Summary

Количественная Механические свойства эндотелиальных гликокаликса с атомно-силовой микроскопии

Published: February 21, 2013
doi:

Summary

Механические свойства эндотелиальных гликокаликса были измерены отступ использованием микронных размеров сферы на консоли АСМ. Эндотелиальные клетки культивировали в пользовательской камеры в физиологических условиях потока, чтобы вызвать гликокаликса выражение. Данные были проанализированы с помощью тонкой моделью фильм для определения толщины и гликокаликса модуля.

Abstract

Наше понимание взаимодействия лейкоцитов и стенки сосуда во время захвата лейкоцитов ограничен неполное понимание механических свойств эндотелия поверхностного слоя. Известно, что молекулы адгезии на лейкоцитах распределены неравномерно по отношению к топографии поверхности 3, рельеф ограничивает клей формирование связей с другими поверхностями 9, и что физиологические силы контакта (≈ 5,0 – 10,0 пН в микроворсинок) может сжимать микроворсинки как лишь треть их длины покоя, повышение доступности молекул на противоположной поверхности 3, 7. Рассмотрим, как эндотелий двухслойной структурой, относительно жесткой тела клетки, а также гликокаликса, мягкий защитный слой сахара на просвет поверхность 6. Было показано, что гликокаликса может выступать в качестве барьера для уменьшения адгезии лейкоцитов к эндотелиальной поверхности 4.В этом докладе мы приступить к решению деформируемость поверхности эндотелиальных понять, как эндотелиальные механическая жесткость может повлиять на образовании связи. Эндотелиальных клеток, выращенных в культуре статического не выражают надежные гликокаликса, но клетки, выращенные в физиологических условиях потока начинают приближенных гликокаликса наблюдается в естественных условиях 2. Модуль эндотелиальные клетки тела были измерены с помощью атомно-силовой микроскопии (АСМ) составляет примерно от 5 до 20 кПа 5. Толщина и структура гликокаликса были изучены с помощью электронного микроскопа 8 и модуль гликокаликса были аппроксимированы с использованием косвенных методов, но насколько нам известно, не было никаких опубликованных отчетов прямого измерения модуля гликокаликса в живых клетках . В этом исследовании мы представляем отступ эксперименты с новым АСМ зонда на клетки, которые культивировались в условиях максимизировать свои гликокаликса выражение маке прямые измерения модуля упругости и толщины эндотелиального гликокаликса.

Protocol

1. Методика 1,1 Проточная ячейка палата Проточной камеры, как показано на рисунке 1, была построена так, что клетки могут быть выращены при сдвиге от 1,0 Па (10 дин / см 2), а затем передаются непосредственно в убежище MFP3D AFM (Санта-Барбара, Калифорния). <…

Representative Results

В типичном эксперименте, 20 силы против расстоянии кривые были получены от определенного региона клетки, как правило, в перинуклеарной области, рядом, но не на, ядра (в пределах ~ 2 мкм). Кривые были выровнены по счету за любой образец дрейф в течение периода измерения и затем усредняются, ч…

Discussion

Мы использовали значения, вычисленные из двухслойной модели и теории Герца для моделирования взаимодействия лейкоцитов, циркулирующих в крови с эндотелиальной стенкой. Мы подсчитали, что микроворсинок на лейкоциты с диаметром 50 нм при нагрузке в 10 пН бы отступ около 150 нм в гликокалик?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы хотели бы поблагодарить Елена Ломакина, Ричард Баузерман, Маргарет Youngman, Шей Вакнин, Джессика Снайдер, Крис Striemer, Nakul Nataraj, Хун Ли Чунг, Tejas Khire, и Эрик Лам за их помощь в этом проекте. Этот проект был профинансирован NIH # PO1 HL 018208.

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
McCoy’s Medium Gibco 16600-082
Fetal Calf Serum Hyclone SH30070
Endothelial Cell Growth Medium Vec Technologies MCDB-131
Pooled Human Umbilical Vein Endothelial Cells Vec Technologies PHUVEC/T-25
Sulfuric Acid JT Baker 9681-02
Hydrogen Peroxide VWR BDH3742-1
(3-aminopropyl)triethoxysilane Aldrich 440140-100ML
Isopropyl Alcohol VWR BDH8999-4
Trypsin Cellgro 25-054-C1
Hank’s Buffered Salt Solution Gibco 14175-095
sulfo-NHS-LC-Biotin Thermo Scientific 21335
Streptavadin beads Dynabeads 112.06D
MFP-3D AFM Asylum Research
Tipless Cantilevers Nanoworld ARROW-TL1-50
Silhouette SD Quickutz Silhouette-SD
Silicone Rubber Stockwell Elastomerics SE50-RS
30 ml Syringes Benton Dickinson 309650
18 gauge needles Benton Dickinson 305196
Extension Sets Hospira 4429-48
4 way valves Teleflex W21372
Male/Female Port Caps Smith’s Medical MX491B
Peristaltic Pump Watson-Marlow 401U/D
Peristaltic Tubing Watson-Marlow 903.0016.016
sterile filters Pall Life Science 4652

References

  1. Clifford, C., Seah, M. Nanoindentation measurement of young’s modulus for compliant layers on stiffer substrates including the effect of poisson’s ratios. Nanotechnology. , (2009).
  2. Gouverneur, M., Spaan, J. A. E., Pannekoek, H., Fontijn, R. D., Vink, H. Fluid shear stress stimulates incorporation of hyaluronan into endothelial cell glycocalyx. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 290 (1), 458-452 (2006).
  3. Hocde, S. A., Hyrien, O., Waugh, R. E. Cell adhesion molecule distribution relative to neutrophil surface topography assessed by tirfm. Biophysical Journal. 97 (1), 379-387 (2009).
  4. Lipowski, H. H. The endothelial glycocalyx as a barrier to leukocyte adhesion and its mediation by extracellular proteases. Annals of biomedical engineering. 40 (4), 840-848 (2012).
  5. Lu, L., Oswald, S. J., Ngu, H., Yin, F. C. P. Mechanical properties of actin stress fibers in living cells. Biophysical Journal. 95 (12), 6060-6071 (2008).
  6. Pries, A. R., Secomb, T. W., Gaehtgens, P. The endothelial surface layer. Pflugers Archiv. European Journal of Physiology. 440 (5), 653-666 (2000).
  7. Spillmann, C. M., Lomakina, E., Waugh, R. E. Neutrophil adhesive contact dependence on impingement force. Biophysical Journal. 87 (6), 4237-4245 (2004).
  8. vanden Berg, B. M., Vink, H., Spaan, J. A. E. The endothelial glycocalyx protects against myocardial edema. Circulation Research. 92 (6), 592-594 (2003).
  9. Williams, T. E., Nagarajan, S., Selvaraj, P., Zhu, C. Quantifying the impact of membrane microtopology on effective two-dimensional affinity. J. Biol. Chem. 276 (16), 13283-138 (2001).
  10. Vink, H., Duling, B. Identification of Distinct Luminal Domains for Macromolecules, Erythrocytes, and Leukocytes Within Mammalian Capillaries. Circulation Research. 79, 581-589 (1996).
check_url/50163?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Marsh, G., Waugh, R. E. Quantifying the Mechanical Properties of the Endothelial Glycocalyx with Atomic Force Microscopy. J. Vis. Exp. (72), e50163, doi:10.3791/50163 (2013).

View Video