Summary

Diagnostic Necropsy und ausgewählte Gewebe und Probenentnahme bei Ratten und Mäusen

Published: August 07, 2011
doi:

Summary

Dieser Artikel beschreibt die Verfahren für die Durchführung eine grundlegende Obduktion einer Maus oder Ratte, und die Sammlung der wichtigsten Organe, sowie eine größere Herausforderung Probe Typen aus für histologische, mikrobiologische und PCR Auswertung.

Abstract

Es gibt mehrere Sample-Typen, die von einem Tier eingeschläfert gesammelt werden, um möglicherweise zu diagnostizieren oder entdecke Infektionserreger in ein Tier Kolonie. Proper Sammlung von Geweben für weitere histologische Verarbeitung kann Auswirkungen auf die Qualität der Testergebnisse. Dieser Artikel beschreibt das Verhalten eines Bruttogrundgehalt Untersuchung einschließlich Identifizierung von Herz, Leber, Lunge, Nieren und Milz, und wie diese Organe zu sammeln. Zusätzlich vier desto schwieriger Gewebe / Probennahme-Techniken werden demonstriert. Lung Sammlung und Perfusion kann besonders anspruchsvoll wie das Gewebe muss ordnungsgemäß mit einem Fixativ, um für Innere des Gewebes richtig zu fixieren und gründliche histologische Untersuchung zu ermöglichen aufgeblasen werden. Dieser Artikel zeigt, die Schritt für Schritt Technik, um die Lunge zu entfernen und pumpen sie mit Fixativ, um eine optimale Fixierung des Gewebes innerhalb von 24 Stunden zu erreichen. Brain-Sammlung kann ähnlich herausfordernd wie das Gewebe weich und leicht beschädigt werden. Dieser Artikel zeigt, die Schritt für Schritt Technik zu entlarven und entfernen Sie das Gehirn aus dem Schädel mit minimaler Schädigung des Gewebes. Die mesenterialen Lymphknoten ist ein gutes Beispiel geben, in denen viele gemeinsame Infektionserreger erkennen als Darmviren länger anhalten in den Lymphknoten, als sie im Kot abgestoßen werden. Dieser Artikel zeigt, die Schritt für Schritt Verfahren zum Auffinden und aseptisch Entfernen der mesenterialen Lymphknoten. Schließlich kann die Identifizierung von Infektionserregern der Atemwege durch bakterielle Kultur oder PCR-Tests von Nasen-und / oder bronchiale Flüssigkeit ansaugt bei der Obduktion entnommen durchgeführt werden. Dieses Verfahren beschreibt, Beschaffung und Vorbereitung der Atemwege absaugen Probe für die Bakterienkultur und PCR-Tests.

Protocol

1. Vorbereitung für die Autopsie Wichtige Teile der grobe Obduktion (Autopsie) sind die Geschichte des Tieres und der Beschreibung der Befunde. Ein Veterinärpathologe Lesen Ihrer Histopathologie Dias können nicht das Tier gesehen haben und sich auf Sie verlassen für die Hintergrund-Informationen. Beschreiben Sie genau, was Sie, bevor Sie das Tier einschläfern zu sehen. Zum Beispiel, "weiblichen Maus, einer von fünf in den Käfig; C57BL/6N; geneigtem Kopf nach rechts" oder &…

Discussion

Die Datensammlung am Ende der Studie kann eine Obduktion der Tiere. Beschreiben Sie auch, was man sieht und denken Sie daran, alle Gewebe zu untersuchen. Diese Verfahren sind in erster Linie auf Autopsie und Probennahme für Infektionskrankheiten Überwachung zu optimieren konzipiert, aber die meisten sind leicht zu konzentrieren Untersuchungen von mutmaßlichen Krankheit Vorfälle oder Ausbrüche, in denen vielleicht nur eine Teilmenge der Prozeduren eingesetzt werden würden angepasst. Viele der Verfahren sind auch f?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Materials

Reagent name Company Catalog number Comments
Cutting board Thermo Electron Corp Cat #36114 Cat #36114  
Small scissors ROBOZ RS-5910, G204 23mm blades, 3.5″ length, straight
Medium scissors ROBOZ RS-6808, G207 5″
Large scissors ROBOZ RS-6826, G65″ 6.25″
Forceps-Curved ROBOZ RS-8254 (M1/21004) 4.5″, serrated, slight curve
Forceps-Microdissecting ROBOZ RS-5238 Hudson-(EWALD)
Forceps-Tissue Forceps ROBOZ RS–8160 Rat tooth
Flame sterilizer Oxford Labware Products Bacti-Cinerator #5889-001007  
Scalpel Cancer Diagnostics, Inc. Finger Scalpels #60, Cat#FS0060  
Pipettes VWR Pasteur Pipet 5 3/4″, Cat#14672-400  
Autoclave bags Propper Manufacturing Company Sterilizer Bag Paper Pouches Cat#021002(3100923)E09110 For Pasteur pipettes
Pipette bulb VWR Cat#56310-240  
Eppendorf tubes Sarstedt SafeSeal microtube 2mL, Ref#72.695  
Eppendorf tubes Argos 5mL microtube Cat#T20765-C  
Syringe BD (Beckton Dickenson) 1ml-309602 3 ml-300910 5ml-309603 10mL Cat#309604 20mL Cat#309661  
Needles BD 26G-309625 18G-305195  
Neutral buffered formalin VWR 20L 10% NBF, Cat#16004-128  
Saline ThermoScientific Buffered Blood Bank Saline, Cat#23-309-178  
Trypticase soy broth Becton Dickenson TSB: Dehydrated, Cat#211825  
Phosphate buffered saline Sigma Aldrich HA Buffer, Cat#P3813-10PAK  
Formalin cups VWR 4oz Cat#36318-852 8oz Cat#36318-860 16oz Cat#36318-858  
Large formalin cups OakRidge Products 32oz container Cat#0432-1100  
Extra large formalin cup VWR HDPE Multipurpose 160oz container Cat#89038-282  
Suture material Henry Schein Braided silk surgical suture, Ref#100-5000, M766750 For mouse lung inflation
Twine Staples Cat#QUA-46173 For rat lung inflation

References

  1. AVMA. . AVMA Guidelines on Euthanasia. , (2007).
  2. Feldman, D. B., Seely, J. C. . Necropsy Guide: Rodents and the rabbit. , (1988).
  3. King, J. M., Dodd, D. C., Roth, L. . The Necropsy Book. , (2006).
  4. Kittel, B. Revised guides for organ sampling and trimming in rats and mice–Part 2. A joint publication of the RITA and NACAD groups. Exp Toxicol Pathol. 55, 413-431 (2004).
  5. Komarek, V., Fox, J. G. Chapter 1. The Mouse in Biomedical Research. , 1-22 (2007).
  6. Morawietz, G. Revised guides for organ sampling and trimming in rats and mice–Part 3. A joint publication of the RITA and NACAD groups. Exp Toxicol Pathol. 55, 433-449 (2004).
  7. Popesko, P., Raijtová, V., Horák, J. . Colour Atlas of Anatomy of Small Laboratory Animals. 2, 91-106 (2002).
  8. Ruehl-Fehlert, C. Revised guides for organ sampling and trimming in rats and mice–part 1. Exp Toxicol Pathol. 55, 91-106 (2003).
check_url/2966?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Parkinson, C. M., O’Brien, A., Albers, T. M., Simon, M. A., Clifford, C. B., Pritchett-Corning, K. R. Diagnostic Necropsy and Selected Tissue and Sample Collection in Rats and Mice. J. Vis. Exp. (54), e2966, doi:10.3791/2966 (2011).

View Video