Summary

Method for Culture of Early Hühnerembryonen ex vivo (New Culture)

Published: October 20, 2008
doi:

Summary

Dieses Video zeigt neue Kultur, eine Methode, durch die Hühnerembryonen außerhalb der Eizelle bis zu 24 h kultiviert. Diese Methode ermöglicht ein bis frühen Entwicklung (Primitivstreifens bis 14 som.), Ein Zeitraum entsprechend E7-9 in der Maus zu studieren. Anwendungen dieser Technik sind die Elektroporation, in situ Hybridisierung und Immunhistochemie.

Abstract

Der Hühnerembryo ist ein wertvolles Werkzeug in der Studie der frühen Embryonalentwicklung. Seine Transparenz, Zugänglichkeit und einfache Handhabung machen ihn zu einem idealen Werkzeug zur Untersuchung der Bildung und Strukturierung des Gehirns, Neuralrohr, Somiten und Herz Primordien. Anwendungen von Hühnerembryonen Kultur gehören die Elektroporation von DNA-oder RNA-Konstrukte, um Genfunktionen, Transplantate growth factor Kügelchen wie FGFs und BMPs sowie whole mount in situ Hybridisierung und Immunhistochemie analysiert. Dieses Video zeigt die verschiedenen Schritte in Hühnerembryo Kultur; Erste, der Embryo in Kochsalzlösung explantiert. Dann wird der Embryo auf einem Glasring zentriert. Die Membranen um den Embryo sind die Wände entlang des Rings aufgehoben. Der Ring wird dann in einer Kulturschale mit einem Pool von Albumin platziert. Die Kulturschale wird verschlossen und in einer feuchten Kammer, wo der Embryo bis zu 24 Stunden kultiviert. Schließlich ist der Embryo vom Ring entfernt, fixiert und für weitere Anwendungen. Ein Leitfaden für die Fehlersuche wird ebenfalls vorgestellt.

Protocol

Teil 1: Bench einrichten Eine feuchte Kammer, indem Kimwipe / ddH 2 O in Kunststoff-Kammer vorbereitet. Eine Falcon-Röhrchen an Albumin, Geschirr für Kultur, Ringe, Uhrglas und Entsorgung sammeln auf der Bank platziert. Pyrex Schüssel wird mit 1,4 l Kochsalzlösung gefüllt (siehe Erläuterungen [a]). Teil 2: Embryo ist in Kochsalzlösung explantierten Die Eier werden aus dem Inkubator nach 16 Stunden (Stufe 4) entfernt. Das Ei ist,…

Discussion

Die neue Kultur-Methode 2 kann für eine Vielzahl von Anwendungen, von der Transplantate Wachstumsfaktor mit Perlen 3, um whole mount in situ Hybridisierung und Immunhistochemie ganze Berg 4 verwendet werden. Kultur über einen 24-Stunden-Periode ermöglicht die kontinuierliche Überwachung der embryonalen Entwicklung in Anwendungen wie Zeitraffer Zellbewegung Analyse 5 oder Überwachung von GFP mit elektroporiert Konstrukte 6.

Acknowledgements

Diese Arbeit wurde von der Margaret M. Alkek Stiftung RHF unterstützt.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Eggs Animal Charles River Laboratories Premium Fertile  
Stereomicroscope Microscope Leica Microsystems MZ9.5 or similar  
Marsh Automatic Incubator Tool Lyon RX  
Hybridization Incubator Tool Robbins Scientific M1000  
Pyrex dish (2) Tool      
Watchmaker’s glass 50mm Tool VWR 66112-060  
Glass rings Tool Physical Plant facility   cut 4 mm thick sections of glass tubing (27 mm outer diam, 25 mm inner diam). Do not fine polish.
Curved Forceps (1) Surgery Electron Microscopy Sciences 72991-4C  
Forceps (2) Surgery Fine Science Tools 11002-13 blunt ended using sharpening Stone and 100ul mineral oil
Sharpening Stone Dan’s Black Arkansas Surgery Electron Microscopy Sciences 62082-00  
Fine scissors Surgery Fine Science Tools 14161-10  
Plastic dishes Tool Falcon 353001  
Rubber Bulb Tool Electron Microscopy Sciences 70980  
Pasteur Capillary Pipette Tool Electron Microscopy Sciences 70950-12 round edge under flame
Microcapillary tube Surgery Sigma P1049-1PAK Pull using vertical micropipette puller; blunt end with fine forceps
Microdissecting knife Surgery Fine Science Tools 10056-12 Use to puncture cavities prior to in situ hybridization
Minuten pins 0.2mm diam Surgery Fine Science Tools 26002-20  
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base Reagent Dow Corning 0001986475 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
Diethylpyrocarbonate (depc) Reagent Acros Organics 10025025 Add 1ml depc to 1l PBS; shake; autoclave

Referências

  1. Pannett, P. A., Compton, C. A. The cultivation of tissues in saline. Lancet. 206, 381-384 (1924).
  2. New, D. T. A new technique for the cultivation of the chick embryo in vitro. J. Embryol. Exp. Morph. 3, 326-331 (1955).
  3. Alvarez, I. S., Araujo, M., Nieto, M. A. Neural induction in whole chick embryo cultures by FGF. Dev. Biol. 199, 42-54 (1998).
  4. Psychoyos, D., Stern, C. D. Restoration of the organizer after radical ablation of Hensen’s node and the anterior primitive streak in the chick embryo. Development. 122, 3263-3273 (1996).
  5. Psychoyos, D., Stern, C. D. Fates and migratory routes of primitive streak cells in the chick embryo. Development. 122, 1523-1534 (1996).
  6. Voiculescu, O., Papanayotou, C., Stern, C. D. Spatially and temporally controlled electroporation of early chick embryos. Nature Protoc. 3, 419-426 (2008).
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Citar este artigo
Psychoyos, D., Finnell, R. Method for Culture of Early Chick Embryos ex vivo (New Culture). J. Vis. Exp. (20), e903, doi:10.3791/903 (2008).

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