Summary

ヒトケロイド組織からの初代皮膚線維芽細胞の単離、培養、および特性評価

Published: July 28, 2023
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Summary

この研究では、ケロイド組織から初代線維芽細胞を確立するための最適化されたプロトコルについて説明します 純粋で生存可能な線維芽細胞を効果的かつ着実に提供できます。

Abstract

ケロイド組織の主要な細胞型である線維芽細胞は、ケロイドの形成と発達に不可欠な役割を果たします。ケロイド組織に由来する初代線維芽細胞の単離と培養は、ケロイドの生物学的機能と分子メカニズム、およびそれらを治療するための新しい治療戦略のさらなる研究の基礎となります。初代線維芽細胞を得るための従来の方法には、細胞状態の悪さ、他の種類の細胞との混合、汚染に対する感受性などの制限があります。この論文では、線維芽細胞を取得する際に起こりうる問題の発生を減らすことができる、最適化され、簡単に再現できるプロトコルについて説明します。このプロトコルでは、線維芽細胞は単離後5日で観察され、10日間の培養後にほぼ80%のコンフルエントに達することができます。次に、線維芽細胞を継代し、免疫蛍光アッセイ用のPDGFRαおよびビメンチン抗体およびフローサイトメトリー用のCD90抗体を使用して検証します。結論として、ケロイド組織からの線維芽細胞は、このプロトコルを介して容易に取得することができ、ケロイド研究のための実験室で豊富で安定した細胞源を提供することができます。

Introduction

線維増殖性疾患であるケロイドは、プラークの継続的な成長として現れ、多くの場合、自己制限なしに周囲の正常な皮膚に侵入し、患者にさまざまな程度のかゆみ、痛み、美容的および心理的負担を引き起こします1。ケロイドに関与する初代細胞である線維芽細胞は、過剰な増殖、冗長な細胞外マトリックス産生、および無秩序なコラーゲンを通じて、この病気の形成と発症に不可欠な役割を果たします2,3。しかし、根底にある病因は不明であり、ケロイドの効果的な治療法はまだ不足しています。したがって、さらなる研究が急務です4,5

in vivoでのケロイド研究に理想的な動物モデルがないため6,7,ケロイド組織から初代線維芽細胞を取得してin vitroモデルを構築することで、ロイド研究の実現可能性と信頼性を提供できます2,6初代細胞は生体組織から直接誘導される細胞であり、これらの細胞は細胞株と比較して複数の個体の生理学的状態および遺伝的背景により近いことが一般に認識されている8,9。初代細胞の培養は、細胞の成長と代謝、およびその他の細胞表現型を研究するための強力な手段を提供します。

現在、初代線維芽細胞を獲得するための2つの方法がある:酵素消化および外植片培養。しかし、初代線維芽細胞を得るには、さまざまな細菌や真菌による汚染のリスク、除去が容易ではない他の種類の細胞との混合、培養サイクルの長い期間その後の元の細胞と比較した細胞特性の変化など、いくつかの障害が確認されています9.したがって、初代線維芽細胞を得るための実行可能で効果的なプロセスを開発することは、さらなる研究と応用の基礎となります。この研究では、ケロイド組織から初代線維芽細胞を抽出するための最適化されたプロトコルについて説明します 純粋で生存可能な線維芽細胞を効果的かつ着実に提供できます。

Protocol

この研究は、南部医科大学皮膚科病院の治験審査委員会によって承認されました(2020081)。個人から組織を採取する前に、インフォームド患者の同意を得た。 1. 事前準備 注意: 次の手順は、生物学的安全キャビネットの下の無菌環境で実行する必要があります。 高グルコースダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)に10%ウシ胎児血清(FBS)?…

Representative Results

プロトコルのタイムラインを 図1Aにまとめます。分離プロセスの代表的な画像を 図2に示します。表皮層および脂肪層を注意深く除去し、真皮層を3〜4mm2の小さな断片に分離し、それらをペトリ皿に接種した。 図3Aに示すように、組織片のいくつかの線維芽細胞伸長物は、処理後5日目に顕微鏡?…

Discussion

ケロイド組織から初代線維芽細胞を得ることは、さらなる研究のための重要な基盤です。これまで、初代線維芽細胞を獲得するには、酵素消化と外植片培養の2つの方法がありました11121314。ただし、どちらの従来の方法にも、汚染に対する感受性、他の種類の細胞との混合、長い培養期間?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、中国国家自然科学財団(助成金番号81903189および82073418)および広州科学技術財団(助成金番号202102020025)からの助成金によって支援されました。

Materials

1.5 mL sterile centrifuge tube JETBIOFIL CFT002015
15 mL sterile centrifuge tube JETBIOFIL 8076
4% polyformaldehyde Beyotime Biotechnology P0099 Cell fixation
50 mL sterile centrifuge tube JETBIOFIL 8081 Put keloid tissue
Alexa Fluor-555 goat anti-rabbit IgG  Abcam Alexa Fluor 555  second antibody for immunofluorescence staining assay
Anti human CD90 BioLegend B301002 Identify the purity of fibroblasts
Antibody diluent Beyotime Biotechnology P0262
Biological safety cabinet  Thermo Scientific 1300 series A2 Isolation and culture cells
Bovine serum albumin aladdin B265993 Blocking for immunofluorescence staining assay
Carbon dioxide incubator ESCO CCL-170B-8 Using for culturing cells
Cell cryotubes Corning 43513 Store the cells in low temperature
centrifugal machine Thermo Fisher ST 16R Discard supernatant 
DAPI Beyotime Biotechnology C1006 Stain the cellular nucleus
DMSO MP Biomedicals 196055 Using for preserving cells
Dulbecco's modified eagle medium Gibco C11995500BT Culture medium solution
Fetal bovine serum BI 04-001-1A
Flow cytometer BD BD FACSCelesta Observing the identity of cells
frozen box Thermo Scientific  5100-0050
Inverted microscope Nikon ECLIPSE Ts2
Laser confocal microscope Nikon AIR-HD25 Observing the immunofluorescence staining assay
PDGFR-α antibody CST 3174T First antibody for immunofluorescence staining assay
Penicillin-streptomycin-Am solution Solarbio P1410 Add in culture medium solution to avoid contamination
petri dish JETBIOFIL 7556 Culture fibroblasts
Phosphate buffered saline solution Gibco C10010500BT Culture medium solution
Rabbit (DAIE) mAB IgG XR (R) Isotuge Control (PE) Cell Signaling Technology 5742S As a control for flow cytometry
Round coverslip Biosharp 801007 Cell culture
Triton X 100 Solarbio T8200 Punch holes in the cell membrane
Trypsin-EDTA Gibco 25200072 Used for passaging cells
Vimentin antibody Abcam ab8978 First antibody for immunofluorescence staining assay

Referências

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Song, J., Zhang, Y., Pan, H., Xu, X., Deng, C., Yang, B. Isolation, Culture, and Characterization of Primary Dermal Fibroblasts from Human Keloid Tissue. J. Vis. Exp. (197), e65153, doi:10.3791/65153 (2023).

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