Summary

नसों, इलाकों, और फ्लोरोसेंट रंजक के साथ रीढ़ की हड्डी में जड़ें के प्रतिगामी लोड हो रहा है

Published: April 19, 2012
doi:

Summary

हम एक सरल और कम लागत न्यूरॉन्स या किसी भी neuronal एक polyethylene चूषण विंदुक का उपयोग पथ में फ्लोरोसेंट और कैल्शियम के प्रति संवेदनशील रंगों के उच्च एकाग्रता को शुरू करने के लिए तकनीक का वर्णन करता है.

Abstract

न्यूरॉन्स की प्रतिगामी लेबलिंग एक मानक शारीरिक विधि 1,2 कि 3-6 न्यूरॉन्स में कैल्शियम और वोल्टेज के प्रति संवेदनशील रंगों लोड इस्तेमाल किया गया है. आम तौर पर, रंग ठोस क्रिस्टल के रूप में या स्थानीय दबाव गिलास pipettes का उपयोग इंजेक्शन द्वारा लागू कर रहे हैं. हालांकि, इस डाई और कम लेबलिंग तीव्रता के कमजोर पड़ने में परिणाम है, खासकर जब कई घंटे डाई प्रसार के लिए आवश्यक हैं कर सकते हैं. यहाँ हम एक polyethylene चूषण डाई समाधान के साथ भरा विंदुक का उपयोग न्यूरॉन्स में फ्लोरोसेंट और आयन के प्रति संवेदनशील रंगों को शुरू करने के लिए एक सरल और कम लागत वाली तकनीक का प्रदर्शन. इस विधि लोड हो रहा है प्रक्रिया के दौरान axons के साथ संपर्क में डाई की एक उच्च एकाग्रता बनाए रखने के लिए एक विश्वसनीय तरीका प्रदान करता है.

Protocol

प्रतिदीप्त dextrans संरचनात्मक उपकरण के रूप में और इमेजिंग neuronal गतिविधि 1-4 के लिए इस्तेमाल किया गया है. एट अल फील्ड्स,. (2009) 4 axonal इलाकों के लिए एक मॉडल प्रणाली के रूप में रीढ़ की हड्डी पर एक ध्यान के साथ ?…

Discussion

<p class="jove_content"हम यहाँ न्यूरॉन्स, नसों और रीढ़ की हड्डी इलाकों में रंगों को शुरू करने के लिए एक सरल और लागत प्रभावी प्रोटोकॉल का वर्णन. इस विधि लोड हो रहा है प्रक्रिया की अवधि के लिए एक अत्यधिक ध्यान केंद्रित डाई समाधा?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

<p class="jove_content"> यह काम मस्तिष्क संबंधी विकार के राष्ट्रीय संस्थान और स्वास्थ्य के राष्ट्रीय संस्थान में स्ट्रोक के अंदर का कार्यक्रम द्वारा समर्थित किया गया था. हम भी विधि और चित्रा 3 में डेटा के लिए अपने पहले के योगदान के लिए डॉ. जॉर्ज Mentis धन्यवाद देना चाहूंगा.</p

Materials

Material Name Company Catalogue number Comments
Tubing PE90 (IDxOD:0.034″x0.050″; Wall Thikness:0.008″) Clay Adams Brand Intermedic 427421 For Type I & Type II pipettes
NSF-51(IDxOD:1/16×1/8; Wall Thikness:1/32) PharMed BPT, Cole-Parmer AY242002 For Flexible tubing
Syringe 1ml insulin Syringe U-100 Becton Dickenson 329650  
Needle 19G x1-1/2″ Metal Hub Needle MONOJECT 200136 Connecting Type II pipette to syringe
  Alcohol Lamp      
Stopcock Three-way Stopcock with Male Luer Slip Adapter Baxter Healthcare Corp. 2C6241 Use with syringe
Holder H-1 electrode holder Narishige H-1/12  
Magnet stand Narishige GJ-8  
Micromanipulator Narishige M-3333  
Tweezers S&T DUMONT Swiss 00632-11 DUMONT JF-5 TC  

*Those are suggested materials. Can be replaced with any compatible products

References

  1. Nance, D. M., Burns, J. Fluorescent dextrans as sensitive anterograde neuroanatomical tracers: applications and pitfalls. Brain Res. Bull. 25, 139-145 (1990).
  2. Glover, J. C., Petursdottir, G., Jansen, J. K. Fluorescent dextran-amines used as axonal tracers in the nervous system of the chicken embryo. J. Neurosci. Methods. 18, 243-254 (1986).
  3. McPherson, D. R., McClellan, A. D., O’Donovan, M. J. Optical imaging of neuronal activity in tissue labeled by retrograde transport of Calcium Green Dextran. Brain Research Protocols. 1, 157-164 (1997).
  4. Fields, D. R., Shneider, N., Mentis, G. Z., O’Donovan, M. J. Imaging nervous system activity. Curr. Protoc. Neurosci. Chapter 2, Unit 2.3 (2009).
  5. O’Donovan, M. J., Ho, S., Sholomenko, G., Yee, W. Real-time imaging of neurons retrogradely and anterogradely labelled with calcium-sensitive dyes. J. Neurosci. Methods. 46, 91-106 (1993).
  6. Wenner, P., Tsau, Y., Cohen, L. B., O’Donovan, M. J., Dan, Y. Voltage-sensitive dye recording using retrogradely transported dye in the chicken spinal cord: staining and signal characteristics. J. Neurosci. Methods. 70, 111-120 (1996).
  7. Garudadri, S., Gallarda, B., Pfaff, S., Alaynick, W. Spinal Cord Electrophysiology II: Extracellular Suction Electrode Fabrication. J. Vis. Exp. (48), e2580 (2011).
  8. Smith, J. C., Feldman, J. L. In vitro brainstem-spinal cord preparations for study of motor systems for mammalian respiration and locomotion. J. Neurosci. Methods. 21, 321-333 (1987).
  9. Meyer, A., Gallarda, B., Pfaff, S., Alaynick, W. Spinal Cord Electrophysiology. J. Vis. Exp. (35), e1660 (2010).
  10. Shneider, N. A., Mentis, G. Z., Schustak, J., O’Donovan, M. J. Functionally reduced sensorimotor connections form with normal specificity despite abnormal muscle spindle development: the role of spindle-derived neurotrophin 3. J. Neurosci. 29, 4719-4735 (2009).
  11. Mentis, G. Z. Early functional impairment of sensory-motor connectivity in a mouse model of spinal muscular atrophy. Neuron. 69, 453-467 (2011).
  12. Blivis, D., Mentis, Z., O’Donovan, J. M. G., Lev-Tov, A. Studies of sacral neurons involved in activation of the lumbar central pattern generator for locomotion in the neonatal rodent spinal cord. Soc. Neurosci. Abstr. 564.8, (2009).
  13. O’Donovan, M. J. Imaging the spatiotemporal organization of neural activity in the developing spinal cord. Dev. Neurobiol. 68, 788-803 (2008).
  14. Kasumacic, N., Glover, J. C., Perreault, M. -. C. Segmental patterns of vestibular-mediated synaptic inputs to axial and limb motoneurons in the neonatal mouse assessed by optical recording. J. Physiol. (Lond). 588, 4905-4925 (2010).
  15. Szokol, K., Glover, J. C., Perreault, M. -. C. Organization of functional synaptic connections between medullary reticulospinal neurons and lumbar descending commissural interneurons in the neonatal mouse. J. Neurosci. 31, 4731-4742 (2011).
check_url/4008?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Blivis, D., O’Donovan, M. J. Retrograde Loading of Nerves, Tracts, and Spinal Roots with Fluorescent Dyes. J. Vis. Exp. (62), e4008, doi:10.3791/4008 (2012).

View Video