and homeostasis in postnatal mice. Proceedings of the National Academy of Sciences. 107 (29), 12919-12924 (2010).
- Ito, S., et al. Pathological differences in the bone healing processes between tooth extraction socket and femoral fracture. Bone Reports. 16, 101522 (2022).
- Vasak, C., et al. Early bone apposition to hydrophilic and hydrophobic titanium implant surfaces: a histologic and histomorphometric study in minipigs. Clinical Oral Implants Research. 25 (12), 1378-1385 (2014).
- Araújo, M. G., Lindhe, J. Dimensional ridge alterations following tooth extraction. An experimental study in the dog. Journal of Clinical Periodontology. 32 (2), 212-218 (2005).
- Kim, I. -S., Ki, H. -C., Lee, W., Kim, H., Park, J. -B. The effect of systemically administered bisphosphonates on bony healing after tooth extraction and osseointegration of dental implants in the rabbit maxilla. The International Journal of Oral & Maxillofacial Implants. 28 (5), 1194-1200 (2013).
- Kanyama, M., et al. Connective tissue growth factor expressed in rat alveolar bone regeneration sites after tooth extraction. Archives of Oral Biology. 48 (10), 723-730 (2003).
- Zhou, S., et al. The role of IFT140 in early bone healing of tooth extraction sockets. Oral Diseases. 28 (4), 1188-1197 (2022).
- Apaza Alccayhuaman, K. A., et al. FasL is required for osseous healing in extraction sockets in mice. Frontiers in Immunology. 12, 678873 (2021).
- Avivi-Arber, L., Avivi, D., Perez, M., Arber, N., Shapira, S. Impaired bone healing at tooth extraction sites in CD24-deficient mice: A pilot study. PLoS One. 13 (2), 0191665 (2018).
- Vieira, A. E., et al. Intramembranous bone healing process subsequent to tooth extraction in mice: micro-computed tomography, histomorphometric and molecular characterization. PLoS One. 10 (5), 0128021 (2015).
- Min, K. -K., et al. Effects of resveratrol on bone-healing capacity in the mouse tooth extraction socket. Journal of Periodontal Research. 55 (2), 247-257 (2020).
- Yu, F., Li, F., Zheng, L., Ye, L. Epigenetic controls of Sonic hedgehog guarantee fidelity of epithelial adult stem cells trajectory in regeneration. Science Advances. 8 (29), (2022).
- Kuroshima, S., et al. Transplantation of noncultured stromal vascular fraction cells of adipose tissue ameliorates osteonecrosis of the jaw-like lesions in mice. Journal of bone and Mineral Research. 33 (1), 154-166 (2018).
- Ahel, V., et al. Forces that fracture teeth during extraction with mandibular premolar and maxillary incisor forceps. The British Journal of Oral & Maxillofacial Surgery. 53 (10), 982-987 (2015).
