Summary

Tracking Morfogenetische Tissue vervormingen in de vroege Chick Embryo

Published: October 17, 2011
doi:

Summary

Dit artikel beschrijft het oppervlak etikettering en de<em> Ex ovo</em> Weefselkweek in het begin van kippenembryo. Technieken ontvankelijk voor time-lapse helderveld, fluorescentie en optische coherentie tomografie beeldvorming worden gepresenteerd. Tracking oppervlak van etiketten met een hoge resolutie kunnen spatiotemporele kinematische grootheden als morfogenetische stammen (vervormingen) worden berekend in zowel twee en drie dimensies.

Abstract

Embryonale epitheel ondergaan complexe vervormingen (bijv. buigen, draaien, vouwen, en uitrekken) om de primitieve organen van het vroege embryo te vormen. Volgen de vaste markeringen op de oppervlakken van deze cellulaire bladen is een bekende methode voor het schatten van morfogenetische grootheden zoals groei, krimp, en afschuiving. Echter, niet alle oppervlakte-labeling technieken zijn makkelijk aan te passen aan conventionele beeldvorming en bezitten verschillende voordelen en beperkingen. Hier beschrijven we twee etikettering methoden en illustreren het nut van elke techniek. In de eerste methode, zijn honderden fluorescerende labels tegelijk toegepast op het embryo met behulp van magnetische ijzerdeeltjes. Deze labels worden vervolgens gebruikt om de hoeveelheid 2-D weefsel vervormingen tijdens de morfogenese. In de tweede methode, zijn polystyreen microsferen gebruikt als contrastmiddelen in niet-invasieve optische coherentie tomografie (OCT) beeldvorming naar 3-D weefsel vervormingen te volgen. Deze technieken zijn succesvolly geïmplementeerd in ons lab aan fysische mechanismen van de vroege hoofd vouwen, hart, en de ontwikkeling van de hersenen studythe, en moet worden aangepast aan een breed scala morfogenetische processen.

Protocol

1. Algemeen Experimentele Voorbereiding Bereid weefselkweek medium in de laminaire stroming kap. Verdunnen Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM) (1 L fles met 4,5 g / L glucose, natrium-bicarbonaat, en L-glutamine). Voeg 10 ml penicilline / streptomycine / neomycine antibiotica. Verwijder de 100 ml DMEM met een steriele pipet en overdracht te vervangen door 100 ml chick serum. Aliquot de DMEM/10% kuiken serum / 1% antibiotica in steriele 15 ml conische flacons en bevri…

Discussion

Twee weefsel labeling technieken worden gepresenteerd voor de ex ovo cultuur van de vroege kippenembryo's. De eerste maakt gebruik van fluorescerende kleurstoffen lipofiele geleverd via magnetische ijzerdeeltjes gelijktijdig label van honderden cellen. Echter, deze methode is momenteel niet compatibel met optische coherentie tomografie, als fluorescerende kleurstoffen vertonen over het algemeen weinig contrast van de omringende weefsels met behulp van 10 oktober. Daarom tonen we een alternatieve …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door NIH beurzen R01 GM075200 en R01 HL083393 (LAT). Wij erkennen fellowship ondersteuning van BAF van NIH T90 DA022871 en de Mallinckrodt Instituut voor Radiologie, en voor VDV uit te verlenen 09PRE2060795 van de American Heart Association.

Materials

Material / Reagent Company Catalogue number Comments
DMEM – high glucose Sigma-Aldrich D5796  
Penicillin/Streptomycin/Neomycin Sigma-Aldrich P4083  
Chicken Serum Invitrogen 16110-082  
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline Sigma-Aldrich D1408 10X
Whatman #2 Filter Paper Whatman 1002 090 90mm diameter
Glass Micropipettes World Precision Instruments (WPI) TW150-6 1.5mm inner diameter
DiI Invitrogen D-282  
Iron Reduced Mallinckrodt Baker Inc. 5320  
10 μm Diameter Microspheres (black) Polysciences Inc. 24294  
Delta T Dish (for time lapse culture) Bioptechs 04200415B 0.17mm thick, black
Delta T4 Culture Dish Controller Bioptechs 0420-4-03  
Mini-Pump Variable Flow Device Fisher Scientific    

References

  1. Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. Journal of Morphology. 88, 49-92 (1951).
  2. Canfield, J. G. Dry beveling micropipettes using a computer hard drive. J. Neurosci. Methods. 158, 19-21 (2006).
  3. Voronov, D. A., Taber, L. A. Cardiac looping in experimental conditions: the effects of extraembryonic forces. Developmental Dynamics. 224, 413-421 (2002).
  4. Filas, B. A., Bayly, P. V., Taber, L. A. Mechanical stress as a regulator of cytoskeletal contractility and nuclear shape in embryonic epithelia. Ann. Biomed. Eng. 39, 443-454 (2011).
  5. Kozel, B. A. Elastic fiber formation: a dynamic view of extracellular matrix assembly using timer reporters. J. Cell. Physiol. 207, 87-96 (2006).
  6. Filas, B. A., Efimov, I. R., Taber, L. A. Optical coherence tomography as a tool for measuring morphogenetic deformation of the looping heart. Anat. Rec. 290, 1057-1068 (2007).
  7. Varner, V. D., Voronov, D. A., Taber, L. A. Mechanics of head fold formation: investigating tissue-level forces during early development. Development. 137, 3801-3811 (2010).
  8. Van Essen, D. C. An integrated software suite for surface-based analyses of cerebral cortex. J. Am. Med. Inform. Assoc. 8, 443-459 (2001).
  9. Filas, B. A., Knutsen, A. K., Bayly, P. V., Taber, L. A. A new method for measuring deformation of folding surfaces during morphogenesis. J. Biomech. Eng. 130, 061010-061010 (2008).
  10. Yuan, S. Co-registered optical coherence tomography and fluorescence molecular imaging for simultaneous morphological and molecular imaging. Phys. Med. Biol. 55, 191-206 (2010).
  11. Zamir, E. A., Czirok, A., Rongish, B. J., Little, C. D. A digital image-based method for computational tissue fate mapping during early avian morphogenesis. Ann. Biomed. Eng. 33, 854-865 (2005).
  12. Blanchard, G. B. Tissue tectonics: morphogenetic strain rates, cell shape change and intercalation. Nat. Methods. 6, 458-464 (2009).

Play Video

Cite This Article
Filas, B. A., Varner, V. D., Voronov, D. A., Taber, L. A. Tracking Morphogenetic Tissue Deformations in the Early Chick Embryo. J. Vis. Exp. (56), e3129, doi:10.3791/3129 (2011).

View Video