Summary

Het gebruik van LysoTracker tot geprogrammeerde celdood detecteren in embryo's en differentiëren van embryonale stamcellen

Published: October 11, 2012
doi:

Summary

Wij presenteren een eenvoudig protocol om gebieden van geprogrammeerde celdood (PCD) in muizenembryo's en onderscheidende embryonale stamcellen (ES) celkweken met een sterk oplosbare kleurstof genoemd LysoTracker visualiseren.

Abstract

Geprogrammeerde celdood (PCD) voor bij volwassenen met normaal weefsel homeostase en tijdens embryonale ontwikkeling aan weefsels en organen 1,2,6,7 vorm. Tijdens de ontwikkeling kan giftige chemicaliën of genetische veranderingen veroorzaken een toename van de PCD of wijzigen PCD patronen resulteert in ontwikkelings-afwijkingen en aangeboren afwijkingen 3-5. De etiologie van deze gebreken begrijpen, kunnen de studie van embryo's aangevuld met in vitro assays die gebruik differentiëren embryonale stamcellen (ES) cellen.

Apoptose is een goed bestudeerde vorm van PCD dat zowel intrinsieke en extrinsieke signalering naar de caspase enzym cascade activeren omvat. Kenmerkend cel veranderingen omvatten membraan blaarachtig, nucleaire krimpen, en DNA-fragmentatie. Andere vormen van PCD niet betrokken caspase activiteit en kan het eindresultaat van langdurige autofagie. Ongeacht de route PCD, stervende cellen moeten worden verwijderd. Bij volwassenen zijn de immuuncellen perfOrm deze functie, terwijl embryo, waar het immuunsysteem nog niet ontwikkeld verwijdering gebeurt door een alternatief mechanisme. Het mechanisme omvat naburige cellen (de zogenaamde "niet-professionele fagocyten") het nemen van een fagocytische rol, ze herkennen het signaal 'ik eet' op het oppervlak van de stervende cel en overspoelen het 8-10. Na afblazen, wordt het puin gebracht naar het lysosoom voor degradatie. Dus ongeacht PCD mechanisme, kan een toename van lysosomale activiteit gecorreleerd met verhoogde celdood.

Om PCD, een eenvoudige test om te lysosomen in dikke weefsels en multilayer differentiëren culturen visualiseren studeren kan nuttig zijn. LysoTracker kleurstof is een sterk oplosbare klein molecuul dat wordt vastgehouden in zure subcellulaire compartimenten zoals het lysosoom 11-13. De kleurstof wordt door diffusie en door de circulatie. Omdat penetratie is niet een belemmering, visualisatie van PCD in dikke weefsels en multi-layer culturen is mogelijk 12,13 </sup>. Daarentegen wordt TUNEL (Terminal deoxynucleotidyl transferase dUTP nick end labeling) analyse 14 tot kleine monsters, coupes en monolaagkweken omdat de procedure is de invoer / permeabiliteit van een terminal transferase.

In tegenstelling tot Aniline blauw, die verspreidt en wordt opgelost door oplosmiddelen, LysoTracker Red DND-99 is Muur, helder en stabiel. Kleuring kan zichtbaar worden gemaakt met standaard TL-of confocale microscopie in whole-mount of sectie met behulp van water of oplosmiddelen op basis van montage media 12,13. Hier beschrijven we protocollen het gebruik van deze kleurstof te kijken naar PCD in normale en sonic hedgehog null muis embryo's. Daarnaast tonen we analyse van PCD in differentiëren ES celkweken zijn en een eenvoudige kwantificering methode. Samenvattend kan LysoTracker vlekken zijn een geweldige aanvulling op andere methoden voor het opsporen PCD.

Protocol

1. LysoTracker Kleuring van muizenembryo's Genereer muis embryo's door het plaatsen van jonge (5-6 weken oud) vrouwen in mannelijke stud kooien. Monitor op volgende ochtend voor het verschijnen van een vaginale plug aangeeft dat paring heeft plaatsgevonden. Als het vrouwtje zwanger is, wordt 's middags op de dag genaamd 0,5 dpc (dagen na coïtus). De procedure hier gepresenteerde is ideaal voor embryo's 7 tot 13 dpc. Op de embryonale dag van belang, euthanaseren de vrouwelijke overee…

Discussion

Belangrijke kenmerken van apoptose omvatten de detectie van DNA schade met de TUNEL assay, samen met de detectie van caspase activiteit (gedetecteerd met mAbs of een bindend molecuul zoals zVAD-fmk) de waarneming van cellulaire veranderingen, en de presentatie van fosfatidylserine (PS ) op het membraanoppervlak (gedetecteerd door Annexine V binding). Er zijn enkele nadelen met elk van deze assays. Bijvoorbeeld, de terminal transferase in de TUNEL assay niet doordringen dan een paar cellagen. Annexine V kan ook markeren …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wij danken de leden van de Mariani lab om hulp te bewerken het protocol. Dit werk werd gefinancierd door een CIRM Postdoctoraal Training Grant (JLF), een CIRM BRUGGEN stage (TZTT), de Robert E. en mei R. Wright Foundation (FVM), en de Universiteit van Zuid-Californië (FVM).

Materials

Name of the reagent Company   Catalogue number
LysoTracker Red DND-99 Invitrogen #L-7528  
Hanks BSS Invitrogen 14025-076  
Paraformaldehyde EMD EM-PX0055-3  
Vectashield VECTOR H-1200  
DMEM Cellgro 10-013-CV  
Non-essential amino acids Cellgro 25-025-CI  
Sodium pyruvate Cellgro 25-000-CI  
FBS Hyclone SH30071.02  
Pen-Strep Invitrogen 15140-122  
b-Mercaptoethanol, 50 mM Invitrogen 21985-023  
LabTek-II Chamber slides
(8-well)
Nalge Nunc International 154534  
0.1% Gelatin Millipore ES-006-B  
Dulbecco’s PBS (D-PBS) Cellgro 21-031-CV  
     

Solution Recipes

4% Paraformaldehyde

For 100 ml:

  1. Mix 4 g paraformaldehyde, 90 ml H2O, and NaOH (a drop of 2N NaOH). The paraformaldehyde will not go into solution until you have added some NaOH to increase the pH.
  2. Stir and heat at 60 °C until all the powder is in solution (~10-20 min). Do not overheat.
  3. Add ~10 ml 10x PBS to achieve a final volume of 100 ml.
  4. Store at -20 °C in convenient (~10 ml or ~40 ml) aliquots.

WARNING: Paraformaldehyde in ‘frill’ form (compressed small pellets) is less powdery and can therefore be measured outside of a hood. However you should still wear a protective dust mask (N95 at least) during handling.

EB Culture Media

For 500 ml EB Media:

DMEM: 404.5 ml
FBS: 75.0 ml
L-Glutamine: 5.0 ml
Penicillin/Streptomycin: 5.0 ml
Non-essential amino acids: 5.0 ml
Sodium pyruvate: 5.0 ml
β-Mercaptoethanol: 500 μl

References

  1. Baehrecke, E. H. How death shapes life during development. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 3, 779-787 (2002).
  2. Meier, P., Finch, A., Evan, G. Apoptosis in development. Nature. 407, 796-801 (2000).
  3. Ikonomidou, C. Ethanol-induced apoptotic neurodegeneration and fetal alcohol syndrome. Science. 287, 1056-1060 (2000).
  4. Dunty, W. C., Chen, S. Y., Zucker, R. M., Dehart, D. B., Sulik, K. K. Selective vulnerability of embryonic cell populations to ethanol-induced apoptosis: implications for alcohol-related birth defects and neurodevelopmental disorder. Alcohol Clin. Exp. Res. 25, 1523-1535 (2001).
  5. Price, O. T., Lau, C., Zucker, R. M. Quantitative fluorescence of 5-FU-treated fetal rat limbs using confocal laser scanning microscopy and Lysotracker. Cytometry A. 53, 9-21 (2003).
  6. Jacobson, M. D., Weil, M., Raff, M. C. Programmed cell death in animal development. Cell. 88, 347-354 (1997).
  7. Fuchs, Y., Steller, H. Programmed cell death in animal development and disease. Cell. 147, 742-758 (2011).
  8. Qu, X. Autophagy gene-dependent clearance of apoptotic cells during embryonic development. Cell. 128, 931-946 (2007).
  9. Grimsley, C., Ravichandran, K. S. Cues for apoptotic cell engulfment: eat-me, don’t eat-me and come-get-me signals. Trends Cell Biol. 13, 648-656 (2003).
  10. Lauber, K., Blumenthal, S. G., Waibel, M., Wesselborg, S. Clearance of apoptotic cells: getting rid of the corpses. Mol. Cell. 14, 277-287 (2004).
  11. Haller, T., Dietl, P., Deetjen, P., Volkl, H. The lysosomal compartment as intracellular calcium store in MDCK cells: a possible involvement in InsP3-mediated Ca2+ release. Cell Calcium. 19, 157-165 (1996).
  12. Zucker, R. M., Hunter, S., Rogers, J. M. Confocal laser scanning microscopy of apoptosis in organogenesis-stage mouse embryos. Cytometry. 33, 348-354 (1998).
  13. Zucker, R. M., Hunter, E. S., Rogers, J. M. Apoptosis and morphology in mouse embryos by confocal laser scanning microscopy. Methods. 18, 473-480 (1999).
  14. Gavrieli, Y., Sherman, Y., Ben-Sasson, S. A. Identification of programmed cell death in situ via specific labeling of nuclear DNA fragmentation. J. Cell Biol. 119, 493-501 (1992).
  15. Foty, R. A Simple Hanging Drop Cell Culture Protocol for Generation of 3D Spheroids. J. Vis. Exp. (51), e2720 (2011).
  16. Chiang, C. Manifestation of the limb prepattern: limb development in the absence of sonic hedgehog function. Dev. Biol. 236, 421-435 (2001).
  17. Ishibashi, M., McMahon, A. P. A sonic hedgehog-dependent signaling relay regulates growth of diencephalic and mesencephalic primordia in the early mouse embryo. Development. 129, 4807-4819 (2002).
  18. Schuldiner, M. Induced neuronal differentiation of human embryonic stem cells. Brain Res. 913, 201-205 (2001).
  19. Bain, G., Kitchens, D., Yao, M., Huettner, J. E., Gottlieb, D. I. Embryonic stem cells express neuronal properties in vitro. Dev. Biol. 168, 342-357 (1995).
  20. Dumont, A. Hydrogen peroxide-induced apoptosis is CD95-independent, requires the release of mitochondria-derived reactive oxygen species and the activation of NF-kappaB. Oncogene. 18, 747-757 (1999).
  21. Hampton, M. B., Orrenius, S. Dual regulation of caspase activity by hydrogen peroxide: implications for apoptosis. FEBS Lett. 414, 552-556 (1997).
  22. Wood, W. Mesenchymal cells engulf and clear apoptotic footplate cells in macrophageless PU.1 null mouse embryos. Development. 127, 5245-5252 (2000).
  23. Scott, R. C., Juhasz, G., Neufeld, T. P. Direct induction of autophagy by Atg1 inhibits cell growth and induces apoptotic cell death. Curr. Biol. 17, 1-11 (2007).
  24. Rodriguez-Enriquez, S., Kim, I., Currin, R. T., Lemasters, J. J. Tracker dyes to probe mitochondrial autophagy (mitophagy) in rat hepatocytes. Autophagy. 2, 39-46 (2006).
  25. Bampton, E. T., Goemans, C. G., Niranjan, D., Mizushima, N., Tolkovsky, A. M. The dynamics of autophagy visualized in live cells: from autophagosome formation to fusion with endo/lysosomes. Autophagy. 1, 23-36 (2005).
  26. Boya, P., Mellen, M. A., de la Rosa, E. J. How autophagy is related to programmed cell death during the development of the nervous system. Biochem. Soc. Trans. 36, 813-817 (2008).
  27. Galluzzi, L. Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring cell death in higher eukaryotes. Cell Death Differ. 16, 1093-1107 (2009).
  28. Klionsky, D. J. Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring autophagy in higher eukaryotes. Autophagy. 4, 151-175 (2008).
check_url/4254?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Fogel, J. L., Thein, T. Z. T., Mariani, F. V. Use of LysoTracker to Detect Programmed Cell Death in Embryos and Differentiating Embryonic Stem Cells. J. Vis. Exp. (68), e4254, doi:10.3791/4254 (2012).

View Video