Summary

Isolement des cellules épithéliales mammaires à partir de trois dimensions de cellules mixtes Sphéroïde Co-culture

Published: April 30, 2012
doi:

Summary

Une méthode simple est décrite pour analyser les effets de fibroblastes de tissus sur les cellules épithéliales associées. La combinaison de cette méthode et la culture de tissus en trois dimensions peut faciliter l'analyse des cellules après l'isolement de la 3D. La technique est applicable à des cellules plus ou moins de potentiel malin, permettant l'étude systématique des effets de associé à une tumeur du stroma sur les cellules tumorales.

Abstract

Bien que des efforts énormes ont été consacrés à l'identification des voies de signalisation et des molécules impliquées dans les comportements de cellules normales et malignes 1-2, une grande partie de ce travail a été fait à l'aide classique en deux dimensions des modèles de culture de cellules, qui permettent de la manipulation des cellules facile. Il est devenu clair que les voies de signalisation intracellulaires sont touchés par les forces extracellulaires, y compris la dimensionnalité et la tension superficielle de cellules 3-4. De multiples approches ont été prises pour développer des modèles tridimensionnels qui représentent plus précisément l'architecture des tissus biologiques 3. Bien que ces modèles intègrent multi-dimensionnalité et les contraintes architecturales, l'étude des effets conséquents sur les cellules est moins facile que dans la culture de tissus à deux dimensions en raison des limites des modèles et de la difficulté à extraire des cellules pour une analyse ultérieure.

Le rôle important du microenvironnement autour des tumeurs dans la tumorigenèse et le comportement de tumeur is de plus en plus reconnue 4. Stroma tumoral est composé de plusieurs types de cellules et molécules extracellulaires. Au cours du développement tumoral il ya des signaux bidirectionnels entre les cellules tumorales et les cellules stromales 5. Bien que certains facteurs participant à la tumeur du stroma co-évolution ont été identifiés, il ya encore un besoin de développer des techniques simples à identifier systématiquement et d'étudier l'éventail complet de ces 6 signaux. Les fibroblastes sont les cellules les plus abondantes dans normales ou associé à une tumeur des tissus stromales, et de contribuer au dépôt et à l'entretien de la membrane basale et les facteurs de croissance paracrines 7.

De nombreux groupes ont utilisé trois systèmes de culture dimensions pour étudier le rôle des fibroblastes sur diverses fonctions cellulaires, y compris la réponse tumorale aux traitements, le recrutement de cellules immunitaires, des molécules de signalisation, la prolifération, l'apoptose, l'angiogenèse et l'invasion 8-15. Nous avons optimisé une méthode simple pour le culesser les effets de fibroblastes mammaires sur les cellules épithéliales mammaires en utilisant un modèle de matrice extracellulaire disponible dans le commerce pour créer des cultures tridimensionnelles de populations de cellules mixtes (co-cultures) 16-22. La co-culture avec des cellules suite former des sphéroïdes avec le regroupement des fibroblastes à l'intérieur et les cellules épithéliales largement à l'extérieur des sphéroïdes et formant multicellulaires saillies dans la matrice. Manipulation des fibroblastes qui mène à invasivité des cellules altérées épithéliale peut être facilement quantifié par des changements dans le nombre et la durée des projections épithéliales 23. En outre, nous avons mis au point une méthode pour isoler les cellules épithéliales sur trois dimensions de co-culture qui facilite l'analyse des effets de l'exposition sur le comportement des fibroblastes épithéliale. Nous avons constaté que les effets de la co-culture persister pendant des semaines après l'isolement de cellules épithéliales, ce qui permet amplement de temps pour effectuer des essais multiples. Cette méthode est adaptable à des cellules devariant potentiel malin et ne nécessite aucun équipement spécialisé. Cette technique permet une évaluation rapide des modèles cellulaires in vitro dans des conditions multiples, et les résultats correspondants peuvent être comparés à des modèles in vivo de tissus animaux ainsi que des échantillons de tissus humains.

Protocol

1. L'établissement en trois dimensions co-cultures Le jour avant d'établir des co-cultures, retirez le Matrigel du congélateur et le dégel de la glace dans un 4 ° C réfrigérateur pendant la nuit. Le jour de l'expérience, pour préparer le milieu de co-culture, qui correspond à la moyenne pour les cellules épithéliales à être utilisés (moyenne HMEC dans cet exemple: DME/F12 milieu avec 10% de sérum bovin veau, 5 pg / ml d'insuline , 1 ug / ml d'hydrocortisone et 1 n…

Discussion

La méthode présentée ici représente une approche simple pour analyser les effets des fibroblastes du stroma sur les cellules épithéliales, y compris les cellules tumorales. Il permet de directement l'interaction cellule-cellule dans un contexte tridimensionnel pris en charge par la matrice extracellulaire de la membrane basale, tout en permettant une extraction facile des cellules de la matrice pour une analyse plus approfondie. Cela peut être appliqué à l'étude de associé à une tumeur stroma, comme …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Materials

Name of reagent Company Catalogue number Comments
BD Matrigel BD Biosciences 356237 Phenol-red free
Hyclone Classical Liquid Medium: DMEM F12 ThermoScientific SH30023.01  
Hyclone Bovine Calf Serum ThermoScientific SH3007303  
Insulin EMD Chemicals 407709 Dissolve in 0.005N HCl; 0.22 μM filter
Hydrocortisone Sigma-Aldrich H4001 Dissolve in 50% EtOH; 0.22 μM filter
EGF Sigma-Aldrich E9644 Dissolve in 10mM acetic acid; 0.22 μM filter

References

  1. Hanahan, D., Weinberg, R. A. The hallmarks of cancer. Cell. 100, 57-70 (2000).
  2. Hanahan, D., Weinberg, R. A. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell. 144, 646-674 (2011).
  3. Kim, J. B. Three-dimensional tissue culture models in cancer biology. Semin. Cancer Biol. 15, 365-377 (2005).
  4. Li, H., Fan, X., Houghton, J. Tumor microenvironment: the role of the tumor stroma in cancer. J. Cell Biochem. 101, 805-815 (2007).
  5. Tse, J. C., Kalluri, R. Mechanisms of metastasis: epithelial-to-mesenchymal transition and contribution of tumor microenvironment. J. Cell Biochem. 101, 816-829 (2007).
  6. Bhowmick, N. A. TGF-beta signaling in fibroblasts modulates the oncogenic potential of adjacent epithelia. Science. 303, 848-851 (2004).
  7. Bhowmick, N. A., Moses, H. L. Tumor-stroma interactions. Curr. Opin. Genet. Dev. 15, 97-101 (2005).
  8. Havlickova, B., Biro, T., Mescalchin, A., Arenberger, P., Paus, R. Towards optimization of an organotypic assay system that imitates human hair follicle-like epithelial-mesenchymal interactions. Br. J. Dermatol. 151, 753-765 (2004).
  9. Kilani, R. T. Selective cytotoxicity of gemcitabine in bladder cancer cell lines. Anticancer Drugs. 13, 557-566 (2002).
  10. Seidl, P., Huettinger, R., Knuechel, R., Kunz-Schughart, L. A. Three-dimensional fibroblast-tumor cell interaction causes downregulation of RACK1 mRNA expression in breast cancer cells in vitro. Int. J. Cancer. 102, 129-136 (2002).
  11. Silzle, T. Tumor-associated fibroblasts recruit blood monocytes into tumor tissue. Eur. J. Immunol. 33, 1311-1320 (2003).
  12. Bartling, B., Demling, N., Silber, R. E., Simm, A. Proliferative stimulus of lung fibroblasts on lung cancer cells is impaired by the receptor for advanced glycation end-products. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 34, 83-91 (2006).
  13. Kunz-Schughart, L. A. Potential of fibroblasts to regulate the formation of three-dimensional vessel-like structures from endothelial cells in vitro. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 290, C1385-C1398 (2006).
  14. Liu, T., Lin, B., Qin, J. Carcinoma-associated fibroblasts promoted tumor spheroid invasion on a microfluidic 3D co-culture device. Lab Chip. 10, 1671-1677 (2010).
  15. Zengel, P. Multimodal therapy for synergic inhibition of tumour cell invasion and tumour-induced angiogenesis. BMC Cancer. 10, 92-92 (2010).
  16. Kunz-Schughart, L. A., Heyder, P., Schroeder, J., Knuechel, R. A heterologous 3-D coculture model of breast tumor cells and fibroblasts to study tumor-associated fibroblast differentiation. Exp. Cell Res. 266, 74-86 (2001).
  17. Djordjevic, B., Lange, C. S. Cell-cell interactions in spheroids maintained in suspension. Acta Oncol. 45, 412-420 (2006).
  18. Hirschhaeuser, F. Multicellular tumor spheroids: an underestimated tool is catching up again. J. Biotechnol. 148, 3-15 (2010).
  19. Hoevel, T., Macek, R., Swisshelm, K., Kubbies, M. Reexpression of the TJ protein CLDN1 induces apoptosis in breast tumor spheroids. Int. J. Cancer. 108, 374-383 (2004).
  20. Paduch, R., Kandefer-Szerszen, M. Vitamin D, tamoxifen and beta-estradiol modulate breast cancer cell growth and interleukin-6 and metalloproteinase-2 production in three-dimensional co-cultures of tumor cell spheroids with endothelium. Cell. Biol. Toxicol. 21, 247-256 (2005).
  21. Timmins, N. E., Nielsen, L. K. Generation of multicellular tumor spheroids by the hanging-drop method. Methods Mol. Med. 140, 141-151 (2007).
  22. Foty, R. A Simple Hanging Drop Cell Culture Protocol for Generation of 3D Spheroids. J. Vis. Exp. (51), e2720-e2720 (2011).
  23. Xu, K. The role of fibroblast Tiam1 in tumor cell invasion and metastasis. Oncogene. 29, 6533-6542 (2010).
check_url/3760?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Xu, K., Buchsbaum, R. J. Isolation of Mammary Epithelial Cells from Three-dimensional Mixed-cell Spheroid Co-culture. J. Vis. Exp. (62), e3760, doi:10.3791/3760 (2012).

View Video