Summary

Diretta instillazione tracheale di soluti in polmone mouse

Published: August 29, 2010
doi:

Summary

Instillazioni intratracheale soluti consegnare direttamente nei polmoni. Questa procedura obiettivi la consegna del instillate nelle regioni distali del polmone, ed è quindi spesso incorporati in studi volti a studiare alveoli. Forniamo un protocollo dettagliato di sopravvivenza per l'esecuzione di instillazioni intratracheale nei topi.

Abstract

Instillazioni intratracheale soluti consegnare direttamente nei polmoni. Questa procedura obiettivi la consegna del instillate nelle regioni distali del polmone, ed è quindi spesso incorporati in studi volti a studiare alveoli. Forniamo un protocollo dettagliato di sopravvivenza per l'esecuzione di instillazioni intratracheale nei topi. Usando questo approccio, si può avere come bersaglio la consegna di soluti test o solidi (come la terapia del polmone, tensioattivi, virus e oligonucleotidi piccolo) nel polmone distale. Instillazioni tracheale può essere il metodo preferito, su protocolli per inalazione, che potrebbe in primo luogo di destinazione del tratto respiratorio superiore e, eventualmente, esporre al ricercatore di sostanze potenzialmente pericolose. Inoltre, utilizzando il protocollo instillazione tracheale, gli animali possono riprendersi completamente dalla procedura non invasiva. Questo permette di fare successive misurazioni fisiologiche di test sugli animali, o reinstallazione usando lo stesso animale. La quantità di instillate introdotto nel polmone deve essere accuratamente determinato e osmoticamente bilanciata per assicurare il recupero degli animali. Tipicamente, il volume instillate 30-75 microlitri può essere introdotto in polmone del mouse.

Protocol

1. Anestesia Anestesia topi con isoflurano può facilitare la movimentazione degli animali e la moderazione prima di somministrare l'anestesia intraperitaneally. L'uso di un anestetico per via inalatoria può o può non essere adatto per uno studio particolare: innanzitutto determinare l'impatto dell'utilizzo di isoflurano, o qualsiasi altro anestetico, il polmone studio proposto. Anestetizzare gli animali con isoflurano. Il video mostra l'uso di una camera vaporizzatore isofluor…

Discussion

Instillazioni intratracheale sono stati utilizzati in diversi studi diversi per valutare la tossicità dei composti di prova (6), indurre lesioni alveolare polmonare (4, 7), sostituire tensioattivi (8), così come alterare l'espressione genica tramite la consegna di piccoli oligonucleotidi direttamente nel polmone (5). Attualmente stiamo esplorando l'uso di infondere 1) fluorescente redox-sensibili materiale nei polmoni per misurare lo stress ossidativo in vivo in condizioni normali e fisiopatologiche, come pure…

Acknowledgements

Questo lavoro è stato sostenuto da NIH K99 HL09222601 e lo S & R Fondazione Ryaji Uneo Award assegnato a MNH.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Isoflurane   Webster Veterinary Sterling , MA 14043-220-05  
Xylazine   Lloyd Laboratories Shenandoah, IA   New Animal Drug Application #139-236
Ketamine   Bioniche Pharma Lake Forest, IL 67457-001-10  
Nair       Available at drug stores
1mL SubQ Syringe   BD Syringe Franklin Lakes, NJ 309597 26 5/8 G
4-0 Nylon Suture   Ethicon San Lorenzo, Puerto Rico 1894G.S30  

References

  1. Driscoll, K. E., Costa, D. L., Hatch, G., Henderson, R., Oberdorster, G., Salem, H., Schlesinger, R. B. Intratracheal instillation as an exposure technique for the evaluation of respiratory tract toxicity: uses and limitations. Toxicol Sci. 55, 24-35 (2000).
  2. Helms, M. N., Jain, L., Self, J. L., Eaton, D. C. Redox regulation of epithelial sodium channels examined in alveolar type 1 and 2 cells patch-clamped in lung slice tissue. J Biol Chem. 283, 22875-22883 (2008).
  3. Helms, M. N., Self, J., Bao, H. F., Job, L. C., Jain, L., Eaton, D. C. Dopamine activates amiloride-sensitive sodium channels in alveolar type I cells in lung slice preparations. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 291, L610-L618 (2006).
  4. Iyer, S. S., Ramirez, A. M., Ritzenthaler, J. D., Torres-Gonzalez, E., Roser-Page, S., Mora, A. L., Brigham, K. L., Jones, D. P., Roman, J., Rojas, M. Oxidation of extracellular cysteine/cystine redox state in bleomycin-induced lung fibrosis. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 296, L37-L45 (2009).
  5. Li, T., Folkesson, H. G. RNA interference for alpha-ENaC inhibits rat lung fluid absorption in vivo. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 290, L649-L660 (2006).
  6. Sager, T., Porter, D., Robinson, V., Lindsley, W., Schwegler-Berry, D., Castranova, V. An improved method to disperse nanoparticles for in vitro and in vivo investigation of toxicity. Nanotoxicol. 1, 118-129 (2007).
  7. Xu, J., Gonzalez, E. T., Iyer, S. S., Mac, V., Mora, A. L., Sutliff, R. L., Reed, A., Brigham, K. L., Kelly, P., Rojas, M. Use of senescence-accelerated mouse model in bleomycin-induced lung injury suggests that bone marrow-derived cells can alter the outcome of lung injury in aged mice. J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 64, 731-739 (2009).
  8. Yeh, T. F., Lin, H. C., Chang, C. H., Wu, T. S., Su, B. H., Li, T. C., Pyati, S., Tsai, C. H. Early intratracheal instillation of budesonide using surfactant as a vehicle to prevent chronic lung disease in preterm infants: a pilot study. Pediatrics. 121, e1310-e1318 (2008).
check_url/1941?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Helms, M. N., Torres-Gonzalez, E., Goodson, P., Rojas, M. Direct Tracheal Instillation of Solutes into Mouse Lung. J. Vis. Exp. (42), e1941, doi:10.3791/1941 (2010).

View Video